小球藻EC04產(chǎn)胞內(nèi)多糖條件優(yōu)化及抗氧化活性研究

楊海燕, 李潔瓊, 劉紅全, 黃小燕, 許鐘濤, 羅遠(yuǎn)康, 禤金彩, 龍寒

海洋生物學(xué)

小球藻EC04產(chǎn)胞內(nèi)多糖條件優(yōu)化及抗氧化活性研究

楊海燕, 李潔瓊, 劉紅全, 黃小燕, 許鐘濤, 羅遠(yuǎn)康, 禤金彩, 龍寒

廣西民族大學(xué)海洋與生物技術(shù)學(xué)院, 微生物與植物資源利用廣西高校重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 廣西 南寧 530008;廣西民族大學(xué)海洋與生物技術(shù)學(xué)院, 廣西多糖材料與改性重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室, 廣西 南寧 530008

小球藻胞內(nèi)多糖等活性物質(zhì)具有多種重要生物活性和生理功能。為提高小球藻EC04胞內(nèi)多糖的產(chǎn)率, 采用單因素實(shí)驗(yàn)和L9(34)正交實(shí)驗(yàn)優(yōu)化對(duì)其培養(yǎng)條件進(jìn)行優(yōu)化。在暗光比12∶12、溫度24±1℃和2000Lux光照條件下, EC04產(chǎn)胞內(nèi)多糖的最佳條件為: MgSO4·7H2O濃度112.5mg·L–1, K2HPO4濃度60mg·L–1, NaNO3濃度1.2g·L–1, 維生素B1濃度0.5mg·L–1, 維生素B12濃度0.1μg·L–1。在此條件下, EC04產(chǎn)糖率為271.74mg·g–1, 細(xì)胞密度為48.027×106cells·mL–1, 與基礎(chǔ)培養(yǎng)基相比分別提高了97.49%和34.91%。添加VB1、VB12等也在不同程度上影響小球藻胞內(nèi)多糖產(chǎn)率。對(duì)所提取胞內(nèi)多糖進(jìn)行抗氧化活性初探, 結(jié)果表明其具有一定的自由基的清除能力, 對(duì)DPPH·(1-二苯基-2-三硝基苯肼)和·OH(羥自由基)的最大清除率分別達(dá)到了82.32%和64.27%。

小球藻; 多糖; 營養(yǎng)鹽; 維生素; 自由基

小球藻(sp)是一類普生性單細(xì)胞綠藻, 生態(tài)類型多樣, 分布廣泛, 在海水、淡水中均有分布。小球藻體內(nèi)含有豐富的高價(jià)值生物活性物質(zhì), 因此在醫(yī)藥、食品飼料添加劑、化妝品、能源等領(lǐng)域具有廣泛的應(yīng)用價(jià)值(黃燕娟等, 2013), 并有“藥物藻類”的美稱(曹吉祥等, 1997)。

多糖是小球藻活性提取物中重要組成部分之一, 大量研究表明小球藻多糖具有調(diào)節(jié)機(jī)體免疫活性、抗腫瘤(郝宗娣等, 2010)、減輕重金屬離子對(duì)機(jī)體的毒害等作用(Mallick, 2004)。此外小球藻多糖還可以清除各種自由基以保護(hù)機(jī)體, 起到一定的抗氧化作用。

本實(shí)驗(yàn)以小球藻EC04為原料, 研究其產(chǎn)多糖的最佳培養(yǎng)基濃度配比及其對(duì)DPPH·、·OH等自由基的清除作用。

1 材料與方法

1.1 材料

藻種: 本實(shí)驗(yàn)室從南寧邕江篩選出并進(jìn)行誘變的藻種EC04, 是一株淡水小球藻。

基本特征: 細(xì)胞直徑在3~15μm之間, 葉綠體的電鏡圖呈現(xiàn)杯裝。產(chǎn)出的多糖具有多種生物學(xué)活性如抗氧化、抑菌等活性。

1.2 實(shí)驗(yàn)方法

1.2.1 培養(yǎng)基及培養(yǎng)方法

將EC04培養(yǎng)于BG-11(Reynaud et al, 1986)培養(yǎng)基中(配方如表1), 采用500mL錐形瓶內(nèi)裝250mL的液體培養(yǎng)基, 在超凈臺(tái)中按照10%的接種量接種對(duì)數(shù)期藻種。人工氣候箱的培養(yǎng)條件為光照強(qiáng)度2000Lux, 暗光比為12∶12, 溫度為24±1℃, 每組3個(gè)平行, 每日搖動(dòng)3次。培養(yǎng)9d的藻懸液, 6000r·min–1下離心5min, 離心后的藻泥用蒸餾水清洗2次, 加無水乙醇置于4℃冰箱過夜用于初步除脂除色素(孫惠潔, 2008), 4800r·min–1下離心15min, 收集沉淀, 60℃烘干成藻粉。

表1 BG-11培養(yǎng)基配方

1.2.2 培養(yǎng)條件優(yōu)化

1.2.2.1 營養(yǎng)鹽優(yōu)化

以BG-11基礎(chǔ)培養(yǎng)基為對(duì)照, 調(diào)整營養(yǎng)鹽濃度如下。

MgSO4·7H2O濃度分別設(shè)置為37.5、75、112.5、150、187.5mg·L–1;

K2HPO4濃度分別設(shè)置為20、40、60、80、100mg·L–1;

NaNO3濃度分別設(shè)置為0.4、0.8、1.2、1.6、2.0g·L–1。

營養(yǎng)鹽的正交實(shí)驗(yàn)(陳穎等, 1998)選用最佳單因素優(yōu)化值以及其鄰值進(jìn)行四因素三水平正交試驗(yàn)優(yōu)化(表2)。

表2 營養(yǎng)鹽優(yōu)化正交實(shí)驗(yàn)表

1.2.2.2 維生素優(yōu)化

在最佳營養(yǎng)鹽條件下設(shè)置VB1的濃度值分別為0.2、0.4、0.6、0.8、1.0mg·L–1; VB12的濃度值分別為: 0、0.05、0.1、0.15、0.2μg·L–1。

1.2.3 小球藻生物量測(cè)定

采用血球計(jì)數(shù)板進(jìn)行統(tǒng)計(jì)。

1.2.4 胞內(nèi)多糖的提取

稱取0.1g EC04干藻粉, 按物料比1∶25加入4%的NaOH, 80W超聲20min后置于80℃水浴2h, 冷卻后以4800r·min–1離心10min, 取上清液, 將細(xì)胞破碎后的藻泥用去離子水清洗兩次, 離心后收集上清液。向上清液中添加三倍體積無水乙醇, 4℃冰箱過夜, 冷凍離心取沉淀, 沉淀中加入3%的TCA, 充分?jǐn)噭? 至沉淀不再溶解, 4℃離心取上清液, 清洗沉淀兩次收集上清液。將上清液經(jīng)0.45μm過濾膜過濾, 再次用三倍體積無水乙醇沉淀, 4℃離心得沉淀, 冷凍干燥得到粗多糖粉末。

1.2.5 多糖含量的測(cè)定及葡萄糖標(biāo)準(zhǔn)曲線的繪制

多糖含量測(cè)定采用苯酚-硫酸法(Dubois et al, 1956), 單位為mg·g–1(干重)。以葡萄糖為標(biāo)準(zhǔn)品, 得到線性回歸方程為=0.0068–0.0408(2=0.9978)。

1.2.6 紫外光譜分析

將多糖樣品配置成0.1%濃度的水溶液, 在TU-1901雙光束紫外可見分光光度計(jì)上對(duì)200~ 400nm進(jìn)行波譜掃描。

1.2.7 紅外光譜分析

取1mg干燥多糖樣品, 與100mg干燥KBr粉末混合, 紅外燈下于瑪瑙體中均勻研磨后經(jīng)壓片機(jī)壓成薄片, 上機(jī)測(cè)定。

1.2.8 胞內(nèi)多糖的抗氧化活性初探

1.2.8.1 胞內(nèi)多糖對(duì)DPPH·的清除作用

取2mL不同濃度(0.5、1、1.5、2、2.5、3mg·mL–1)的多糖樣品溶液, 加入2mL現(xiàn)配的0.16mmol·L–1的DPPH甲醇溶液中, 振蕩混勻, 避光室溫下保存30min, 以甲醇溶劑(Duan et al, 2006)做空白對(duì)照, 用紫外分光光度計(jì)測(cè)量其在517nm處吸光度(A), 2mL DPPH甲醇溶液與2mL甲醇混合后在517nm處吸光度(0)以及2mL甲醇溶液與2mL樣品溶液在517nm處的吸光度(A)。按下列公式計(jì)算DPPH·清除率。

DPPH·清除率%=[1–(A–A)/0]×100

另取去離子水作為陰性對(duì)照。

1.2.8.2 胞內(nèi)多糖對(duì)·OH的清除作用

采用鄰二氮菲法(來林康等, 2014)進(jìn)行實(shí)驗(yàn), 吸取7.5mmol·L–1的鄰二氮菲0.15mL, 加入pH7.4的磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline, PBS)溶液0.4mL, 去離子水0.25mL以及0.75mmol·L–1硫酸亞鐵溶液0.1mL振蕩混勻。加入0.1mL不同待測(cè)樣品和0.1mL 1%的雙氧水(現(xiàn)配)的反應(yīng)管吸光度記作0; 二者均不加記作1; 只加入0.1mL不同待測(cè)樣品的反應(yīng)管吸光度記作; 加入0.1mL去離子水和0.1mL 1%雙氧水(現(xiàn)配)的反應(yīng)管吸光度記作2。4組反應(yīng)管均在37℃恒溫箱中保溫60min, 去離子水調(diào)零, 用紫外分光光度計(jì)測(cè)定其在536 nm處吸光度, 根據(jù)下列公式計(jì)算·OH清除率。

·OH清除率=[1–(–0)/(1–2)]×100

另取去離子水作為陰性對(duì)照。

1.3 數(shù)據(jù)處理

實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)采用SPSS19.0軟件包進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,<0.05為差異性顯著,<0.01為差異極顯著。

2 結(jié)果和分析

2.1 培養(yǎng)條件優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1.1 營養(yǎng)鹽單因素優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果

以基礎(chǔ)培養(yǎng)基作為原始對(duì)照組, 其中EC04的多糖產(chǎn)率和細(xì)胞密度分別為137.6mg·g–1和35.6× 106cells·mL–1。由圖1可知, MgSO4·7H2O濃度逐漸加大時(shí), 多糖產(chǎn)率也逐漸增大, 當(dāng)濃度增大到112.5mg·L–1時(shí), 多糖產(chǎn)率達(dá)到最大值; 然后隨著MgSO4·7H2O濃度繼續(xù)升高, EC04多糖產(chǎn)率反而下降。當(dāng)K2HPO4濃度在20~60mg·L–1時(shí), EC04多糖產(chǎn)率隨之增加, 隨著K2HPO4濃度的持續(xù)增加, 多糖產(chǎn)率迅速降低。改變NaNO3濃度時(shí), EC04多糖產(chǎn)率變化十分顯著。當(dāng)NaNO3濃度低于1.2g·L–1時(shí), 多糖產(chǎn)率呈上升趨勢(shì); 在NaNO3濃度為1.2g·L–1時(shí)達(dá)到最大; 隨后NaNO3濃度繼續(xù)增加, 小球藻多糖產(chǎn)率顯著下降。此時(shí)EC04胞內(nèi)多糖產(chǎn)率為原始對(duì)照組的1.71倍。

以細(xì)胞密度為考察主體時(shí), 增大MgSO4·7H2O濃度, 細(xì)胞密度改變不大, 影響不顯著。隨著K2HPO4和NaNO3濃度的增大, 細(xì)胞密度也隨之增大。當(dāng) K2HPO4和 NaNO3濃度分別為100mg·L–1和2.0g·L–1時(shí), 細(xì)胞密度最大。

圖1 營養(yǎng)鹽單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果

2.1.2 營養(yǎng)鹽正交優(yōu)化實(shí)驗(yàn)結(jié)果

營養(yǎng)鹽單因素優(yōu)化結(jié)果顯示單獨(dú)增加適量的MgSO4·7H2O、K2HPO4都能提高EC04胞內(nèi)多糖的產(chǎn)率, 相比原始對(duì)照組, 產(chǎn)率分別增加了23.82%、48.98%。NaNO3的降低使EC04胞內(nèi)多糖的產(chǎn)率增多, 當(dāng)其濃度降為1.2g·L–1時(shí), EC04的胞內(nèi)多糖產(chǎn)率到達(dá)最大, 比原始對(duì)照組增加了75.07%。正交實(shí)驗(yàn)表(表3)顯示影響EC04胞內(nèi)多糖產(chǎn)率的最主要因素是NaNO3, 其次是MgSO4·7H2O和K2HPO4。表4顯示三種營養(yǎng)鹽對(duì)EC04的胞內(nèi)多糖產(chǎn)率影響均顯著(<0.05), 其中NaNO3影響極顯著(<0.01)。EC04胞內(nèi)多糖產(chǎn)率最高實(shí)驗(yàn)組的組合應(yīng)為MgSO4·7H2O濃度為112.5mg·L–1, K2HPO4濃度為60mg·L–1, NaNO3濃度為1.2g·L–1。經(jīng)檢驗(yàn), 在此條件下EC04的多糖產(chǎn)率為238.03mg·g–1, 與原始對(duì)照組相比提高了81.71%。此時(shí)小球藻EC04的細(xì)胞密度為47.98×106cells·mL–1。

正交實(shí)驗(yàn)中, 小球藻細(xì)胞密度也有顯著提高, 由極差看出影響小球藻細(xì)胞密度的最主要因素是K2HPO4, 其次為NaNO3和MgSO4·7H2O。表5顯示NaNO3和 K2HPO4對(duì)小球藻細(xì)胞密度影響顯著(<0.05), 其中K2HPO4的影響極顯著(<0.01)。MgSO4·7H20對(duì)小球藻EC04細(xì)胞密度的影響不顯著(>0.05)。

表3 營養(yǎng)鹽對(duì)多糖產(chǎn)率和生物量的正交實(shí)驗(yàn)結(jié)果及直觀分析

表4 營養(yǎng)鹽對(duì)EC04的胞內(nèi)多糖產(chǎn)率的方差分析

表5 營養(yǎng)鹽對(duì)EC04藻細(xì)胞密度的方差分析

2.1.3 維生素單因素優(yōu)化結(jié)果

以營養(yǎng)鹽優(yōu)化后的培養(yǎng)基作為二次對(duì)照組, 向培養(yǎng)基中添加VB1和VB12。由圖2可知隨著VB1、VB12濃度的升高, EC04胞內(nèi)多糖產(chǎn)率均為先上升而后下降的趨勢(shì)。達(dá)到最高值時(shí)VB1和VB12的濃度分別為0.5mg·L–1和0.1μg·L–1, 多糖產(chǎn)率分別為250.93和271.74mg·g–1。EC04細(xì)胞密度隨VB1和VB12的濃度的改變影響不顯著(>0.05)。加入的VB1濃度為0.5mg·L–1, VB12濃度為0.1μg·L–1后, 細(xì)胞密度為48.027×106cells·mL–1。

圖2 維生素單因素優(yōu)化結(jié)果

2.2 胞內(nèi)多糖紫外光譜掃描結(jié)果

提取胞內(nèi)多糖進(jìn)行紫外光譜掃描(圖3), 結(jié)果顯示在260nm和280nm處均無吸收峰, 表明多糖樣品中無核酸及蛋白質(zhì)。

圖3 胞內(nèi)多糖紫外掃描結(jié)果

2.3 胞內(nèi)多糖紅外光譜分析結(jié)果

多糖紅外光譜結(jié)果(圖4)表明, 多糖在3731.81cm–1和3453.93cm–1處有吸收峰, 此為—OH伸縮振動(dòng)引起的吸收; 2992.59cm–1處吸收峰為糖類飽和C—H振動(dòng)吸收; 1693.99cm–1處吸收峰為糖醛酸吸收峰, 說明多糖中具有糖醛酸基團(tuán)。1454.37cm–1處吸收峰為=CH2的變形吸收峰。1250~950cm–1之間的吸收峰是吡喃糖環(huán)的醚鍵(C—O—C)和羥基的吸收峰。863.95cm–1是吡喃糖環(huán)上次甲基的橫搖振動(dòng), 證明此多糖為吡喃糖。說明小球藻多糖含有帶糖醛酸基團(tuán)的吡喃糖。

圖4 多糖紅外光譜分析結(jié)果

2.4 胞內(nèi)多糖的抗氧化活性結(jié)果

2.4.1 胞內(nèi)多糖對(duì)DPPH·的清除能力

當(dāng)有自由基清除劑存在時(shí), DPPH·的單電子會(huì)與之配對(duì)從而吸收逐漸消失, 且褪色程度取決于抗氧化劑的供氫能力(Shon et al, 2003)。由圖5可知, 在0.5~3mg·mL–1內(nèi), 多糖對(duì)DPPH·清除能力隨著濃度的增加而增強(qiáng), 其IC50為1.445mg·mL–1。當(dāng)樣品濃度為3mg·mL–1時(shí), 對(duì)DPPH·的清除率可以達(dá)到82.32%。

圖5 胞內(nèi)多糖對(duì)DPPH·的清除率

2.4.2 胞內(nèi)多糖對(duì)·OH的清除能力

·OH的化學(xué)性質(zhì)特別活潑, 也是毒性最大的自由基, 幾乎能與細(xì)胞內(nèi)各類有機(jī)物反應(yīng)(葛霞等, 2011)。實(shí)驗(yàn)結(jié)果(圖6)表明隨著多糖濃度的升高, 在濃度達(dá)到3mg·mL–1時(shí), ·OH清除率達(dá)到64.27%。其IC50為2.152mg·mL–1。

圖6 多糖對(duì)·OH的清除率

3 討論

小球藻主要在光合自養(yǎng)條件下培養(yǎng), 一定條件下所獲得的細(xì)胞濃度較低, 主要是因?yàn)樾∏蛟逄幱陟o置培養(yǎng)狀態(tài), 隨著藻細(xì)胞的積累而沉降在培養(yǎng)瓶底部, 為防止此現(xiàn)象發(fā)生, 應(yīng)盡可能多次搖動(dòng)錐形瓶以提高生物量。國內(nèi)外研究中小球藻主要培養(yǎng)方式有光合自養(yǎng)、異養(yǎng)和混養(yǎng)方式, 且根據(jù)實(shí)際需求采用不同規(guī)模的培養(yǎng)方式。已有公司實(shí)行大批量培養(yǎng), 如采用生物反應(yīng)器, 但此方法限于實(shí)驗(yàn)室各種條件穩(wěn)定的情況下, 適合大批量生產(chǎn)。本實(shí)驗(yàn)采用光合自養(yǎng)條件下培養(yǎng), 是為了探究這株藻的產(chǎn)糖量、條件以及活性的研究, 適合實(shí)驗(yàn)室科研, 對(duì)人力物力都能達(dá)到較大的利用化。本實(shí)驗(yàn)方法主要是通過調(diào)整鹽濃度的方法來提高小球藻生物量及其產(chǎn)多糖含量。

營養(yǎng)鹽濃度是微藻細(xì)胞合成代謝產(chǎn)物的主要限制因素(Sun et al, 2010)。在一定程度上改變N源和P源均影響小球藻EC04細(xì)胞內(nèi)總糖的合成, 濃度過大則會(huì)抑制胞內(nèi)多糖的產(chǎn)生, 這與譚績業(yè)等(2004)的研究結(jié)果一致。

SO42–濃度的提高能促進(jìn)多糖的合成, Mg2+參與葉綠素和菌綠素等光合色素, 同時(shí)也是一些酶作用的激活劑或調(diào)節(jié)劑, 對(duì)某些重金屬產(chǎn)生的生物細(xì)胞毒害還具有一定的拮抗作用(史成穎, 2003)。因此, 適量提高M(jìn)gSO4·7H2O濃度有利于微藻光合作用以及碳水化合物的積累, 但是濃度過大反而會(huì)有抑制效果。

P是遺傳物質(zhì)核酸和生物膜的重要組成部分, 在核酸、蛋白及磷脂等代謝中有重要作用, 微藻進(jìn)行光合作用的暗反應(yīng)時(shí)需利用ATP和NADPH的化學(xué)能將CO2固定并還原成糖或者其他有機(jī)物, ATP和NADPH的形成也需要大量P。因此適量的提高P源有利于微藻光合作用暗反應(yīng)的進(jìn)行和多糖的積累。

N是蛋白質(zhì)等大分子物質(zhì)的重要組成部分, 而蛋白質(zhì)是生命活動(dòng)的執(zhí)行者。N限制時(shí)會(huì)引起蛋白質(zhì)含量豐富的色素體的生成減少, 從而影響光合效率。伴隨著N脅迫, 微藻內(nèi)多糖等碳水化合物會(huì)快速降解為脂肪酸合成提供代謝物, N濃度過高也會(huì)對(duì)多糖的合成起抑制作用。本實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明適量降低NaNO3濃度EC04胞內(nèi)多糖產(chǎn)率增高, 此后隨著NaNO3濃度的繼續(xù)降低, EC04胞內(nèi)多糖顯著降低。

維生素作為生長因子維持微藻的基本生長需求, 在本實(shí)驗(yàn)中VB1、VB12也在不同程度上影響小球藻EC04胞內(nèi)多糖含量, 與張欣華等(2000)研究結(jié)果一致。VB1、VB12對(duì)小球藻多糖產(chǎn)率有影響的機(jī)理可能是它們作為各類輔酶的組成成分, 參與到微藻的代謝中。

微藻多糖具有良好的成膜性能, 可以作為良好的抗氧化劑(王凌等, 2012), 多糖的抗氧化活性一般與其所帶硫酸根含量有關(guān)。李亞清(2004)報(bào)道小球藻多糖含有硫酸根, 而本實(shí)驗(yàn)顯示小球藻多糖中無硫酸根可能是因?yàn)榕囵B(yǎng)基成分不同導(dǎo)致多糖的組成成分及所帶基團(tuán)不同?？寡趸瘜?shí)驗(yàn)表明小球藻胞內(nèi)多糖仍具有清除DPPH·和·OH的能力, 且效果略低于VC。我們推斷, 自由基清除能力也許跟多糖所含糖醛酸含量有關(guān), 且糖醛酸含量越高, 抗自由基能力越強(qiáng)。這與申明月等(2007), 趙雪等(2011)等實(shí)驗(yàn)結(jié)果一致, 其作用機(jī)制可能是由于自由基引起糖醛酸鏈斷裂, 從而達(dá)到清除自由基的效果。

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Study on the optimum conditions for Polysaccharide production ofEC04 and its antioxidant activity analysis

YANG Haiyan, LI Jieqiong, LIU Hongquan, HUANG Xiaoyan, XU Zhongtao, LUO Yuankang, XUAN Jincai, LONG Han

Guangxi Colleges and Universities Key Laboratory of Utilization of Microbial and Botanical Resources, School of Marine Sciences and Biotechnology, Guangxi University for Nationalities, Nanning 530008, China; Guangxi Key Laboratory for Polysaccharide Materials and Modifications, School of Marine Sciences and Biotechnology, Guangxi University for Nationalities, Nanning 530008, China

Polysaccharides inare involved in many important biological activities and physiological functions. To improve the intracellular polysaccharide production of, culture conditions were investigated by single factor experiment and orthogonal experiment. The results showed that the maximum polysaccharide accumulation was obtained at MgSO4·7H2O 112.5 mg·L–1, K2HPO460 mg·L–1, NaNO31.2 g·L–1, VB10.5 mg·L–1, and VB120.1 μg·L–1. Under these conditions, the polysaccharide production and biomass were 271.74 mg·g–1and 48.027×106cells·mL–1, which increased by 97.49% and 34.91%, respectively. Free radical scavenging rate of the polysaccharide was also studied. The results showed maximum scavenging rates of DPPH radical and hydroxyl radical were 82.32% and 64.27%, respectively.

sp; polysaccharide; nutrient; vitamin; radical

10.11978/2019016

http://www.jto.ac.cn

Q946

A

1009-5470(2019)06-0098-07

2019-02-17;

2019-04-24。

林強(qiáng)編輯

廣西自然科學(xué)基金項(xiàng)目(2018GXNSFAA294032); 廣西民族大學(xué)研究生教育創(chuàng)新計(jì)劃項(xiàng)目(Gxun-chxzs 2017117); 廣西民族大學(xué)大學(xué)生創(chuàng)新創(chuàng)業(yè)項(xiàng)目(Gxun-chxzs 2017106080); 廣西科技基地和人才專項(xiàng)(桂科AD18126005)

楊海燕(1994—), 女, 江西省上饒市人, 碩士研究生, 主要從事微生物生物活性物質(zhì)研究, E-mail: 1239289766@qq.com

劉紅全(1975—), 男, 副教授, 博士, 主要從事植物分子生物學(xué)研究。E-mail: lhongquan@163.com.

2019-02-17;

2019-04-24.

Editor: LIN Qiang

Project of Guangxi Natural Science Foundation (2018GXNSFAA294032); Graduate Education Innovation Project of Guangxi University for Nationalities (Gxun-chxzs 2017117); Innovation and Entrepreneurship Project of Guangxi University for Nationalities (Gxun-chxzs 2017106080); Guangxi Science and Technology Base and Talent Project (Guike AD18126005).

LIU Hongquan, E-mail: lhongquan@163.com