張亦琳,延 永,田小龍
商洛學(xué)院生物醫(yī)藥與食品工程學(xué)院,商洛 726000
中醫(yī)是人類(lèi)智慧的結(jié)晶,為中華民族的繁榮發(fā)展做出了卓越的貢獻(xiàn),但中藥發(fā)展面臨的諸多問(wèn)題阻礙了中醫(yī)現(xiàn)代化進(jìn)程[1]。比如,水質(zhì)對(duì)中藥湯劑的藥效會(huì)產(chǎn)生顯著影響。李時(shí)珍在《本草綱目》中記載不同的水(雨水、泉水、井水等)因水質(zhì)硬度不同(Ca2+和Mg2+含量不同)對(duì)療效有巨大影響。莫國(guó)軒[2]指出金屬離子對(duì)藥物療效有重要影響,藥物的有效成分與離子發(fā)生作用,可提高療效或者增加毒性,使藥物原有的藥物療效發(fā)生改變,比如強(qiáng)心苷類(lèi)藥物會(huì)與機(jī)體中的鉀離子作用,導(dǎo)致中毒癥狀,而Mg2+則可降低其毒性[3];藥物分子與Fe3+結(jié)合使其含量降低會(huì)導(dǎo)致疲勞、免疫力下降等癥狀[4]。鑒于金屬離子對(duì)藥物有效成份的重要作用,對(duì)于植物有效成份的提取應(yīng)充分考慮水質(zhì)(離子含量)對(duì)提取物活性的影響,令人遺憾的是,目前該領(lǐng)域的研究尚待開(kāi)拓。
紅薯葉為旋花科植物紅薯Ipomoeabatatas(L.)Lam成熟后地上秧莖頂端的嫩葉,素有“蔬菜皇后”、“抗癌蔬菜”、“長(zhǎng)壽蔬菜”等美譽(yù)[5]。紅薯葉作為紅、薯生產(chǎn)的副產(chǎn)品,它富含生物活性成份,具有極高的保健作用和藥用價(jià)值[6],研究表明紅薯葉黃酮可提高機(jī)體免疫能力[7],促進(jìn)新陳代謝[8],還可以降低血清含糖量[9],暢通大小便、預(yù)防各類(lèi)動(dòng)脈硬化和細(xì)胞發(fā)生癌變[10]、緩解眼疲勞和補(bǔ)充維生素A等[11],其提取物還可被開(kāi)發(fā)為面膜[12]等護(hù)膚產(chǎn)品,紅薯葉總黃酮的提取和生物活性研究一直是關(guān)注的熱點(diǎn)[13]。
本研究考察了自然界水中含量最多的Ca2+和Mg2+對(duì)紅薯葉總黃酮提取和抑菌活性的影響。通過(guò)單因素和響應(yīng)面優(yōu)化方法獲得紅薯葉的提取過(guò)程中引入Ca2+和Mg2+的最佳工藝,得到引入Ca2+和Mg2+的紅薯葉總黃酮提取物,探索Ca2+和Mg2+對(duì)紅薯葉總黃酮類(lèi)化合物提取和抑菌活性的影響,為研究硬水中常見(jiàn)Ca2+和Mg2+對(duì)植物資源開(kāi)發(fā)利用的影響提供新的思路和建立理論基礎(chǔ)。
紅薯葉采摘于商洛學(xué)院試驗(yàn)田。
無(wú)水乙醇(分析純,利安隆博華醫(yī)藥化學(xué)有限公司),亞硝酸鈉、硝酸鋁、水合氯化鎂、氫氧化鈉、無(wú)水氯化鈣(分析純,天津科密歐化學(xué)試劑有限公司),蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品(中國(guó)藥品生物制品研究所,純度95%),MH培養(yǎng)基(北京奧博星生物技術(shù)有限責(zé)任公司),紅四氮唑(天津志遠(yuǎn)科技有限公司),金黃色葡萄球菌、大腸桿菌、枯草芽孢桿菌(商洛學(xué)院微生物實(shí)驗(yàn)室)。
數(shù)顯恒溫水浴鍋HH- 4型(邦西儀器科技上海有限公司)、紫外分光光度計(jì)UV- 225型(大連市儀器制造公司)、電子天平S- 114型(丹佛儀器北京有限公司)、電熱恒溫鼓風(fēng)干燥箱DHG- 9123A型(上海齊欣科學(xué)儀器有限公司)、高壓蒸汽滅菌鍋MLS- 3780型(上海鼎謙生物科技有限公司)、恒溫振蕩器ZD- 85型(常州智博瑞儀器制造有限公司)。
稱(chēng)取蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品0.050 2 g于潔凈燒杯中,以20 mL 70%乙醇微熱至溶解,轉(zhuǎn)移至50 mL容量瓶,加水定容后,得到質(zhì)量濃度為1.0 mg/mL蘆丁標(biāo)準(zhǔn)品溶液。移取該溶液10 mL于100 mL容量瓶中,加水定容后取0、1、2、3、4、5、6 mL稀釋液分別置于25 mL容量瓶中,依次加5%亞硝酸鈉溶液1 mL,待反應(yīng)6 min后加10%硝酸鋁1 mL,6 min后加入4%氫氧化鈉溶液10 mL,加水至刻度,15 min后于510 nm下測(cè)定吸光度值(A)。以蘆丁標(biāo)品溶液質(zhì)量濃度為橫坐標(biāo),吸光度值為縱坐標(biāo),繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,回歸方程為Y=9.941 8X+0.002 6 (R2=0.996 4)。
取1 mL提取液,按2.1方法處理后于510 nm處測(cè)定吸光度(A),通過(guò)標(biāo)準(zhǔn)曲線計(jì)算出提取液質(zhì)量濃度,再通過(guò)公式(1)計(jì)算總黃酮提取率。
(1)
式中,Y為總黃酮的提取率(%);c為濃度(mg/mL);N為稀釋倍數(shù);V為提取液體積(mL);W為藥材粉末的質(zhì)量(mg)。
稱(chēng)取干燥紅薯葉粉末1.0 g,置于100 mL圓底燒瓶中,加入Ca2+濃度分別為125、150、175、200、225 mg/L,Mg2+濃度為200 mg/L的60%乙醇溶液30 mL,在60 ℃下加熱攪拌2 h,測(cè)試Ca2+濃度對(duì)總黃酮提取率的影響;加入Mg2+濃度分別為125、150、175、200、225 mg/L,Ca2+濃度為200 mg/L的60%乙醇溶液30 mL,在60 ℃下加熱攪拌2 h,檢測(cè)Mg2+濃度對(duì)總黃酮提取率的影響;加入Ca2+和Mg2+濃度為200 mg/L的40%、50%、60%、70%、80%乙醇溶液各30 mL,在60 ℃水浴中下提取2 h,測(cè)試乙醇濃度對(duì)總黃酮提取率的影響;加入Ca2+和Mg2+濃度為200 mg/L的60%乙醇溶液30 mL,在60 ℃條件下,分別提取0.5、1、1.5、2、2.5 h,測(cè)試提取時(shí)間對(duì)總黃酮提取率的影響;加入Ca2+和Mg2+濃度為200 mg/L的60%乙醇溶液,料液比分別為1∶10、1∶20、1∶30、1∶40、1∶50,并在水浴溫度60 ℃下,提取2 h,測(cè)試料液比對(duì)總黃酮提取率的影響。待體系冷卻后過(guò)濾,將濾液轉(zhuǎn)移置50 mL容量瓶,加水至刻度,取1 mL置于25 mL容量瓶中,按2.1方法處理后測(cè)定吸光度值(A),計(jì)算總黃酮提取率。
根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果篩選出四個(gè)影響最顯著的因素以及三組最佳水平,利用Design- Expert 8.0.6 Trial中Box- Behnken試驗(yàn)設(shè)計(jì),以提取物總黃酮含量為考察指標(biāo),優(yōu)化出包含有Ca2+和Mg2+的紅薯葉總黃酮提取最佳工藝。因素水平設(shè)計(jì)如表1。
對(duì)模型模擬得出的最優(yōu)工藝進(jìn)行三組平行實(shí)驗(yàn),以驗(yàn)證響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)的準(zhǔn)確性與吻合度。浸膏制作采用醇溶性浸出物的熱浸法[14]。量取提取液25 mL置已干燥至恒重的蒸發(fā)皿中,在水浴上蒸干后,于105 ℃干燥3 h,移至干燥器中,冷卻30 min,迅速精密稱(chēng)定重量,計(jì)算,即得總浸膏得率。
表1 因素水平表
待測(cè)液配置:稱(chēng)取所得浸膏1 154.72 mg置于50錐形瓶,去離子水(50 mL)溶解,轉(zhuǎn)移至100 mL容量瓶,去離子水定容,得到總黃酮濃度為2 000 μg/mL的藥液。溶液中Ca2+和Mg2+濃度分別為542.4和510.8 μg/mL。以此濃度標(biāo)準(zhǔn)配置對(duì)照品1(總黃酮濃度為2 000 μg/mL)、對(duì)照品2(總黃酮濃度為2 000 μg/mL,后加入Ca2+和Mg2+且濃度分別為542.4、510.8 μg/mL)、對(duì)照品3(Ca2+濃度為542.4 μg/mL溶液)、對(duì)照品4(Mg2+濃度510.8 μg/mL溶液)、對(duì)照品5(Ca2+和Mg2+且濃度分別為542.4和510.8 μg/mL溶液)。
MH培養(yǎng)基的制備[15],菌種活化[16]、菌懸液的配制[17]參考文獻(xiàn)方法。采用二倍稀釋法[18],在96孔板第1孔中加入160 μL含有紅四氮唑的MH培養(yǎng)基,然后分別加入40 μL對(duì)應(yīng)的6種待測(cè)液(藥液、對(duì)照品1、對(duì)照品2、對(duì)照品3、對(duì)照品4、對(duì)照品5),第2~11孔中加入紅四氮唑培養(yǎng)基100 μL,第12孔加200 μL作為陰性對(duì)照,然后于第1孔吸取100 μL置第2孔,于第2孔中吸取100 μL于第三孔,以此類(lèi)推至第11孔時(shí),多余100 μL溶液棄去,使藥液稀釋成為二倍系列稀釋濃度,然后依次加入三種已經(jīng)稀釋好的菌液100 μL,無(wú)菌條件下放置12 h,觀察孔板每孔顏色變化,最后根據(jù)顏色變化及初始濃度得出最小抑菌濃度。
由圖1可見(jiàn),隨著Ca2+濃度的增加紅薯葉總黃酮提取率增加,當(dāng)達(dá)到175 mg/L時(shí),提取率達(dá)到最大值2.49%,繼續(xù)增加Ca2+濃度,提取率出現(xiàn)下降趨勢(shì)。根據(jù)測(cè)試紅薯葉總黃酮提取率的高低,選Ca2+濃度為150、175、200 mg/L三個(gè)水平進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化;當(dāng)加入Mg2+濃度在125- 175 mg/L范圍時(shí),紅薯葉總黃酮提取率與Mg2+濃度呈現(xiàn)正相關(guān),當(dāng)Mg2+濃度達(dá)到175 mg/L時(shí),提取率達(dá)到最大值2.44%,隨后出現(xiàn)下降趨勢(shì)。因此,選Mg2+濃度為150、175、200 mg/L三個(gè)水平進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化;乙醇濃度的增加使紅薯葉總黃酮的提取率增加明顯,當(dāng)增加至70%,提取率達(dá)到最大值2.55%??赡苁窃摫壤軇O性與黃酮極性匹配,有利于黃酮的溶出。根據(jù)測(cè)試紅薯葉總黃酮提取率的高低,選乙醇濃度為60%、70%、80%三個(gè)水平進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化;在提取時(shí)間0.5~1 h的測(cè)試范圍內(nèi),紅薯葉總黃酮提取率與提取時(shí)間成正相關(guān),1 h時(shí)提取率達(dá)到最大值2.50%,隨后出現(xiàn)小幅下降,可能是長(zhǎng)時(shí)間的加熱不利于紅薯葉黃酮的穩(wěn)定存在,綜合來(lái)看,提取時(shí)間并不是紅薯葉總黃酮提取的工藝的關(guān)鍵,因此選用提取率最高的提取時(shí)間1 h作為提取工藝的時(shí)間;在料液比測(cè)試范圍內(nèi),先上升后下降,1∶40時(shí),提取率達(dá)到最大值2.56%,提取濃度過(guò)低過(guò)高不利于黃酮類(lèi)化合物溶出,選乙醇濃度為1∶30、1∶40、1∶50三個(gè)水平進(jìn)行響應(yīng)面優(yōu)化。
圖1 單因素對(duì)紅薯葉總黃酮的提取的影響Fig.1 Effects of various experimental factors on the yield of total flavonoids in sweet potato leaves
3.2.1 因素水平的確定
利用Design- Expert 8.0.6 Trial設(shè)計(jì)并進(jìn)行實(shí)驗(yàn),結(jié)果表2所示:
得出響應(yīng)面回歸方程為:
總黃酮提取率=2.67-0.055A+0.022B+0.016C+2.5×10- 3D-5.0×10- 3AB-1.0×10- 2AC-0.05AD+0.085BC-0.03BD-0.033CD-0.20A2-0.20B2-0.12C2-0.1D2
表2 響應(yīng)面實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果
方差分析見(jiàn)表3,在Ca2+和Mg2+存在下,對(duì)紅薯葉總黃酮提取率的回歸模型進(jìn)行模擬,該模型F值為4.39,P值為0.0072,差異顯著。失擬項(xiàng)F=7.67,P=0.120 7(大于0.05),表明模型失擬不顯著,真實(shí)提取率與模擬值基本一致,且與所選因素有較強(qiáng)的相關(guān)性,F(xiàn)值大小可判斷各因素對(duì)提取率影響的強(qiáng)弱,F(xiàn)值越大,影響越強(qiáng)[19]。由此可判斷影響程度順序?yàn)镃a2+濃度> Mg2+濃度>乙醇濃度>料液比。
3.2.2 響應(yīng)面圖分析
根據(jù)實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù),軟件模擬得到的3D響應(yīng)面圖,響應(yīng)面可以直觀反映出乙醇濃度、料液比、Ca2+濃度、Mg2+濃度對(duì)紅薯葉總黃酮提取率的影響。如圖2所示,在測(cè)試范圍內(nèi),隨著四個(gè)因素的增加,紅薯葉總黃酮呈現(xiàn)出先增高后降低的趨勢(shì),表明乙醇濃度、料液比、Ca2+濃度、Mg2+濃度在測(cè)試范圍內(nèi)具有相互影響和作用。響應(yīng)面曲面斜率越大說(shuō)明對(duì)應(yīng)的因素對(duì)提取影響顯著,綜合觀察,Mg2+對(duì)紅薯葉總黃酮提取影響最大,Ca2+次之。
軟件預(yù)測(cè):紅薯葉總黃酮提取最佳工藝為:Ca2+濃度187 mg/L、Mg2+濃度176 mg/L、乙醇濃度71%、料液比1∶40,提取時(shí)間取1 h,預(yù)測(cè)提取率為2.60%。
表3 方差分析結(jié)果
3.2.3 驗(yàn)證性實(shí)驗(yàn)及浸膏制作
對(duì)預(yù)測(cè)最優(yōu)工藝進(jìn)行三組平行實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證,提取率分別為2.75%、2.78%、2.74%,平均值為2.76%(RSD=0.75),響應(yīng)面回歸方程預(yù)測(cè)值與實(shí)際值較為相符。提取過(guò)程中引入Ca2+和Mg2+有利于紅薯葉總黃酮的提取,較傳統(tǒng)工藝提取率小幅提升(考慮到紅薯葉產(chǎn)地、采摘時(shí)間、部位差異、種類(lèi)、干燥方式等因素對(duì)紅薯葉中總黃酮含量的影響較大,我們僅參考文獻(xiàn)報(bào)道的傳統(tǒng)工藝方法[20]:60%乙醇水溶液90 ℃回流提取60 min,料液比1∶40,經(jīng)驗(yàn)證,提取率為2.2%),可能原因是Ca2+和Mg2+與總黃酮化合物結(jié)合,使溶液中游離的總黃酮濃度降低,有利于紅薯葉中黃酮類(lèi)化合物的溶出。根據(jù)(《中國(guó)藥典》2015版通則2201)的熱浸法,制得浸膏,總浸膏得率為15.92%;經(jīng)檢測(cè),浸膏中的黃酮含量為17.32%。
表4 最小抑菌濃度(MIC)
注:1.“-”表示無(wú)抑菌作用。
Note:1."-" means no bacteriostatic effect.
圖2 各因素對(duì)紅薯葉總黃酮提取率影響的3D響應(yīng)面圖Fig.2 3D response surface diagram of the effects of various factors on the extraction rate of total flavonoids from sweet potato leaves
結(jié)果表明,在紅薯葉總黃酮的提取過(guò)程中引入Ca2+和Mg2+有助于提升其抑菌活性,提取過(guò)程中引入Ca2+和Mg2+的提取液對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌的最小抑菌濃度分別為62.5、31.25、31.25 μg/mL;未引入Ca2+和Mg2+提取液的最小抑菌濃度分別為125、125、62.5 μg/mL。而在傳統(tǒng)紅薯葉總黃酮提取物溶液中后補(bǔ)加入Ca2+和Mg2+則對(duì)抑菌活性影響不大,單純的Ca2+溶液和Mg2+溶液或者Ca2+和Mg2+溶液則無(wú)抑菌活性。由此可知,提取過(guò)程中溶液中的Ca2+和Mg2+與紅薯葉總黃酮化合物可能形成某種具有較強(qiáng)抑菌活性的配合物,而這種配合物形成可能需要一定的反應(yīng)條件,可能與紅薯葉總黃酮的提取過(guò)程條件相似,具體的機(jī)理還需進(jìn)一步驗(yàn)證。
本研究考察了硬水中含量最多的Ca2+和Mg2+在對(duì)紅薯葉的提取和抑菌的影響。通過(guò)單因素試驗(yàn),篩選出對(duì)紅薯葉總黃酮影響最顯著的因素水平,通過(guò)Box- Behnken實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)得出紅薯葉總黃酮提取最優(yōu)工藝為Ca2+濃度187 mg/L、Mg2+濃度176 mg/L、乙醇濃度71%、料液比1∶40、提取時(shí)間為1 h。經(jīng)驗(yàn)證,實(shí)際提取率為2.76%,相較傳統(tǒng)的提取工藝相提取率有小幅度的提升。含有Ca2+和Mg2+提取工藝的研發(fā)為紅薯葉的開(kāi)發(fā)利用(深加工提取)提供了更多的選擇,使得紅薯葉總黃酮的提取成本得到降低,提取溶劑由“蒸餾水+乙醇”延伸為“自來(lái)水+乙醇”。
測(cè)試了在提取中引入Ca2+和Mg2+提取物抑菌效果。結(jié)果表明:在紅薯葉總黃酮提取中引入Ca2+和Mg2+提取物抑菌活性顯著提升,對(duì)大腸桿菌、金黃色葡萄球菌、枯草芽孢桿菌的最小抑菌濃度分別為62.5、31.25、31.25 μg/mL,低于未引入Ca2+和Mg2+提取液。該結(jié)論為紅薯葉開(kāi)發(fā)和利用提供了更多的思路,為研究硬水中常見(jiàn)Ca2+和Mg2+對(duì)植物資源開(kāi)發(fā)利用的影響提供新的思路和建立理論基礎(chǔ)。