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    孕中期血性羊水細(xì)胞改良培養(yǎng)法質(zhì)量分析

    2019-12-09 01:53:43陳儉輝趙連芳景亞玲李曉紅
    中外女性健康研究 2019年20期
    關(guān)鍵詞:產(chǎn)前診斷質(zhì)量控制

    陳儉輝 趙連芳 景亞玲 李曉紅

    【摘要】 目的:探索孕中期血性羊水細(xì)胞高效的培養(yǎng)方法。方法:采用普通培養(yǎng)瓶法對(duì)46例血性羊水細(xì)胞進(jìn)行培養(yǎng),并對(duì)培養(yǎng)情況進(jìn)行質(zhì)量分析。結(jié)果:46例血性羊水中45例一次培養(yǎng)成功,1例嚴(yán)重新鮮血性羊水培養(yǎng)失敗,培養(yǎng)成功率為97.8%。結(jié)論:提高羊水細(xì)胞培養(yǎng)成功率,優(yōu)化血性羊水的培養(yǎng)及收獲條件,能夠?yàn)榕R床提供準(zhǔn)確的產(chǎn)前診斷報(bào)告,對(duì)指導(dǎo)優(yōu)生優(yōu)育、預(yù)防出生缺陷具有重要意義。

    【關(guān)鍵詞】 血性羊水;產(chǎn)前診斷;質(zhì)量控制

    我國(guó)是出生缺陷大國(guó),由于人口基數(shù)大,每年都有80~120萬(wàn)出生缺陷兒降生,目前沒(méi)有特異性的治療手段,只有通過(guò)實(shí)時(shí)的產(chǎn)前診斷和出生干預(yù)才能做到出生缺陷防控[1]。染色體病是出生缺陷最常見(jiàn)的原因,當(dāng)前診斷的金標(biāo)準(zhǔn)就是染色體核型分析。血性羊水標(biāo)本會(huì)嚴(yán)重影響羊水細(xì)胞的培養(yǎng),所以提高血性羊水的培養(yǎng)成功率能有效地減輕孕婦重新穿刺的痛苦,也能提高產(chǎn)前診斷效率。本研究通過(guò)對(duì)46例血性羊水標(biāo)本培養(yǎng)方法進(jìn)行改良研究,提高了血性羊水的培養(yǎng)成功率。

    1資料與方法

    1.1研究資料

    2017年1月至2018年12月,在本院產(chǎn)前診斷中心咨詢,因有各種高危產(chǎn)前診斷指征接受羊水穿刺的46例血性羊水孕婦,孕婦孕周17~25周。

    1.2方法

    1.2.1標(biāo)本收集穿刺孕婦在了解羊水穿刺風(fēng)險(xiǎn)和相關(guān)注意事項(xiàng)后,簽署知情同意書,完成穿刺前檢查血常規(guī)、凝血功能、血型、乙肝、丙肝、梅毒、艾滋等。B超下觀察胎盤位置,羊水量及深度,確定穿刺部位,并做好記錄,無(wú)菌條件下穿刺取羊水細(xì)胞20mL,記錄羊水性狀(顏色、渾濁度等)分裝2瓶,送實(shí)驗(yàn)室。穿刺術(shù)后孕婦留院觀察30min,無(wú)異常反應(yīng)并告知術(shù)后注意事項(xiàng)后離院。

    1.2.2培養(yǎng)新鮮血性羊水應(yīng)及時(shí)送往實(shí)驗(yàn)室,離心,去上清,剩約1.0~1.5mL,重懸細(xì)胞沉淀,接種到25cm2培養(yǎng)瓶中,置于37℃、5%CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)7d,換液處理,在原培養(yǎng)瓶加入2mL新鮮培養(yǎng)液培養(yǎng)加入新鮮羊水培養(yǎng)液2mL。同時(shí)將培養(yǎng)瓶中上清倒入新的標(biāo)記培養(yǎng)瓶中,加入2mL新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)靜置培養(yǎng)7d后觀察。對(duì)于克隆島較少的樣本,在無(wú)菌條件下,先將上清進(jìn)行換液處理,再用細(xì)胞刮刮取貼壁細(xì)胞,然后加入新鮮培養(yǎng)液培養(yǎng)。繼續(xù)培養(yǎng)1~2d后觀察。換液后每天觀察細(xì)胞生長(zhǎng)情況,當(dāng)羊水細(xì)胞貼壁生

    作者簡(jiǎn)介:陳儉輝(1988-),男,碩士,臨床檢驗(yàn)師。研究方向:產(chǎn)前診斷與遺傳病診斷

    *趙連芳為本文通訊作者

    長(zhǎng)旺盛,鏡下見(jiàn)多個(gè)克隆和適量圓形、雙圓形透明細(xì)胞時(shí)可收獲。收獲前1d換1次新鮮培養(yǎng)液,使細(xì)胞營(yíng)養(yǎng)充足。加入濃度20μg/mL的秋水仙素100μL,混勻,繼續(xù)培養(yǎng)4h后制備。

    1.2.3制備將培養(yǎng)液轉(zhuǎn)移到15mL的離心管中。用細(xì)胞刮刮取收集羊水細(xì)胞,再用0.9%的氯化鈉溶液清洗1~2次,并轉(zhuǎn)移到離心管中。1600r離心10 min,棄上清。加入0.075mol/L KCL溶液8mL,混勻,37℃低滲8min。然后加入固定液(甲醇∶冰乙酸=3∶1)2mL,混勻預(yù)固定5min,1600r離心10min,棄上清。再加入固定液8mL,混勻,固定,1600r離心10min。重復(fù)固定1次。離心后根據(jù)細(xì)胞沉淀量加入新鮮固定液調(diào)懸,然后在25℃、55%濕度環(huán)境將細(xì)胞懸液滴于干凈的玻片上,放置30min。置60℃烤箱2h。

    1.2.4G顯帶配置0.025%胰酶溶液,37℃水浴30min后,消化染色體片(不同季節(jié)試片后確定消化時(shí)間)。0.9%的氯化鈉溶液內(nèi)漂洗后Giemsa染色,風(fēng)干。

    1.2.5核型分析將顯帶染色體片置于全自動(dòng)掃描儀下掃描,統(tǒng)計(jì)中期數(shù)目。每例計(jì)數(shù)30個(gè)分裂相,分析5~10個(gè)核型。嵌合型核型加倍分析。根據(jù)《人類細(xì)胞遺傳學(xué)國(guó)際命名體制》(ISCN2013)的標(biāo)準(zhǔn)描述染色體異常核型。

    1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)分析

    采用統(tǒng)計(jì)軟件SPSS 13.0對(duì)數(shù)據(jù)進(jìn)行分析,克隆數(shù)等計(jì)數(shù)資料以率表示。

    2結(jié)果

    2.1羊水細(xì)胞培養(yǎng)成功率

    46例血性羊水中35例為新鮮血性,樣本占76.09%,11例為陳舊血性,樣本占23.91%。45例一次培養(yǎng)成功,1例嚴(yán)重新鮮血性羊水培養(yǎng)失敗,總成功率為97.8%(45/46)。

    2.2培養(yǎng)細(xì)胞克隆數(shù)例

    初次培養(yǎng)新鮮血性羊水長(zhǎng)勢(shì)較差,細(xì)胞克隆數(shù)較少;陳舊血性羊水長(zhǎng)勢(shì)相對(duì)較好,克隆數(shù)稍多。換液轉(zhuǎn)種培養(yǎng)后出現(xiàn)相反的趨勢(shì),新鮮血性羊水克隆數(shù)稍豐富,陳舊血性羊水克隆數(shù)稍少。生長(zhǎng)克隆數(shù)如表1所示。

    3討論

    羊水穿刺染色體核型分析是目前染色體病診斷的金標(biāo)準(zhǔn),但是一種創(chuàng)傷性的診斷方法,穿刺經(jīng)過(guò)胎盤,就容易使羊水受到血細(xì)胞的污染[23],大量的血細(xì)胞容易包裹羊水細(xì)胞,使羊水細(xì)胞不易聚集貼壁生長(zhǎng)[4],所以建立血性羊水細(xì)胞的培養(yǎng)和收獲標(biāo)準(zhǔn)也是診斷所需。

    首先,對(duì)于新鮮血性羊水在采集到樣本后,一定要及時(shí)送往實(shí)驗(yàn)室離心,避免血液凝集過(guò)程中將活性羊水細(xì)胞包裹,如發(fā)現(xiàn)血液污染嚴(yán)重,可以加入1滴無(wú)菌肝素溶液,輕輕混勻。羊水接種培養(yǎng)7d后,觀察生長(zhǎng)情況,對(duì)于嚴(yán)重血性羊水進(jìn)行半量換液,其他樣本均全量換液,所有換出來(lái)的液體轉(zhuǎn)移到新的培養(yǎng)瓶中加入新鮮培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng)。細(xì)胞克隆豐富的樣本只需加入新鮮培養(yǎng)液培養(yǎng),待處于分裂旺盛期時(shí)加入秋水仙素收獲。對(duì)于克隆島較少的樣本,換液后進(jìn)行傳代培養(yǎng)。由于胰酶的消化時(shí)間不容易把握,且影響細(xì)胞的貼壁生長(zhǎng),采用細(xì)胞刮輕輕刮取貼壁生長(zhǎng)細(xì)胞[5],然后加入新鮮培養(yǎng)液培養(yǎng)2d后,會(huì)有大量小的細(xì)胞克隆,然后換液處理,加速細(xì)胞生長(zhǎng),則能收獲到大量羊水細(xì)胞。實(shí)驗(yàn)中發(fā)現(xiàn)新鮮血液羊水換液培養(yǎng)的長(zhǎng)勢(shì)比初次培養(yǎng)較好,可能是因?yàn)榧t細(xì)胞活性的降低和凝血因子等物質(zhì)活性下降,抑制作用降低,羊水細(xì)胞能夠進(jìn)行貼壁生長(zhǎng)所致[67]。

    陳舊血性羊水主要是孕婦在穿刺之前出現(xiàn)過(guò)出血狀況,污染了羊水,經(jīng)過(guò)一段時(shí)間的吸收后會(huì)呈現(xiàn)出棕色或褐色,離心后能看到褐色紅細(xì)胞[8]。通過(guò)實(shí)驗(yàn)處理來(lái)看,陳舊血性羊水對(duì)羊水細(xì)胞的貼壁生長(zhǎng)影響稍小,初次培養(yǎng)后,羊水克隆普遍多于新鮮血性羊水,可能是因?yàn)槟蜃拥任镔|(zhì)活性下降的原因。而再次培養(yǎng)時(shí)長(zhǎng)勢(shì)稍差,可能是因?yàn)槌醮闻囵B(yǎng)活性細(xì)胞貼壁生長(zhǎng),上清活性細(xì)胞少。

    羊水培養(yǎng)染色體核型分析是一個(gè)相對(duì)較為繁瑣的實(shí)驗(yàn),每個(gè)實(shí)驗(yàn)步驟都可能影響最終的結(jié)果[9]。而血性羊水的處理會(huì)比常規(guī)處理更為繁瑣,培養(yǎng)時(shí)與環(huán)境交流更多,所以嚴(yán)格控制實(shí)驗(yàn)的無(wú)菌操作也是保證成功的前提,把握實(shí)驗(yàn)過(guò)程中的質(zhì)量控制,合理完善操作規(guī)程以及優(yōu)化的實(shí)驗(yàn)條件是制作出高質(zhì)量的染色體片的保證,才能為臨床提供準(zhǔn)確的分析結(jié)果[10]。

    綜上所述,改良的血性羊水培養(yǎng)方法和羊水細(xì)胞收獲流程,能夠有效地提高血性羊水的培養(yǎng)成功率,能夠避免孕婦二次穿刺的痛苦,具有較強(qiáng)的實(shí)際應(yīng)用價(jià)值。

    參考文獻(xiàn)

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