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    大孔樹脂純化薜荔莖總黃酮的工藝研究

    2020-02-04 07:38王曉華韋漢燕桂勁松韋巧慧
    關(guān)鍵詞:薜荔純化總黃酮

    王曉華 韋漢燕 桂勁松 韋巧慧

    【摘?要】?目的:研究AB-8大孔樹脂純化薜荔莖總黃酮的工藝條件。 方法:采用紫外分光光度法測定薜荔莖中總黃酮的含量。以靜態(tài)吸附和動態(tài)解吸為考察指標(biāo),確定了薜荔莖中總黃酮純化的最佳工藝參數(shù)。 結(jié)果: AB-8型大孔吸附樹脂純化薜荔莖總黃酮的優(yōu)化工藝條件為:上樣濃度為0.5g生藥材/mL,樣品溶液pH為7,上樣量為14BV,上樣速度為1mL/min,靜態(tài)吸附4h。先用5BV的蒸餾水沖洗,然后用8BV 70%乙醇以1mL/min的速度洗脫大孔樹脂。經(jīng)AB-8樹脂處理后的薜荔莖總黃酮質(zhì)量分?jǐn)?shù)達(dá)64.32%。 結(jié)論:優(yōu)化的純化工藝穩(wěn)定可行,可以用于純化薜荔莖中的總黃酮。

    【關(guān)鍵詞】?薜荔;總黃酮;大孔樹脂;純化

    【中圖分類號】R284.2?【文獻(xiàn)標(biāo)志碼】 A【文章編號】1007-8517(2020)24-0034-05

    Abstract:Objective To investigate the technology of purification of total flavonoids from the stem of Ficus pumila L.by AB-8 macroporous resin. Methods The content of total flavonoids in the stem of Ficus pumila L. was measured by UV , dynamic adsorption and static adsorption were took as index to optimize the technology of purification of total flavonoids. Results The optimal purification conditions were as follows: The concentration of sample was 0.5g/mL , sample pH value was 7, sample volume was 14 column volume, the flow rate was 1mL/min, statically adsorb 4h, rinse with 5 column volume distilled water for impurities, the macroporous resin was eluted with 8 column volume of 70% ethanol at a rate of 1mL/min. The purity of total flavonoids increased to 64.32%. Conclusions Optimal purification technology is stable and reliable, which is suitable for purification of the total flavonoids from the stem of Ficus pumila L.

    Keywords:Ficus pumila L.; Total Flavonoids;Macroporous Resin; Purification

    薜荔(Ficus pumila L.)來源于??崎艑賉1],主要分布在廣西、湖南、四川等省區(qū),其有相當(dāng)膨大的成熟花托,像無花果,俗稱“鬼球、鬼饅頭”,最早于明朝的《本草綱目》中記載。薜荔在我國藥用歷史悠久,根、莖、葉和果實為藥用部位,具有祛風(fēng)除濕、固腎填精、活血通絡(luò)、消炎解毒、抗菌、增強免疫力、抗腫瘤、抗感染、消炎鎮(zhèn)痛、驅(qū)蟲等作用[2]。近年研究結(jié)果顯示,薜荔植株的各部位均含有黃酮類物質(zhì),尤以莖部含量豐富。黃酮類化合物是一類有抗氧化作用的化合物,其生理活性強,能抗動脈硬化,降低膽固醇,抗痙攣、抗輻射[3]。薜荔植株中的黃酮含量頗高,具有很高的開發(fā)利用價值,但目前缺乏對薜荔莖中黃酮類成分的研究。本實驗選擇AB-8大孔吸附樹脂,通過靜態(tài)吸附和動態(tài)解吸試驗,篩選出薜荔莖總黃酮純化的最佳工藝條件,為薜荔莖總黃酮的開發(fā)利用提供參考。

    1?儀器與材料

    1.1?材料?薜荔莖藥材,購自廣西桂林中草藥批發(fā)市場,經(jīng)桂林醫(yī)學(xué)院王曉華副教授鑒定為??崎艑俎道驠icus pumila Linn的干燥莖;蘆丁對照品(中國藥品生物制品鑒定所);亞硝酸鈉(AR 汕頭市西隴化工股份有限公司,批號:130902);九水合硝酸鋁(AR 汕頭市西隴化工股份有限公司,批號:140304);氫氧化鈉(AR 武漢宏大化學(xué)試劑廠);AB-8型大孔樹脂(天津市海光化工有限公司)。

    1.2?主要儀器?CP225D電子分析天平;SHZ-B水浴恒溫振蕩器(上海博迅實業(yè)有限公司醫(yī)療設(shè)備廠);UV-1600PC型紫外可見分光光度計(上海美譜達(dá)儀器有限公司);SHB-IIIT循環(huán)水式多用真空泵(鄭州長城科工貿(mào)有限公司);RE-5203旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀(上海亞榮生化儀器廠)。

    2?方法與結(jié)果

    2.1?薜荔莖總黃酮的測定

    2.1.1?對照品溶液的制備?精密稱取蘆丁對照品10.05mg干燥至恒重,置于50mL容量瓶中,用70%乙醇溶液溶解,稀釋至刻度,搖勻,即濃度為0.201mg/mL溶液。

    2.1.2?最大吸收波長的確定?準(zhǔn)確吸取蘆丁對照品溶液1.0mL,置于25mL容量瓶中,加入5%的亞硝酸鈉溶液1.0mL將其振蕩后靜置6min,加入1.0mL的10%硝酸鋁溶液,將其振蕩放置6min后加入4.0mL的4%氫氧化鈉溶液,最后用70%乙醇溶液調(diào)至刻度線[4],振勻放置15min顯色。以不含對照品溶液的相應(yīng)試劑作為空白對照,測定200~800nm 掃描波長范圍內(nèi)的吸光度,得到最大吸收波長為503nm。因此,以503nm作為測量波長。

    2.1.3?線性關(guān)系的確定?準(zhǔn)確吸取蘆丁對照品溶液0、1.0、2.0、3.0、4.0、5.0、6.0mL,置于25mL容量瓶中,照“2.1.2”項下方法,以對照品溶液的濃度為橫坐標(biāo),吸光度為縱坐標(biāo),測定503nm處的吸光度,得到標(biāo)準(zhǔn)曲線:A=10.382 C+0.0034(r=0.9993),結(jié)果如圖1所示。蘆丁濃度為0~0.0482mg/mL時線性關(guān)系較好。

    2.1.4?薜荔莖提取液的制備?將薜荔莖藥材粉碎,過80目篩。取100g薜荔莖粉末,置2000mL圓底燒瓶中,加入十倍量70%乙醇浸漬30min,裝上冷凝回流裝置,加熱回流提取共3次,每次1h,趁熱抽濾[5],最后用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀減壓濃縮至濃度為1g生藥材/mL薜荔莖提取液,作為樣品溶液。

    2.1.5?薜荔莖總黃酮的含量測定?精密吸取1.0mL薜荔莖提取液,用70%乙醇稀釋至10mL,搖勻,再從中吸取0.5mL放置于25mL容量瓶中。然后按“2.1.2”項下方法加入顯色試劑,以70%乙醇和相應(yīng)的顯色劑為空白,測定503nm處的吸光度值,并根據(jù)回歸方程計算總黃酮含量[6]。得薜荔莖總黃酮含量為6.25mg/mL。

    2.2?大孔樹脂的預(yù)處理?取適量的AB-8大孔樹脂置于燒杯中,用適量95%酒精浸漬AB-8大孔樹脂24h, 使其充分膨脹后采取濕法進(jìn)行裝柱,用95%酒精動態(tài)沖洗樹脂,再用蒸餾水將樹脂沖洗直到嗅不到酒精味;將5%鹽酸加到柱子里浸泡樹脂2h后用蒸餾水動態(tài)沖洗樹脂使洗脫液的pH值呈中性, 然后將5% NaOH溶液加到柱子中浸泡樹脂2h后用蒸餾水動態(tài)沖洗樹脂至洗脫液呈中性;用95% 乙醇沖洗樹脂使洗脫液與水混合(1∶5)至無白濁現(xiàn)象產(chǎn)生, 最后用蒸餾水沖洗樹脂至洗脫液無酒精味, 留著備用[7]。

    2.3?AB-8樹脂吸附因素的考察

    2.3.1?AB-8大孔吸附樹脂靜態(tài)吸附和靜態(tài)解吸實驗

    2.3.1.1?靜態(tài)吸附?準(zhǔn)確稱取經(jīng)過處理的2.0g(濕質(zhì)量) AB-8大孔樹脂放入50mL具塞三角燒瓶中,加入30mL薜荔莖提取液(1g生藥材/mL)。將塞子蓋緊并于37℃水浴中振蕩12h。取上清液測定吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算總黃酮的濃度,得出靜態(tài)吸附率和吸附容量。 吸附量Q=(C0-Cr)V/W。在公式中,Q是吸附量(mg·g-1樹脂), C0是初始質(zhì)量濃度 (mg/mL),Cr是吸附后的黃酮含量 (mg/mL),V是溶液的體積 (mL), W是樹脂的質(zhì)量(g)。吸附率=(吸附前黃酮含量/吸附后黃酮含量)/吸附前黃酮含量×100%。

    由表1可知,樹脂靜態(tài)吸附量為50.03mg/g,吸附率為53.36%。

    2.3.1.2?靜態(tài)解吸?將已靜態(tài)吸附的飽和大孔樹脂用蒸餾水沖洗到洗脫液呈無色。然后加入70%乙醇30mL并在37℃水浴振蕩器上搖動12h解吸。解吸后,通過吸取上清液測定吸光度。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線方程計算總黃酮的濃度,得出靜態(tài)解吸率。解吸率D(%)=(V×Cr)/(W×D)×%。式中:Q為吸附量(mg·g-樹脂);Cr為解吸后溶液中黃酮的含量(mg/mL);V是溶液的體積(mL);W為樹脂的質(zhì)量(g)。由表2可知,靜態(tài)解吸后的解吸率為84.61%。

    2.3.1.3?靜態(tài)吸附動力學(xué)研究?稱量2.0g(濕質(zhì)量)已處理過的樹脂置于50mL的帶塞三角瓶中,再加入30mL濃度為1g生藥材/mL的薜荔莖提取液,在恒溫器 37℃處晃動2h, 每1h吸收一次上清液, 并測定吸光度值。以標(biāo)準(zhǔn)曲線方程確定總黃酮濃度及吸附率, 將時間作為橫向坐標(biāo), 吸附率為縱向坐標(biāo),繪制動力學(xué)曲線。從圖2結(jié)果可以看出, AB-8大孔樹脂對薜荔莖總黃酮的吸附是一種快速平衡型吸附,隨著吸附時間的增加,吸附速率在3h內(nèi)迅速下降,4h后吸附速率穩(wěn)定,吸附平衡基本達(dá)到。因此,吸附時間被確定為4h。薜荔莖總黃酮的富集純化使用AB-8大孔樹脂適宜。

    2.3.2?吸附條件的考察

    2.3.2.1?樣品液的質(zhì)量濃度的影響?分別加入70%的乙醇溶液稀釋已制得的薜荔莖1g生藥材/mL濃度的提取液,得到質(zhì)量濃度分別為0.25、0.50、0.75 g生藥材/mL的樣品液。稱量4份已預(yù)處理過的 AB-8大孔樹脂,每2.0g(濕質(zhì)量)為一份于50mL的具塞三角瓶中,分別加入質(zhì)量濃度為0.25、0.50、0.75g生藥材/mL的樣品液30mL,在恒溫水浴振動篩上于37℃放置4h,然后取上清液測量吸光度,得出總黃酮的濃度與吸附率。由表3可以看出,當(dāng)該樣品液濃度為0.5g生藥材/mL時,薜荔莖總黃酮的吸附率最佳,因此選擇0.5g生藥材/mL作為樣品液的質(zhì)量濃度。

    2.3.2.2?pH值的影響?稱取5份已預(yù)處理的AB-8大孔樹脂,每2.0 g(濕質(zhì)量)為1份,把它們分別放進(jìn)一個50mL的錐形瓶里,將濃度為1g生藥材/mL的提取液30mL加入瓶中, pH調(diào)節(jié)至3、4、5、6、7在37℃下振蕩3h。測量吸光度,計算得出總黃酮的濃度與吸附率。從表4可以看出,當(dāng)pH在3 ~ 6范圍時,AB-8大孔樹脂對薜荔莖總黃酮具有較好的吸附率,當(dāng)吸附介質(zhì)pH值為7時,吸附率明顯提高, 因此,吸附劑的pH值調(diào)到7最優(yōu)。

    2.3.2.3?泄漏曲線的繪制與上樣量的確定?準(zhǔn)確稱取5.0g經(jīng)過預(yù)處理的AB-8大孔樹脂,濕法裝柱,取0.5g生藥材/mL濃度(pH調(diào)為7)的薜荔莖提取液,樣品流速為1mL/min, 每10mL收集1個樣品, 收集18份樣品,測定吸光度值并計算總黃酮的濃度, 將藥物溶液體積作為橫坐標(biāo),將未吸附率繪制在縱坐標(biāo)上以確定樣品上柱體積。未吸附率=流出液中成分含量/上柱前原液中流出物含量。圖3結(jié)果顯示,上樣量達(dá)140mL時發(fā)生明顯泄漏,樹脂柱不能完全吸附藥液中的黃酮成分,所以上樣量為140mL時更合理,故確定140mL(14 BV)作為最大上樣量。

    2.3.3?洗脫條件的考察

    2.3.3.1?洗脫劑體積分?jǐn)?shù)的影響?取5份已預(yù)處理的AB-8大孔樹脂,分別放到50mL的具塞三角瓶中,并加入0.5g生藥材/mL(pH=7)薜荔莖提取液適量使其吸附達(dá)到飽和,再加入不同體積分?jǐn)?shù)的洗脫劑30mL(50%、60%、70%、80%、90%乙醇),放置于37℃的恒溫水浴中于振蕩器搖動4h,取其上清液,以吸光度值來計算解吸速率。從表5可以看出,當(dāng)乙醇的體積分?jǐn)?shù)小于70%時,解吸首先下降然后上升,然后緩慢上升。因此,選取的洗脫劑為70%乙醇。

    2.3.3.2?確定洗脫劑的用量?準(zhǔn)確稱量5.0g的AB-8大孔樹脂,濕法裝柱。取140mL濃度為0.5 g生藥材/mL(pH調(diào)至7)的薜荔莖提取液,流速為1mL/min上樣。用5倍柱體積(5BV)的純水沖洗樹脂除去雜質(zhì),用70%乙醇以1.0mL/min的流速洗脫至洗脫液呈無色,收集10mL/份的洗脫液來測定吸光度。用于計算總黃酮含量。以總洗脫量為縱坐標(biāo) (mg) ,洗脫量 (mL)為橫坐標(biāo),得到動態(tài)洗脫曲線。 總洗脫量(mg)=Cd2×Vd2。式中,流出物的總黃酮質(zhì)量濃度為Cd2,洗脫劑體積為Vd2。從圖4可以看出,當(dāng)洗脫液為80mL(約8BV)時,莖中的總黃酮已被完全洗脫,因此選擇8BV作為洗脫劑的量。

    2.4?工藝驗證試驗?對上述所得到的最優(yōu)工藝條件進(jìn)行3次重復(fù)試驗驗證,計算大孔樹脂富集純化后薜荔中總黃酮的質(zhì)量分?jǐn)?shù)。經(jīng)過3次驗證試驗,從表6可知大孔樹脂富集純化后的薜荔莖總黃酮的質(zhì)量分?jǐn)?shù)分別為65.04%、63.56%、64.37%,平均質(zhì)量分?jǐn)?shù)是64.32%,其結(jié)果表明,AB-8大孔樹脂對薜荔莖總黃酮的富集純化過程是穩(wěn)定可行的。

    根據(jù)上述實驗的結(jié)果,確定了薜荔莖總黃酮的純化工藝條件是:取薜荔莖提取液(0.5g生藥材/mL),藥液 pH=7,上樣量14 BV,以1mL/mL的速度通過 AB-8大孔吸附樹脂柱,靜置4h,再用5 BV的蒸餾水來沖洗水溶性雜質(zhì),用8BV 70%乙醇以1mL/min的速度洗脫大孔樹脂,將洗脫液減壓濃縮?;厥杖軇?,烘干并干燥,得樣品。

    3?討論

    AB-8型大孔吸附樹脂是一種具有極大比表面積、合適孔徑的球形弱極性聚合物吸附樹脂,它可通過表面吸附、氫鍵等作用于黃酮類化合物,是黃酮類化合物的優(yōu)良吸附劑。本實驗從靜態(tài)吸附和動態(tài)解吸兩個方面對AB-8大孔吸附樹脂分離純化薜荔莖總黃酮的工藝條件進(jìn)行了研究。結(jié)果表明: 樣品液的濃度、pH值、樣品體積、靜態(tài)吸附時間、乙醇體積分?jǐn)?shù)、洗脫劑用量對薜荔莖總黃酮的吸附量和洗脫率影響較大。當(dāng)乙醇的濃度小于70%時,解吸率呈先下降后上升再緩慢增長趨勢。從實驗結(jié)果可以看出,可選擇70% ~ 90% 的乙醇體積分?jǐn)?shù)來洗脫。由于考慮到實驗室的經(jīng)濟(jì)效益方面,本實驗以70%乙醇作為洗脫液濃度。實驗結(jié)果顯示,50.03mg/g為AB-8型大孔吸附樹脂對薜荔莖總黃酮靜態(tài)的吸附量,而84.61%是解吸附率,呈現(xiàn)出其具備較好的分離純化能力。最優(yōu)的吸附工藝條件是:取薜荔莖提取液(0.5 g生藥材/mL),藥液 pH=7,上樣量14BV,以1mL/mL的速度通過 AB-8大孔吸附樹脂柱,靜置4h,再用5BV蒸餾水來沖洗水溶性雜質(zhì),用8BV 70%乙醇以1mL/min的速度洗脫大孔樹脂,其洗脫液用旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行減壓濃縮回收乙醇,干燥后得到紅褐色膏狀物。該工藝簡單易操作,無污染,樹脂可再生,生產(chǎn)效率高,具有一定的推廣應(yīng)用價值。

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    (收稿日期:2020-07-05?編輯:程鵬飛)

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