孫樂平, 張 偉, 徐嘉良, 劉敬科, 邢 旋, 任 清,*
(1.北京工商大學(xué) 輕工科學(xué)技術(shù)學(xué)院, 北京 100048; 2.河北農(nóng)業(yè)大學(xué) 食品科技學(xué)院, 河北 保定 071001;3.河北省農(nóng)林科學(xué)院 谷子研究所, 河北 石家莊 050035)
黃酒是世界三大古酒之一,源自中國(guó),是中華民族的瑰寶。黃酒通常以稻米和黍米等谷物為主要原料,利用麥曲等作為糖化發(fā)酵劑,通過蒸煮、加曲、糖化、發(fā)酵、過濾、煎酒、貯存等工藝釀制而成[1-2]。黃酒不僅營(yíng)養(yǎng)豐富,而且具有獨(dú)特的風(fēng)味[3]。高級(jí)醇是黃酒中的重要風(fēng)味物質(zhì),是含3個(gè)以上碳原子醇類的總稱。黃酒中的高級(jí)醇主要為異丁醇、異戊醇、異丙醇、正己醇、β-苯乙醇和正丙醇等[4]。適量的高級(jí)醇賦予黃酒特有的醇香、豐滿圓潤(rùn)和協(xié)調(diào)的口感,但高級(jí)醇的含量過高,會(huì)產(chǎn)生異雜味和較強(qiáng)的致醉性[5],因此,控制黃酒中的高級(jí)醇含量對(duì)提高黃酒品質(zhì)具有重要意義。
高級(jí)醇是在發(fā)酵過程中由微生物代謝產(chǎn)生,包括氨基酸降解代謝和糖代謝合成兩種途徑[6]。在降解代謝途徑中,蛋白質(zhì)水解生成氨基酸,氨基酸在轉(zhuǎn)氨酶的作用下,將氨基轉(zhuǎn)移給α-酮戊二酸形成谷氨酸和α-酮酸,α-酮酸經(jīng)脫酸、還原后形成比原氨基酸少一個(gè)碳的高級(jí)醇;在合成代謝途徑中,葡萄糖經(jīng)過糖酵解作用和三羧酸循環(huán)產(chǎn)生了α-酮酸中間體,在酮酸脫羧酶和脫氫酶的作用下還原形成相應(yīng)的高級(jí)醇。
目前,黃酒的釀造原料除稻米和黍米外,玉米、高粱、苦蕎等具有高營(yíng)養(yǎng)、低食用性的作物也用來釀造黃酒,以期擴(kuò)大黃酒原料,增加農(nóng)作物附加值。相比其他谷物,燕麥具有更加獨(dú)特的營(yíng)養(yǎng)特性,蛋白質(zhì)含量高,氨基酸組成均衡,富含維生素、蒽酰胺和酚類等抗氧化物質(zhì)[7-8]。已有學(xué)者使用燕麥作為黃酒的釀造原料,研究燕麥黃酒發(fā)酵工藝及燕麥黃酒的抗氧化活性[9-10],但作為影響黃酒營(yíng)養(yǎng)特性和質(zhì)量特性的高級(jí)醇含量及其與微生物間的代謝關(guān)系少見報(bào)道。本研究旨在檢測(cè)燕麥黃酒發(fā)酵過程中的高級(jí)醇變化和微生物動(dòng)態(tài),分析高級(jí)醇產(chǎn)生的微生物機(jī)制,為燕麥黃酒品質(zhì)控制提供理論依據(jù)。
燕麥,壩莜1號(hào)(張家口市農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供);黃酒酒曲,北宗黃酒麥曲。
50/30 μm DVB/CAR/PDMS固相微萃取纖維頭和57330- U型固相微萃取手柄,美國(guó)Supelco公司;2010 PLUS型氣相色譜質(zhì)譜儀,日本島津株式會(huì)社;E.Z.N.A.土壤DNA試劑盒,美國(guó)Omega Bio-Tek, Norcross, GA公司;GeneAmp 9700型PCR儀,美國(guó)ABI 公司;Illumina MiSeq平臺(tái),美國(guó)Illumina公司。
1.3.1燕麥黃酒的釀造
將燕麥淘洗干凈并浸泡24 h,加入3倍去離子水煮熟,加入0.1%糖化酶糖化60 min,隨后加入15%的黃酒酒曲拌勻,裝入黃酒發(fā)酵罐中28 ℃下發(fā)酵10 d。每?jī)商烊右淮?,取約10 g樣品4 000r/min離心10 min,取上清液,用于測(cè)定高級(jí)醇。剩余約30 g樣品轉(zhuǎn)移到無菌離心管中,儲(chǔ)存在-80 ℃冰箱中用于提取DNA。每個(gè)樣品(記作:OD0、OD2、OD4、OD6、OD8、OD10)取3組平行,共計(jì)測(cè)定18個(gè)樣品(記作:OD0_1至OD0_3,OD2_1至OD2_3,OD4_1至OD4_3,OD6_1至OD6_3,OD8_1至OD8_3,OD10_1至OD10_3)。
1.3.2燕麥黃酒中高級(jí)醇的測(cè)定
通過頂空固相微萃取/氣相色譜- 質(zhì)譜聯(lián)用儀(HS-SPME/GC- MS)分析酒樣中的高級(jí)醇種類及含量。取0.5 mL燕麥黃酒發(fā)酵液加入SPME玻璃小瓶頂空瓶中,再加入5.44 mL體積分?jǐn)?shù)為15%的乙醇和60 μL內(nèi)標(biāo)物(2-辛醇,質(zhì)量濃度為8 800 μg/L)。將萃取纖維頭插入SPME小瓶中,50 ℃溫水浴下超聲萃取45 min。萃取結(jié)束后,將萃取纖維頭插入GC- MS進(jìn)樣口,在250 ℃下熱解吸7 min。通過DB- 氣相色譜柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm)分析樣品。
GC- MS條件:初始溫度為40 ℃,保持3 min,以6 ℃/min的速率升高至100 ℃,以10 ℃/min的速率升高至230 ℃并保持7 min。載氣為純度大于99.999%的高純度氦氣,不分流,氣體流速為1.0 mL/min,進(jìn)樣器和檢測(cè)器溫度均設(shè)定為250 ℃,離子源溫度設(shè)定為230 ℃。質(zhì)譜儀的電離方式為電子轟擊電離(EI),EI發(fā)射電流為50 μA,EI的離子能量為70 eV。m/z掃描33~400 u范圍內(nèi)的總離子流。通過NIST譜庫(kù)對(duì)比出高級(jí)醇。
高級(jí)醇的半定量分析是通過2-辛醇作為內(nèi)標(biāo)進(jìn)行。通過用GC- MS檢測(cè)的高級(jí)醇和內(nèi)標(biāo)的峰面積代入式(1),計(jì)算燕麥黃酒中高級(jí)醇的含量。
(1)
式(1)中:C為燕麥黃酒中某種高級(jí)醇的質(zhì)量濃度,μg/L;Cis為樣品中內(nèi)標(biāo)物的質(zhì)量濃度,μg/ L;Ac為燕麥黃酒中待測(cè)高級(jí)醇的峰面積;Ais為內(nèi)標(biāo)物峰面積。
1.3.3燕麥黃酒發(fā)酵中微生物多樣性的測(cè)定
利用土壤DNA試劑盒從發(fā)酵物中抽提微生物DNA。完成基因組DNA抽提后,利用1%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)抽提的基因組DNA質(zhì)量和純度。通過聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)(PCR)擴(kuò)增細(xì)菌的16S rRNA基因的V3~V4高變區(qū)。PCR反應(yīng)體系的過程設(shè)定為:95 ℃ 5 min;95 ℃ 30 s;55 ℃ 30 s;72 ℃ 40 s;72 ℃延伸10 min,25個(gè)循環(huán),引物為338F(5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG-3′)和806R(5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT-3′)。同時(shí),通過PCR擴(kuò)增真菌的ITS1區(qū)域,PCR反應(yīng)體系的過程設(shè)定為:95 ℃ 2 min;95 ℃ 30 s;61 ℃ 30 s;72 ℃ 45 s,30個(gè)循環(huán),72 ℃延伸10 min。引物為ITS1F(5′-AxxxCTTGGTCATTTAGAGGAAGTAA-3′)和ITS2(5′-BGCTGCGTTCTTCATCGATGC-3′)[11]。PCR 產(chǎn)物用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。純化的擴(kuò)增子以等物質(zhì)的量比匯集,并在Illumina MiSeq平臺(tái)上進(jìn)行測(cè)序(2×300)。
Miseq測(cè)序得到的PE reads先根據(jù)overlap關(guān)系進(jìn)行拼接,同時(shí)對(duì)序列質(zhì)量通過Trimmomatic進(jìn)行質(zhì)控和過濾,通過FLASH做數(shù)據(jù)合并,進(jìn)行OTU(operational taxonomic unit)聚類分析和物種分類學(xué)分析。使用Usearch (版本7.0 http://drive5.com/uparse/)以97%相似性為截止值對(duì)非重復(fù)序列(不含單序列)進(jìn)行OTU聚類,在聚類過程中去除嵌合體,最終生成OTU表格。采用RDP classifier貝葉斯算法對(duì)97%相似水平的OTU 代表序列進(jìn)行分類學(xué)分析,分別在各分類水平:domain(域)、kingdom(界)、phylum(門)、class(綱)、order(目)、family(科)、genus(屬)、species(種)統(tǒng)計(jì)各樣本的群落組成。16S細(xì)菌和古菌核糖體使用Silva數(shù)據(jù)庫(kù)[10](Release128 http://www.arb-silva.de);ITS 真菌使用Unite[11](Release 7.0 http://unite.ut.ee/index.php)真菌數(shù)據(jù)庫(kù)。基于OTU聚類分析結(jié)果,進(jìn)行多樣性指數(shù)分析;基于分類學(xué)信息,可以在各個(gè)分類水平上進(jìn)行群落結(jié)構(gòu)的統(tǒng)計(jì)。
通過單樣本的多樣性(Alpha多樣性)分析微生物群落的多樣性,使用Simpson指數(shù)估算樣本中微生物多樣性,Simpson指數(shù)值越大,說明群落多樣性越低。通過計(jì)算物種之間的相關(guān)性,構(gòu)建物種相關(guān)性網(wǎng)絡(luò),當(dāng)物種與物種之間的相關(guān)系數(shù)符合0.05閾值時(shí)則構(gòu)建連線。最后使用Networkx復(fù)雜網(wǎng)絡(luò)分析工具包,獲得物種和樣本的組內(nèi)相關(guān)信息。16S功能預(yù)測(cè)則是通過PICRUSt對(duì)OTU豐度表進(jìn)行標(biāo)準(zhǔn)化,去除16S marker基因在物種基因組中的拷貝數(shù)目的影響,根據(jù)KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)的信息,獲得代謝通路的3個(gè)水平信息,并分別得到3個(gè)水平的代謝路徑豐度表。
1.3.4燕麥黃酒中高級(jí)醇與微生物關(guān)聯(lián)分析
為將高級(jí)醇代謝與微生物代謝聯(lián)系起來,利用皮爾遜(Person)相關(guān)性建立了高級(jí)醇和屬水平微生物的顯著性關(guān)聯(lián)。使用Benjamini-Hochberg方法通過FDR調(diào)整P值和P校正值,利用R語(yǔ)言編程,根據(jù)所有重要的關(guān)聯(lián)構(gòu)建關(guān)聯(lián)網(wǎng)絡(luò),P值設(shè)定為P≤0.05。
通過GC- MS檢測(cè)以燕麥為原料釀造黃酒過程中高級(jí)醇的種類及含量,結(jié)果見表1。由表1可見,整個(gè)發(fā)酵過程中共檢測(cè)到包括β-苯乙醇在內(nèi)的18種高級(jí)醇,其中發(fā)酵末期(第10天)檢測(cè)到6種高級(jí)醇,分別是β-苯乙醇、異戊醇、異丁醇、2-甲基-2-乙基- 十三醇、1-十六烷醇和2-[2-(乙烯氧基)乙氧基]乙醇。高級(jí)醇的總含量在發(fā)酵末期達(dá)到最大值,為(15 011.968±6.050)μg/L。所有高級(jí)醇中,穩(wěn)定存在的高級(jí)醇(檢出次數(shù)≥4)包括:β-苯乙醇、異戊醇、2-甲基-2-乙基- 十三醇和1-十六烷醇。在投料當(dāng)天,即發(fā)酵第0天,(Z,Z)-2-(9,12-十八碳二烯基氧基)- 乙醇是最主要的高級(jí)醇,占當(dāng)日高級(jí)醇總檢出量的43.13%;發(fā)酵第2天的主要高級(jí)醇是β-苯乙醇,占當(dāng)日高級(jí)醇總檢出量的50.80%;在發(fā)酵的第4天,β-苯乙醇和異戊醇都具有較高的含量,分別占當(dāng)日總檢出量的40.22%和44.33%;在發(fā)酵第6天和第10天,2-甲基-2-乙基- 十三醇都具有較高的含量,分別占各天高級(jí)醇總檢出量的56.89%和58.19%。同時(shí),在整個(gè)發(fā)酵過程中,2-甲基-2-乙基- 十三醇具有最高的單次檢出量,為(8 734.937±0.905) μg/L。3,3-二甲基-2-戊醇、植物醇和叔十六烷硫醇僅在投料當(dāng)天被檢測(cè)到。
表1 高級(jí)醇在燕麥黃酒發(fā)酵過程中的變化
“—”表示未檢出。
圖1 燕麥黃酒發(fā)酵過程中細(xì)菌門水平和屬水平的多樣性Fig.1 Bacterial diversity during fermentation of oat Huangjiu on phylum level and genus level
采用MiSeq二代測(cè)序技術(shù)研究燕麥黃酒中細(xì)菌多樣性,經(jīng)過有效序列篩選后18個(gè)樣品共獲得791 608個(gè)有效序列,在各個(gè)生物學(xué)分類水平上分別獲得:1界,27門,50綱,104目,192科,413屬;在3%非相似度(cutoff)水平上分析發(fā)酵液中細(xì)菌多樣性,獲得1 124個(gè)OUT。燕麥黃酒發(fā)酵過程中細(xì)菌多樣性如圖1。門水平上的最優(yōu)勢(shì)菌門為厚壁菌門(Firmicutes),其相對(duì)豐度呈先急劇升高后緩慢降低再稍有回升的趨勢(shì);變形菌門(Proteobacteria)是次優(yōu)門,其相對(duì)豐度呈現(xiàn)先急劇降低再逐漸緩慢升高的趨勢(shì);擬桿菌門(Bacteroidetes)在發(fā)酵第8天呈現(xiàn)較高的相對(duì)豐度。屬水平上乳球菌屬(Lactococcus)是最優(yōu)勢(shì)屬,從發(fā)酵第2天起,其相對(duì)豐度呈現(xiàn)不斷降低的趨勢(shì);乳桿菌屬(Lactobacillus)在第6天有較高的相對(duì)豐度;片球菌屬(Pediococcus)在發(fā)酵第10天有較高的相對(duì)豐度。
通過Alpha多樣性分析(Simpson指數(shù))發(fā)現(xiàn)(如圖2),發(fā)酵過程中微生物的細(xì)菌多樣性在投料開始時(shí)較高,在發(fā)酵第2天急劇降低,隨后逐漸升高。
圖2 燕麥黃酒發(fā)酵過程中細(xì)菌Alpha多樣性分析Fig.2 Bacterial Alpha diversity analysis during fermentation of oat Huangjiu
圖3 燕麥黃酒細(xì)菌相關(guān)性網(wǎng)絡(luò)分析Fig.3 Bacterial network analysis of oat Huangjiu
對(duì)不同發(fā)酵時(shí)間樣本間的物種豐度信息進(jìn)行相關(guān)性分析,物種在黃酒發(fā)酵樣本中的共存在關(guān)系和物種間的相互作用情況如圖3。所有菌屬間所建立的相關(guān)性均為正相關(guān),其中厚壁菌門(Firmicutes)和擬桿菌門(Bacteroidetes)的多屬微生物之間建立了復(fù)雜的獨(dú)立正相關(guān)性;Spongiimonas、發(fā)光桿菌屬(Photobacterium)和弧菌屬(Vibro)相互間建立正相關(guān)并且未與其他菌屬建立相關(guān)性。
根據(jù)Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes (KEGG)數(shù)據(jù)庫(kù)的信息,可以獲得代謝通路信息,用PICRUSt獲得代謝通路的3個(gè)水平信息,level 1和level 2水平的豐度如圖4。膜運(yùn)輸、氨基酸代謝和碳水化合物代謝是相對(duì)豐度最高的代謝通路。
圖4 KEGG代謝通路水平1和水平2相對(duì)豐度Fig.4 Relative abundance of KEGG pathway on level 1 and level 2
對(duì)18個(gè)樣品進(jìn)行測(cè)序,研究發(fā)酵物的真菌多樣性,優(yōu)化后共得到648 999個(gè)序列,在各個(gè)分類水平上分別包括1界、3門、4綱、4目、8科、8屬。在3%非相似度(cutoff)水平上分析發(fā)酵液中真菌多樣性,獲得13個(gè)OUT。燕麥黃酒發(fā)酵液中的門水平和屬水平的微生物相對(duì)豐度如圖5。圖5中,門水平上子囊菌門(Ascomycota)占有絕對(duì)的優(yōu)勢(shì),其相對(duì)豐度為99.97%~100.00%;屬水平上酵母菌屬(Saccharomyces)是最具優(yōu)勢(shì)的菌屬,其相對(duì)豐度為99.72% ~ 99.98%。
通過Alpha多樣性分析(Simpson指數(shù))(如圖6)發(fā)現(xiàn),發(fā)酵過程中的微生物真菌多樣性無明顯變化,且真菌多樣性較低。
圖5 燕麥黃酒發(fā)酵過程中真菌門水平和屬水平的多樣性Fig.5 Fungal diversity during fermentation of oat Huangjiu on phylum level and genus level
圖6 燕麥黃酒發(fā)酵過程中真菌Alpha多樣性分析Fig.6 Fungal Alpha diversity analysis during fermentation of oat Huangjiu
利用Person相關(guān)性預(yù)測(cè)燕麥黃酒發(fā)酵過程中微生物與高級(jí)醇的關(guān)聯(lián),設(shè)定P≤0.05,在檢測(cè)到的18種高級(jí)醇中有16種高級(jí)醇與297屬微生物共建立了869項(xiàng)關(guān)聯(lián)。1-(十二烷)乙醇與153屬微生物建立了關(guān)聯(lián),是建立關(guān)聯(lián)數(shù)最多的高級(jí)醇;2-苯氧乙醇與151屬微生物建立了關(guān)聯(lián);3,3-二甲基-2-戊醇、植物醇和叔十六烷硫醇都與136屬微生物建立了關(guān)聯(lián);(Z,Z)-2-(9,12-十八碳二烯基氧基)-乙醇與125屬微生物建立關(guān)聯(lián);2-[2-(乙烯氧基)乙氧基]-乙醇、異丁醇和1-十六烷醇都僅與7屬微生物建立關(guān)聯(lián);1-十二烷醇、亞麻醇、1-十一烷醇和2-乙基- 正葵醇都僅與2屬微生物相關(guān)聯(lián);異辛醇和異戊醇都與嗜熱真菌屬(Thermomyces)建立了關(guān)聯(lián);β-苯乙醇與根霉菌屬(Rhizopus)建立了關(guān)聯(lián)。
圖7 FDR校正后燕麥黃酒中微生物與高級(jí)醇代謝的相關(guān)性預(yù)測(cè)Fig.7 Correlation between microorganisms and higher alcohols of oat Huangjiu after adjusting by FDR
利用False Discovery Rate (FDR)對(duì)P值進(jìn)行校正,設(shè)定P(adjust)≤0.05,發(fā)現(xiàn)共有8種高級(jí)醇與244屬微生物建立了675項(xiàng)更緊密的關(guān)聯(lián)(如圖7)。其中,1-(十二烷)乙醇仍與124屬微生物建立關(guān)聯(lián),建立關(guān)聯(lián)數(shù)最多;2-苯氧乙醇與118屬微生物建立了緊密關(guān)聯(lián);3,3-二甲基-2-戊醇、植物醇和叔十六烷硫醇都與110屬微生物建立了緊密的關(guān)聯(lián);(Z,Z)-2-(9,12-十八碳二烯基氧基)-乙醇與92屬微生物建立緊密關(guān)聯(lián);2-[2-(乙烯氧基)乙氧基]-乙醇與片球菌屬(Pediococcus)等7屬微生物建立關(guān)聯(lián); 1-十六烷醇與馬拉色氏霉菌屬(Malassezia)等4屬微生物建立緊密關(guān)聯(lián)。高豐度的微生物中,羅爾斯通菌屬(Ralstonia)和紅球菌屬(Rhodococcus)均與高級(jí)醇的代謝建立了關(guān)聯(lián)。
β-苯乙醇作為黃酒中常見的高級(jí)醇之一,是本研究中一直穩(wěn)定存在的高級(jí)醇。β-苯乙醇是一種具有持久的玫瑰型香味的高級(jí)芳香醇,是玫瑰香氣的主要成分,天然存在于多種植物花、葉及其提取物中,在食品領(lǐng)域和日用化學(xué)品中有著廣泛的應(yīng)用。一定濃度的β-苯乙醇能夠抑制革蘭氏陰性菌、球菌、桿菌以及部分真菌的生長(zhǎng)繁殖,具有抑菌效果[12]。本研究發(fā)現(xiàn),乳球菌在發(fā)酵中后期受到抑制,其抑制有可能來自β-苯乙醇。一些真菌和酵母菌株具有生產(chǎn)β-苯乙醇的能力[13]。KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)顯示,β-苯乙醇在微生物機(jī)體內(nèi)的主要代謝路徑是苯丙氨酸代謝途徑,其生成是通過L-苯丙氨酸去羧基生成苯乙胺,苯乙胺由于去氨基作用生成苯乙醛,苯乙醛再經(jīng)還原作用生成β-苯乙醇[14]。研究表明,多種酵母,如黏紅酵母(Rhodotomlaglutinis)、畢赤酵母(Pichiapastoris)、馬克斯克魯維酵母(Kluyveromycesmarxianus)、釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)、異常漢遜釀酒酵母(Unusualhansonsaccharomycescerevisiae)、乳酸克魯維酵母(Kluyveromyceslactis)及真菌,如黑曲霉(Aspergillusniger)、猴頭菌(Hericiumerinaceus)、白地霉(Geotrichumcandidum)具有生物轉(zhuǎn)化L-苯丙氨酸生成β-苯乙醇的能力[15-17]。β-苯乙醇與苯乙醛之間可以相互轉(zhuǎn)化,本研究發(fā)現(xiàn),根霉屬菌(Rhizopus)與β-苯乙醇的代謝呈負(fù)相關(guān),因此,根霉菌屬可能參與β-苯乙醇轉(zhuǎn)化生成苯乙醛。
異戊醇是酒類發(fā)酵過程中最主要的高級(jí)醇組分。Atsumi等[18]利用13C核磁共振波譜法和氣相色譜質(zhì)譜法發(fā)現(xiàn),亮氨酸經(jīng)由Ehrlich途徑代謝可得到異戊醇。異戊醇在本實(shí)驗(yàn)中也占有較高的比例,其含量在發(fā)酵中后期均高于β-苯乙醇,因此,控制異戊醇的產(chǎn)量對(duì)控制黃酒發(fā)酵中高級(jí)醇含量具有重要意義。研究表明,異戊醇的生成量不嚴(yán)格隨酵母添加量的增多而增多[19]。異戊醇可能被分解或轉(zhuǎn)化,其可能經(jīng)酯化反應(yīng)與酸反應(yīng)生成酯,也有可能在微生物的作用下轉(zhuǎn)化生成其他物質(zhì)。關(guān)聯(lián)分析發(fā)現(xiàn),異戊醇的產(chǎn)生與嗜熱真菌屬(Thermomyces)呈負(fù)相關(guān),嗜熱真菌屬可能參與異戊醇的分解代謝,可能對(duì)高級(jí)醇的控制具有積極效果。
異丁醇可用作生物燃料,同時(shí)也是人工麝香、精油和藥物的重要原料[20]。Dickinson 等[21]的研究結(jié)果表明,釀酒酵母內(nèi)能夠通過纈氨酸代謝途徑合成異丁醇,梭狀芽胞桿菌是丁醇的天然生產(chǎn)者,能在合適的發(fā)酵條件下產(chǎn)生大量丁醇。本研究發(fā)現(xiàn),異丁醇與片球菌屬(Pediococcus)和變形桿菌屬(Proteus)等7屬微生物建立關(guān)聯(lián)且均為正相關(guān),它們均可作為異丁醇生產(chǎn)的潛在菌屬,對(duì)高級(jí)醇的控制可能具有重要意義。
2-苯氧乙醇是一種略帶玫瑰香味、低揮發(fā)、高沸點(diǎn)的無色油狀液體[22],是一種重要的化工原料,主要通過工業(yè)合成的方法獲取[23]。由微生物代謝產(chǎn)生2-苯氧乙醇尚未見報(bào)道。根據(jù)檢出結(jié)果發(fā)現(xiàn),2-苯氧乙醇顯示出逐漸上升的趨勢(shì)且在發(fā)酵初始階段有原料帶入。經(jīng)過FDR校正后,2-苯氧乙醇仍與酵母屬(Saccharomycopsis)等118屬微生物建立關(guān)聯(lián),是建立關(guān)聯(lián)數(shù)較多的高級(jí)醇,由此可推測(cè)其代謝基質(zhì)較為復(fù)雜,且這118屬微生物可能參與其生物代謝過程。
在檢測(cè)到的18種高級(jí)醇中包括3種烷醇,分別為:1-十一烷醇、1-十二烷醇和1-十六烷醇。十二個(gè)碳原子以上蠟狀固體的飽和一元醇被稱為高級(jí)烷醇,含有十二個(gè)碳原子以下無色液體的鏈狀飽和一元醇被稱為低級(jí)烷醇。高級(jí)烷醇在自然界中的存在極為廣泛,通常以高級(jí)脂肪酸蠟酯的形式存在,廣泛分布于植物的根、莖、葉、果皮及籽仁中。高級(jí)烷醇對(duì)動(dòng)植物具有多種生理活性,可顯著降低膽固醇水平,具有抗血栓形成等多重作用[24]。高級(jí)烷醇在微生物體內(nèi)主要有3條脂肪醇合成途徑:以脂酰- ACP為底物合成脂肪醇;以自由脂肪酸為底物合成脂肪醇;以脂酰- CoA 為底物合成脂肪醇[25-27]。本研究中最主要的高級(jí)烷醇為1-十六烷醇,其含量呈現(xiàn)出先升高后降低的趨勢(shì)。KEGG數(shù)據(jù)庫(kù)顯示,1-十六烷醇代謝路徑主要存在于脂肪酸分解代謝過程,十六烷(脂肪酸)在長(zhǎng)鏈醛脫氫酶的作用下生成十六醛[28],隨后長(zhǎng)鏈醇脫氫酶將十六醛轉(zhuǎn)化為十六烷醇。本研究將十六烷醇與馬拉色氏霉菌屬(Malassezia)、威克漢姆酵母屬(Wickerhamomyces)、Mucispirillum和Tyzzerella_3均建立了緊密的正相關(guān)。這些菌屬與十六烷醇的相關(guān)性均大于0.95,可能參與了十六烷醇的代謝,是十六烷醇的潛在生產(chǎn)菌屬。
酵母菌屬作為生產(chǎn)酒精的主要微生物,是發(fā)酵過程中不可或缺的重要菌屬之一。針對(duì)黃酒中高級(jí)醇的含量及種類的研究多集中于酵母品種、充氧量、酵母接種量、發(fā)酵溫度等對(duì)于高級(jí)醇代謝的影響[29]。其他微生物菌屬,尤其是細(xì)菌對(duì)高級(jí)醇代謝有一定影響,對(duì)細(xì)菌種類和豐度的調(diào)控可能成為調(diào)控高級(jí)醇含量的另一有效途徑。以燕麥為原料釀造黃酒是黃酒釀造工業(yè)的一個(gè)新的嘗試,對(duì)燕麥黃酒中重要質(zhì)量指標(biāo)之一的高級(jí)醇進(jìn)行研究,對(duì)燕麥黃酒后續(xù)研究和開發(fā)將具有重要意義。