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      續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1細胞分化及增殖的影響

      2019-12-23 05:35:08陳娟陳賽楠葉云金李生強謝麗華黃景文葛繼榮
      中國骨質(zhì)疏松雜志 2019年11期
      關鍵詞:含藥成骨細胞骨質(zhì)疏松癥

      陳娟 陳賽楠 葉云金 李生強 謝麗華 黃景文 葛繼榮

      福建省中醫(yī)藥研究院骨質(zhì)疏松證候基因組學重點研究室,福建 福州 350003

      骨質(zhì)疏松癥 (osteoporosis,OP)是一種以骨量低,骨組織微結(jié)構損壞,導致骨脆性增加,骨折風險增高為特征的全身性骨病[1-2]。中醫(yī)學將骨質(zhì)疏松癥歸屬為“骨痿”“骨痹”“骨枯”等范疇,基于中醫(yī)“腎藏精”、“腎主骨”理論,腎精虧虛是本病發(fā)生的基本病機[3]。

      續(xù)苓健骨方是課題組葛繼榮研究員在中醫(yī)理論指導下研發(fā)的治療骨質(zhì)疏松癥的經(jīng)驗方,在長期臨床實踐中發(fā)現(xiàn)具有療效明確、安全性好的特點。我們前期研究結(jié)果表明,續(xù)苓健骨方能顯著提高骨質(zhì)疏松模型大鼠的骨密度,增強模型大鼠的骨斷裂點的載荷和應力[4-5]。本研究以MC3T3-E1細胞為研究對象,觀察續(xù)苓健骨湯含藥血清對成骨細胞的增殖及分化的影響,從細胞水平探討續(xù)苓健骨方防治骨質(zhì)疏松癥的作用機制。

      1 材料和方法

      1.1 材料

      1.1.1實驗動物:3月齡清潔級雄性SD大鼠40只,由上海斯萊克實驗動物有限責任公司提供,實驗動物許可證號:SCXK(滬)2007-0005,合格證編號:2007000530078。在福建省中醫(yī)藥研究院比較醫(yī)學實驗中心飼養(yǎng)[合格證號:SYXK (閩)2009-000]。各組動物在溫度20~22 ℃,相對濕度65%~70%、光照周期12 h/12 h 的環(huán)境中飼養(yǎng),給予普通飼料、自由飲水和活動。

      1.1.2實驗細胞:小鼠顱頂前成骨細胞亞克隆 14(MC3T3-E1 subclone14) 細胞株,購自中國科學院細胞庫(貨號GNM15)。

      1.1.3實驗藥物:續(xù)苓健骨方組成:川續(xù)斷(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號140708)、白術(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號15030801)、陳皮(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號150208)、赤芍(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號150306)、紅花(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號140420)和甘草(安徽省本草國藥飲片有限公司,批號150319)等12味中藥組成,每劑中藥總量為122 g,中藥材購由福建省醫(yī)藥公司。

      1.1.4試劑:DMEM高糖培養(yǎng)基(Hyclone試劑,Cat.# NYE0876);胎牛血清 (Gibco公司,Cat.# 8122818);茜素紅染料 (Alizarin red)、地塞米松、β-甘油磷酸鈉、抗壞血酸磷酸鹽均購自美國Sigma公司;堿性磷酸酶測試盒(碧云天,Cat.# P0321);CCK-8試劑盒(Dojindo, Cat.# CK04);PI-RNase染色液(BD公司,Cat.#550825);引物(Takara公司);熒光定量PCR試劑盒(Takara公司,Cat.# DRR041 A)。

      1.1.5儀器:CO2培養(yǎng)箱(Thermo Scientific,型號:HERAcell i);核酸檢測儀Nano2100 (美國Agilent公司);熒光定量PCR儀7500 FAST(美國ABI公司);倒置相差顯微鏡(Leica,型號:DM40000 B);全波長酶標儀(ThermoFisher Scientific);流式細胞儀(BD 公司,F(xiàn)ACS Calibur)。

      1.2 實驗方法

      1.2.1實驗分組及續(xù)苓健骨湯含藥血清[6]的制備:3月齡SPF級雄性SD大鼠40只,隨機分成空白含藥血清對照組、續(xù)苓健骨湯低劑量含藥血清組[6.35 g/(kg.d)]、中劑量含藥血清組[12.7 g/(kg.d)]、高劑量含藥血清組[25.4 g/(kg.d)],每組10只。續(xù)苓健骨湯的低、中、高劑量組,相當于成人臨床用量的0.5、1、2倍。適應性飼養(yǎng)7 d后,按上述劑量進行灌胃給藥,每天2次,連續(xù)7 d,對照組給予等量生理鹽水。末次給藥后1 h,腹腔注射戊巴比妥鈉30 mg/kg,麻醉。無菌條件下,進行腹主動脈采血5~6 mL。所得血液靜置1 h后,3 000 r/min離心l0 min,取上層血清。同組動物血清合并, 56 ℃水浴30 min滅活補體,0.22 μm微孔濾膜抽濾除菌,分裝,-20 ℃儲存?zhèn)溆谩?/p>

      1.2.2細胞培養(yǎng):MC3T3-E1細胞系以基礎培養(yǎng)基(MEM培養(yǎng)基+10%胎牛血清)培養(yǎng),隔天換液,取對數(shù)生長期細胞用于本實驗。根據(jù)分組,分別添加體積分數(shù)為15%的不含藥血清進行干預。

      1.2.3CCK-8細胞增殖實驗:細胞按2×103cells/100 μL密度接種于96孔培養(yǎng)板,每板設空白孔(僅有培養(yǎng)基,無細胞),每組設3個復孔。加入不同濃度的含藥血清,培養(yǎng)48 h后,每孔加入10 μL CCK8,37 ℃孵育3 h,檢測450 nm 波長吸收值。

      1.2.4FACS檢測細胞周期:取對數(shù)生長期的細胞,加入0.25%胰蛋白酶消化后,冷PBS清洗2遍;加入70%的冷乙醇固定過夜;次日加入10 mg/L的RNA酶,37 ℃孵育30 min;加入500 μL PI(50 mg/L),避光,4 ℃孵育30 min,流式細胞儀檢測細胞周期分布,并用ModFit LT V3.0 軟件進行細胞周期擬合,得到細胞各個時期的分布狀態(tài),計算增殖指數(shù)(proliferation index,PI)和S期百分比(S phase fraction,SPF)。公式為:

      PI=(S+G2/M)/(G0/G1+S+G2/M)×100;SPF=S/(G0/G1+S+G2/M)×100%。

      1.2.5ALP活性檢測:細胞用成骨誘導劑(50μg/mL抗壞血酸磷酸鹽,10 mmol /L β甘油磷酸鈉,10 nmol /L 地塞米松) 誘導,每3 d 換液1次,誘導7 d后,收集各組細胞,添加150 μL 0.2% Triton X-100裂解細胞,4 ℃,15 000 r/min離心15 min,收集上清液作為樣品;向96孔板內(nèi)添加50 μL底物、30 μL緩沖液和20 μL樣品,在微孔板震蕩器上充分振蕩1 min后,37 ℃孵育15 min;添加100 μL反應終止液,在微孔板震蕩器上充分振蕩1 min后,酶標儀測量405 nm處的吸光值;同樣方法進行空白(蒸餾水)對照和標準品的檢測,實驗數(shù)據(jù)取ALP活性與細胞蛋白總量的比值進行統(tǒng)計分析。

      1.2.6茜素紅染色及定量:成骨誘導分化14 d,吸走成骨誘導分化完全培養(yǎng)基,用PBS洗2次;每孔加入2 mL 4%中性甲醛溶液,固定30 min;吸走中性甲醛溶液,用PBS洗2次;每孔加入1 mL茜素紅染液染3~5 min;吸走茜素紅染液,用PBS洗2次;每孔加入 1 mL 10%十六烷基吡啶,輕微搖晃 10 min 洗脫染料,吸取200 μL 加入96孔板中,分光光度計檢測 540 nm 處吸光值。

      1.2.7實時熒光定量PCR(qRT-PCR):提取總RNA。定量后,利用反轉(zhuǎn)錄試劑盒進行反轉(zhuǎn)錄獲得定量 PCR模板。引物序列見表1,熒光定量PCR反應體系均如下:SYBR?Premix Ex TaqTMGC 12.5 μL,上下游引物各0.5 μL,dH2O 9.5 μL,cDNA 2 μL,25 μL體系。反應條件如下:①預變性:95 ℃ 10 s,②變性:95 ℃ 5s,③退火、延伸:60 ℃ 31 s,40個循環(huán)。采用ABI 7500 Real time PCR儀檢測各樣本中mRNA的表達情況。以Gapdh作為內(nèi)參照,每組均做3個重復,取均數(shù)。本實驗采用2-ΔΔCT法對基因進行半定量分析。

      表1 引物序列Table 1 Primers for quantitative real time PCR

      1.3 統(tǒng)計學處理

      采用SPSS 17.0軟件進行數(shù)據(jù)分析,計量資料用均數(shù)±標準差表示,多組間比較,方差齊的數(shù)據(jù)采用 One-way ANOVA 檢驗, 對于方差不齊數(shù)據(jù)的多組間比較,采用 Kruskal-WallisH檢驗,如統(tǒng)計具有差異時再以Bonferroni 法進行組間多重比較,定義P<0.05為差異有統(tǒng)計學意義。

      2 結(jié)果

      2.1 續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1細胞增殖的影響

      我們以不同濃度的續(xù)苓健骨湯含藥血清干預MC3T3-E1細胞,以空白含藥血清組為實驗對照,結(jié)果表明(表2),與對照組比較,中、高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清組能明顯促進MC3T3-E1細胞的增殖(P<0.01),而低劑量續(xù)苓健骨湯與對照組比較增殖速度無顯著性差異, 呈現(xiàn)出一定的劑量依賴性。

      組別48 h(OD450)對照組0.466±0.030低劑量含藥血清組0.490±0.014中劑量含藥血清組0.730±0.050??高劑量含藥血清組0.890±0.180??

      注:與對照組比較,**P<0.001。

      2.2 續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1細胞周期的影響

      流式細胞術檢測細胞周期分布,以PI指數(shù)和SPF指數(shù)表示細胞群體的增殖狀態(tài)和DNA的合成速度。結(jié)果顯示:中、高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清兩組的SPF和PI指數(shù)均高于對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05),而低劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清和對照組比較差異無統(tǒng)計學意義(表3)。

      組別SPF指數(shù)PI指數(shù) 對照組低劑量含藥血清組中劑量含藥血清組高劑量含藥血清組34.62±3.2533.66±1.1536.21±2.26?36.92±2.17?50.61±2.1253.17±1.66?54.57±1.17?56.28±1.57?

      注:與對照組比較,*P<0.05。

      2.3 續(xù)苓健骨湯含藥血清促進MC3T3-E1細胞的成骨分化

      與空白對照組相比,續(xù)苓健骨湯含藥血清干預7 d,可提高MC3T3-E1細胞合成分泌ALP的活性,且該作用以高劑量組最為顯著(P<0.01),呈現(xiàn)一定的量效關系(圖1)。成骨誘導14 d 后,中、高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清組鈣結(jié)節(jié)的數(shù)量和體積明顯高于對照組,茜素紅半定量結(jié)果顯示其成骨能力強于對照組,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.01)(圖2)。

      圖1 不同劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1成細胞分化能力的影響(**P<0.01)Fig.1 The effect of Xuling strong bone decoction containing serum on the differentiation of MC3T3-E1 cells (**P<0.01)

      2.4 續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1細胞成骨分化基因的影響

      qRT-PCR結(jié)果顯示,與空白對照組比較,中、高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清組成骨分化標志基因Runx2、OC、BMP2、Col1a1mRNA水平明顯高于對照組,差異具有統(tǒng)計學意義(P<0.05)(圖2)。

      圖2 不同劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清對MC3T3-E1成細胞分化基因的影響(**P<0.01,***P<0.001)Fig.2 The effect of Xuling strong bone decoction containing serum on mRNAs of the differentiation-related genes of MC3T3-E1 cells (**P<0.01,***P<0.001)

      3 討論

      骨質(zhì)疏松的發(fā)病機制是骨形成與骨吸收呈負平衡,從而造成骨重建失衡引起的骨量丟失[7]。成骨細胞在骨重建過程中起關鍵作用,其數(shù)量與功能的變化與骨質(zhì)疏松癥的發(fā)生發(fā)展直接相關。因此,研究成骨細胞增殖、分化是防治骨質(zhì)疏松癥研究的重要課題之一[8]。本研究結(jié)果證實,中高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清能促進MC3T3-E1 細胞的增殖和細胞周期的進展,并且呈現(xiàn)一定的劑量依賴性。同時,中高劑量續(xù)苓健骨湯含藥血清能顯著上調(diào)骨形成相關基因Runx2、OC、BMP2、Col1a1的表達水平,提高堿性磷酸酶活性和促進MC3T3-E1細胞的礦化。說明,在一定濃度范圍內(nèi),續(xù)苓健骨湯含藥血清對骨形成具有一定的促進作用。

      中醫(yī)基于 “腎主骨藏精”理論,認為腎精虧虛是骨質(zhì)疏松癥發(fā)生的基本病機[9-10]。中醫(yī)強調(diào)根據(jù)骨質(zhì)疏松癥的中醫(yī)證候遣方用藥,主要以補腎壯骨、補腎健脾、活血祛瘀理論來指導用藥,并從整體方面進行調(diào)節(jié)[11]。目前研究表明,補腎中藥具有促進成骨分化的作用[12]。張曉瑋等[13]研究表明,補腎健脾活血中藥能夠促進成骨細胞表達骨形狀發(fā)生蛋白的作用,從而能有效提高骨密度。陶樂維等[14]采用中藥血清藥物化學的方法,發(fā)現(xiàn)六味地黃丸對MC3T3-E1細胞有促增殖作用。左歸丸在體外可提高MC3T3-E1堿性磷酸酶的活性和礦化能力,從而促進成骨細胞分化[15]。在對其他補腎強骨復方的研究中也發(fā)現(xiàn)可以促進骨髓間充質(zhì)干細胞增殖和成骨分化[16]。續(xù)苓健骨方為課題組葛繼榮研究員在中醫(yī)理論指導下,經(jīng)過長期臨床試驗而研發(fā)的治療骨質(zhì)疏松癥的經(jīng)驗方,以補腎壯骨治本。本研究中我們也證實,續(xù)苓健骨含藥血清在體外能促進成骨細胞的增殖、骨形成和礦化能力。

      除了中藥復方,單味中藥及有效成分的研究也證實補腎中藥具有促進骨形成的作用。續(xù)苓健骨方以川續(xù)斷、骨碎補為君藥,功取其補肝腎、強筋骨之效。劉介等[17]通過續(xù)斷總皂甙對成骨細胞的體外培養(yǎng),發(fā)現(xiàn)在一定濃度范圍內(nèi)續(xù)斷總皂甙可促進成骨細胞增殖、分化和提高細胞增殖指數(shù),可能是該藥防治骨質(zhì)疏松的機制之一。在體外骨髓間充質(zhì)干細胞誘導為成骨細胞過程中,川續(xù)斷皂苷可促進骨髓間充質(zhì)干細胞向成骨細胞增殖和分化,從而具有促進骨形成的作用[18]。骨碎補含藥血清對乳鼠顱骨成骨細胞進行干預后,細胞增殖率、骨鈣素分泌量、鈣鹽沉積量明顯增加[19]。劉國巖等[20]研究表明骨碎補可以顯著促進大鼠骨髓間充質(zhì)干細胞的增殖及成骨分化。因此,我們推測續(xù)苓健骨方對成骨細胞骨形成的促進作用,與補腎中藥川續(xù)斷、骨碎補的作用機制有關。

      本研究發(fā)現(xiàn)續(xù)苓健骨方在體外具有促進成骨細胞增殖和分化的效應,這對續(xù)苓健骨方在骨質(zhì)疏松癥的臨床應用及基礎研究提供良好的鋪墊。由于中醫(yī)藥治療疾病具有多靶點多方面的優(yōu)勢和特點,強調(diào)從整體方面進行調(diào)節(jié)。續(xù)苓健骨方除了補腎治本外,兼有健脾、活血、行氣等治則,對于其抗骨質(zhì)疏松癥的其他方面的作用效應及分子機制,還有待進一步的深入研究。

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