宋 爽 王興娜 高志紅*
(1 南京農(nóng)業(yè)大學(xué)園藝學(xué)院 南京210095
2 江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院農(nóng)產(chǎn)品加工研究所 南京210014)
青梅(Prunusmume Sieb.Et Zucc)為薔薇科植物。我國是青梅的原產(chǎn)地,也是世界上適合生長(zhǎng)青梅地域最廣的國家[1]。青梅果具有很高營(yíng)養(yǎng)價(jià)值,可以制成咸水梅、梅胚、果醬、果醋、果酒等產(chǎn)品[2-5]。青梅果還具有很高的藥用價(jià)值。據(jù)報(bào)道,青梅具有抑菌[6]、抗腫瘤、驅(qū)蟲、解毒、抗氧化[7-8]、抗骨質(zhì)疏松[8]、抑制黑色素生成[9]、抗疲勞、抗過敏等生理作用。在我國傳統(tǒng)醫(yī)藥中,青梅的炮制品烏梅被國家衛(wèi)生部正式列為藥、食兩用制品[10]。
由于青梅酸度很高,所以不能用于鮮食,限制了青梅產(chǎn)業(yè)的發(fā)展。為促進(jìn)青梅加工業(yè)的發(fā)展,必須研究其活性部位和成分,以便于深加工。目前有大量研究表明,青梅炮制品烏梅具有很好的抗菌活性,能夠抑制30多種細(xì)菌,其中包括金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、假單胞菌、熒光假單胞菌、李斯特菌、沙門氏菌、變形桿菌、蠟樣芽胞桿菌等食源性致病菌[11-16]。此外,青梅果汁對(duì)金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌[17]、副溶血性弧菌[18]、鼠傷寒沙門桿菌[19]也有顯著的抑制作用。目前深入研究青梅的抗菌活性部位、組分、成分的文章較少。本文對(duì)青梅的抗菌活性組分和成分進(jìn)行了初步研究。
青梅新鮮果實(shí),采自國家果梅種質(zhì)資源圃(南京),品種為大葉青;供試菌種為甘油冷凍保存的腸沙門氏菌(Salmonella enterica,簡(jiǎn)寫S.enterica)、單增李斯特菌(Listeria monocytogenes,簡(jiǎn)寫L.monocytogenes)、金黃色葡萄球菌(Staphylococcus aureus,簡(jiǎn)寫S.aureus)、枯草芽孢桿菌(Bacillus subtilis,簡(jiǎn)寫B(tài).subtilis)、大腸桿菌(Escherichia coli,簡(jiǎn)寫E.coli),中國工業(yè)微生物菌種保存管理中心。營(yíng)養(yǎng)肉湯(Nutrient Broth,NB)、瓊脂粉,北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司。二甲亞砜、氯仿、乙酸乙酯、正丁醇均為國產(chǎn)分析純級(jí),中國國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司;甲醇、醋酸為色譜純級(jí),美國sigma公司。
立式壓力蒸汽滅菌鍋(LDZX-50KBS),上海申安醫(yī)療器械廠;數(shù)顯電熱培養(yǎng)箱(HPX-9162MBE),上海博訊實(shí)業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠;桌上式潔凈工作臺(tái)(HD-650型),蘇州凈化設(shè)備有限公司;高效液相色譜及質(zhì)譜聯(lián)用儀(Agilent1100 LC/MSD VL),美國安捷倫公司;電子天平,梅特勒-托利多儀器(上海)有限公司;pH計(jì),上海康儀儀器有限公司;8道移液槍,寧波群安實(shí)業(yè)有限公司。
1.3.1 青梅不同組分的制備 將新鮮青梅果實(shí)于75%乙醇中浸泡一段時(shí)間,將浸出液濃縮后加蒸餾水充分混勻,依次用氯仿、乙酸乙酯、正丁醇分別萃取3次,分別得氯仿(組分1)、乙酸乙酯(組分2)、正丁醇(組分3)、水液(組分4)及原液(組分5)5個(gè)組分。取青梅組分1,2,3,4,5各0.5 g,溶于4.5mL的85%二甲亞砜溶液,即樣品1~5質(zhì)量濃度為111.1 g/L的溶液。
1.3.2 菌懸液的制備 取以甘油冷凍保存的腸沙門氏菌腸亞種、單增李斯特菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌、大腸桿菌的菌種保藏液各100μL于50 mL滅菌后的NB液體培養(yǎng)基中活化,于37℃下培養(yǎng)24 h,得菌懸液,備用。使用時(shí)將其稀釋到106~107。
1.3.3 打孔法測(cè)定抑菌圈 取備用的NB固體培養(yǎng)基融化后倒入一次性培養(yǎng)皿中,待冷卻凝固后,每皿各取備用的菌懸液50μL,以滅菌后的涂布棒均勻涂布,用經(jīng)滅菌的打孔器在培養(yǎng)基上打孔,直徑為6mm。將其中的瓊脂塊取出,每個(gè)孔在酒精燈火焰下烤10 s,封底。此過程時(shí)間不能過長(zhǎng),以免過熱融化培養(yǎng)基而產(chǎn)生過多冷凝水。之后,在每孔內(nèi)注入待檢組分溶液100μL,同時(shí)每皿設(shè)置一個(gè)溶劑對(duì)照,即85%二甲亞砜溶液,每處理重復(fù)3次,放入恒溫培養(yǎng)箱中,于37℃下培養(yǎng)24 h,拍照,以直尺測(cè)量抑菌圈直徑,采用十字交叉法測(cè)量,同一抑菌圈取橫、豎兩個(gè)值的均值記錄為數(shù)據(jù)。
1.3.4 二倍梯度稀釋法測(cè)定最小抑菌濃度 將96孔板孔中分別加入腸沙門氏菌腸亞種、單增李斯特菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌及金黃色葡萄球菌菌懸液各100μL,第1行加樣液各100μL,用85%二甲亞砜溶液作為對(duì)照,每個(gè)處理重復(fù)3次。用移液槍吹打混勻第1行的樣液與菌液,吸取100μL,加入第2行中吹打混勻,再吸取100μL加入第3行。以此類推,當(dāng)?shù)?行吹打混勻后,吸取100μL棄去。至此,可形成8個(gè)梯度的樣液濃度。將96孔板置于恒溫培養(yǎng)箱中,于37℃下培養(yǎng)24 h后,觀察每個(gè)孔中是否產(chǎn)生渾濁,記錄。以肉眼觀察沒有渾濁的最高稀釋倍數(shù)所對(duì)應(yīng)的樣液濃度值為該樣品對(duì)于該菌種的最小抑菌濃度。
1.3.5 LC-MS分析 將青梅組分1~5進(jìn)行LCMS分析,用1%醋酸-甲醇溶液(D)梯度洗脫,洗脫程序見表1。色譜柱:安捷倫Eclipse XDB-C18柱(4.6mm×250mm,5μm),流速0.6mL/min,控制柱溫35℃,采用DAD檢測(cè)器。質(zhì)譜條件:電噴霧離子源(ESI),控制霧化氣(N2)氣壓為206 850 Pa;干燥氣(N2)流量為9 L/min;毛細(xì)管溫度350℃,毛細(xì)管電壓3.0 kV,采用負(fù)離子模式檢測(cè),質(zhì)譜測(cè)定范圍m/z 100~1 000。
表1 LC-MS分析梯度洗脫溶劑變化Table1 Changes of solvents in gradient elution by LC-MS
根據(jù)表2不同組分對(duì)同一種菌抑菌活性方差分析,組分1~5對(duì)大腸桿菌的抑菌活性,從高到低為組分2>組分4、5>組分1>組分3>對(duì)照;對(duì)枯草芽孢桿菌的抑菌活性,從高到低為組分2>組分1、3、5>組分4>對(duì)照;對(duì)金黃色葡萄球菌的抑菌活性,從高到低為組分2、5>組分4>組分1>組分3>對(duì)照;對(duì)腸沙門氏菌腸亞種抑菌活性,從高到低為組分1、組分2>組分3>組分5>組分4>對(duì)照;對(duì)單增李斯特菌抑菌活性,從高到低為組分2>組分1、3>組分5>組分4>對(duì)照。
根據(jù)表3同一種處理對(duì)不同菌抑菌活性的方差分析,組分1對(duì)大腸桿菌等5種細(xì)菌的抑菌活性從高到底為:大腸桿菌、腸沙門氏菌>金黃色葡萄球菌>單增李斯特菌>枯草芽孢桿菌;組分2對(duì)大腸桿菌等5種細(xì)菌的抑菌活性從高到底為:大腸桿菌>腸沙門氏菌>單增李斯特菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌;組分3對(duì)大腸桿菌等5種細(xì)菌的抑菌活性從高到底為大腸桿菌、腸沙門氏菌、單增李斯特菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌;組分4對(duì)大腸桿菌等5種細(xì)菌的抑菌活性從高到底為大腸桿菌>金黃色葡萄球菌>枯草芽孢桿菌>腸沙門氏菌、單增李斯特菌;組分5對(duì)大腸桿菌等5種細(xì)菌的抑菌活性從高到底為大腸桿菌>金黃色葡萄球菌>單增李斯特菌>腸沙門氏菌>枯草芽孢桿菌。
由以上數(shù)據(jù)可見,組分2對(duì)5種食源性致病菌的抑制效果最好。
表2 不同組分對(duì)同一種菌抑菌圈直徑方差分析(單位:mm)Table2 Inhibitory zone diameters'SPSS analysis of various extracts against one bacteria(unit:mm)
表3 同一組分對(duì)不同細(xì)菌抑菌圈直徑方差分析(單位:mm)Table3 Inhibitory zone diameters’SPSS analysis of one extract against various bacteria(unit:mm)
由最小抑菌濃度測(cè)定結(jié)果可知,組分2對(duì)大腸桿菌、枯草芽胞桿菌、金黃色葡萄球菌、李斯特菌、沙門氏菌的抑制效果最好。組分3對(duì)沙門氏菌的抑制效果最好,組分2次之。
總體而言,組分2對(duì)5種菌的抑制效果最好。
表4 青梅組分1~5的最小抑菌濃度(g·L-1 )Table4 Minimal inhibitory concentrations of components 1-5(g·L-1 )
對(duì)乙酸乙酯(組分2)進(jìn)行分析發(fā)現(xiàn),在波長(zhǎng)320 nm處共有12個(gè)主要峰。質(zhì)譜結(jié)果:組分2中互為同分異構(gòu)體的成分多,其中相對(duì)分子質(zhì)量為354的有3個(gè)峰,相對(duì)分子質(zhì)量為368的有4個(gè)峰,相對(duì)分子質(zhì)量為336的有3個(gè)峰。參考已分離得到的化合物,推測(cè)峰1~12分別為表5所示化合物。
圖1 波長(zhǎng)320nm處青梅乙酸乙酯組分的液相圖譜Fig.1 HPLC spectra of ethyl acetate component at320nm
圖2 峰1~12質(zhì)譜圖Fig.2 MS spectra of Peak 1-12
液-質(zhì)譜聯(lián)用測(cè)定結(jié)果表明,乙酸乙酯萃取相中的化合物大多是咖啡酰莽草酸及其衍生物,相對(duì)分子質(zhì)量分別為336,354,368,382,相對(duì)分子質(zhì)量之間相差14,18,都是由阿魏酸/咖啡酸與奎尼酸/莽草酸(見圖3)?;纬?,是植物體在有氧呼吸過程中經(jīng)莽草酸途徑產(chǎn)生的一類苯丙素類化合物。分子質(zhì)量之間的差異是由于阿魏酸/咖啡酸之間相差14,奎尼酸/莽草酸之間相差18引起的。
表5 青梅乙酸乙酯萃取物中的化合物Table5 Compounds in ethyl acetate extractant of Prunus mume
圖3 阿魏酸、咖啡酸、奎尼酸、莽草酸結(jié)構(gòu)圖Fig.3 Structures of ferulic acid,caffeic acid,quinic acid and shikimic acid
Zhang等[21]從青梅中分離得到一個(gè)相對(duì)分子質(zhì)量為336的化合物,即3-O-咖啡酰莽草酸,而在液-質(zhì)譜聯(lián)用圖譜上顯示相對(duì)分子質(zhì)量為336的化合物有3個(gè)。這是因?yàn)榭Х弱CР菟峄衔镏锌Х人岬?個(gè)羥基都易與莽草酸形成酯鍵,而且3個(gè)同分異構(gòu)體(峰7,8,10)極性相似,所以推測(cè)另兩個(gè)相對(duì)分子質(zhì)量為336的化合物為4-O-咖啡酰莽草酸和5-O-咖啡酰莽草酸。
Xia[6]和Shi等[24]從青梅的花和種子里都分離到相對(duì)分子質(zhì)量為354的3-O-咖啡??崴帷?-O-咖啡??崴帷?-O-咖啡??崴?。Yan等[8]從果實(shí)中分離得到3-O-咖啡酰奎尼酸甲酯、4-O-咖啡??崴峒柞?、5-O-咖啡酰奎尼酸甲酯。相對(duì)分子質(zhì)量為354的同分異構(gòu)體一般認(rèn)為是3-O-咖啡??崴帷?-O-咖啡??崴?、5-O-咖啡??崴?。
從青梅中分離到5個(gè)相對(duì)分子質(zhì)量為368的化合物[21],分別為3-O-阿魏??崴?、5-O-阿魏??崴帷?-O-咖啡??崴峒柞ァ?-O-咖啡酰奎尼酸甲酯、5-O-咖啡酰奎尼酸甲酯。由于液相和質(zhì)譜圖譜顯示,相對(duì)分子質(zhì)量368的峰分別對(duì)應(yīng)4,6,9,12峰,因4,6峰極性相近,9,12峰極性相近,故推測(cè)4,6峰是極性較大的3-O-阿魏??崴?、5-O-阿魏??崴幔?、12峰是極性較小的3-O-咖啡??崴峒柞?、4-O-咖啡??崴峒柞?、5-O-咖啡??崴峒柞ブ械膬蓚€(gè),至于是哪兩個(gè),有待進(jìn)一步表征。
經(jīng)LC-MS分析乙酸乙酯組分,除一個(gè)小分子脂肪酸(辛酸)外,大部分化合物屬于咖啡酰莽草酸類化合物。由于阿魏酸/咖啡酸的羧基與奎尼酸/莽草酸脂環(huán)上3個(gè)羥基都容易?;?,因而同分異構(gòu)體特別豐富。由于阿魏酸/咖啡酸上的羧基也比較活潑,在環(huán)境中容易與活潑的醇類化合物形成甲酯/乙酯等酯類化合物,所以導(dǎo)致該類化合物的衍生物非常多。這在青梅乙酸乙酯萃取物中得到充分的體現(xiàn)。
本試驗(yàn)結(jié)果表明,青梅乙醇提取物具有較好的抗食源性致病菌活性,其中萃取的乙酸乙酯組分抗菌活性比乙醇提取液活性強(qiáng)??Х弱CР菟犷惢衔锸乔嗝芬宜嵋阴ポ腿∥镏械奶卣鞒煞?。提示咖啡酰莽草酸類化合物可能具有較好的抗菌活性,此有待于進(jìn)一步的驗(yàn)證。