催化還原-管內(nèi)固相微萃取-毛細(xì)管液相色譜系統(tǒng)用于二硝基芘同分異構(gòu)體的分析

李軻　王昱　嚴(yán)勇　趙蕾　張東堂　王亞楠　郭廣生　汪夏燕

摘 要 構(gòu)建了催化還原-管內(nèi)固相微萃取-毛細(xì)管液相色譜聯(lián)用（CR-IT-SPME-CLC）體系，用于3種二硝基芘（DNP）同分異構(gòu)體的快速分離分析。以Pt/Al2O3為催化劑，以甲酸銨為供氫體，在95℃的條件下，采用催化氫化的方法實(shí)現(xiàn)了3種DNP樣品的高效還原。通過優(yōu)化預(yù)聚合溶液組成，利用自制的毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置制備了還原氧化石墨烯均勻分布且滲透性良好的納米材料共聚管內(nèi)固相微萃取整體柱。優(yōu)化了固相微萃取的解析液條件，實(shí)現(xiàn)了3種DNP還原產(chǎn)物二氨基芘的高效萃取，萃取效率可達(dá)82.48%～91.65%。以粒徑為5 μm的C18為填料，采用高壓勻漿填充法制備了毛細(xì)管色譜填充柱，并以此構(gòu)建了毛細(xì)管液相色譜-激光誘導(dǎo)熒光檢測(cè)（CLC-LIF）系統(tǒng)。通過優(yōu)化色譜分離條件，在10 min內(nèi)實(shí)現(xiàn)3種二氨基芘的完全分離。本方法操作簡單、快速、靈敏，適合于硝基多環(huán)芳烴中DNP同分異構(gòu)體的分析。

關(guān)鍵詞 毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置; 二硝基芘同分異構(gòu)體; 催化還原; 管內(nèi)固相微萃取; 毛細(xì)管液相色譜-激光誘導(dǎo)熒光檢測(cè)

1 引 言

硝基多環(huán)芳烴（Nitro-PAHs）是一類持久性有機(jī)污染物[1]，主要來源于化石燃料和生物質(zhì)的不完全燃燒，以及多環(huán)芳烴（PAHs）與大氣介質(zhì)（NO2、NO3和HNO3等）的光化學(xué)反應(yīng)[2]。雖然環(huán)境中硝基多環(huán)芳烴的濃度低于多環(huán)芳烴，但其致突變性、致畸性和致癌性都是其母體多環(huán)芳烴的數(shù)十甚至數(shù)萬倍[3，4]，其中含有4個(gè)芳香環(huán)的硝基多環(huán)芳烴則具有更強(qiáng)的毒性效應(yīng)[5]，如二硝基芘（DNP）的同分異構(gòu)體： 1，3-二硝基芘（1，3-DNP）、1，6-二硝基芘（1，6-DNP）和1，8-二硝基芘（1，8-DNP）等。2012年，國際癌癥研究中心將3種二硝基芘異構(gòu)體列入可能的人類致癌物名單中[6]。3種二硝基芘異構(gòu)體雖然具有相似的化學(xué)結(jié)構(gòu)，但其對(duì)生態(tài)環(huán)境的影響并不相同，1，6-DNP和1，8-DNP的急性毒性約為1，3-DNP的3～4倍[7]。 然而，目前針對(duì)3種DNPs同分異構(gòu)體的分析仍鮮有報(bào)道。

環(huán)境中nitro-PAHs分析方法主要包含兩個(gè)步驟： 樣品前處理過程和分析檢測(cè)過程[8]。Nitro-PAHs的含量極低，且成分復(fù)雜，需要高效的萃取方法。管內(nèi)固相微萃取（IT-SPME）是Eisert等[9]提出的一種樣品前處理技術(shù)，具有操作方法簡便、高效、試劑消耗少、易與其它儀器聯(lián)用的特點(diǎn)，廣泛應(yīng)用于生物分析[10，11] 、食品安全[12]和環(huán)境監(jiān)測(cè)[13]等領(lǐng)域。IT-SPME技術(shù)已被成功應(yīng)用于PAHs的萃取分析中[14]，但其在含量低但毒性更大的nitro-PAHs分析中的應(yīng)用仍鮮有報(bào)道。石墨烯是一種由碳原子構(gòu)成的單層片狀結(jié)構(gòu)的二維材料，具有比表面積大、疏水性強(qiáng)、化學(xué)穩(wěn)定性好的優(yōu)點(diǎn)[15]，已被廣泛應(yīng)用于多環(huán)芳烴[16]和酰胺類除草劑[17]等的萃取分析中。氧化石墨烯（GO）表面含有親水性的含氧官能團(tuán)，被還原后生成還原氧化石墨烯（rGO）， rGO的親水性變差，疏水性增強(qiáng)[18]，因而適于疏水性nitro-PAHs的萃取富集，但是，rGO易在固相微萃取整體柱的制備過程產(chǎn)生沉積，不利于其在整體柱中的均勻分布，影響萃取效果。因此，需要建立一種rGO可均勻分布的整體柱制備方法。

Nitro-PAHs樣品經(jīng)過前處理過程后，通常采用氣相色譜法[19]或高效液相色譜法[20]對(duì)檢測(cè)物進(jìn)行分離，然后通過熒光[21]、化學(xué)發(fā)光[22]、質(zhì)譜[23]或電化學(xué)檢測(cè)方法[24]等對(duì)其進(jìn)行定性或定量分析。在高溫條件下，nitro-PAHs不穩(wěn)定，易分解，因此高效液相色譜法是分離nitro-PAHs最常用的方法。電化學(xué)檢測(cè)法靈敏度高，但流動(dòng)相易在電極表面發(fā)生電化學(xué)反應(yīng)，產(chǎn)生背景電流[22]。質(zhì)譜檢測(cè)法可用于未知結(jié)構(gòu)硝基多環(huán)芳烴的檢測(cè)，但昂貴且體積大的儀器不能滿足現(xiàn)場(chǎng)分析的需求。熒光檢測(cè)法和化學(xué)發(fā)光檢測(cè)法選擇性好，靈敏度高，且具有較低的檢測(cè)限，但化學(xué)發(fā)光法的應(yīng)用范圍受到一定的限制。Nitro-PAHs分子中由于硝基官能團(tuán)的強(qiáng)吸電子特性，使其在熒光檢測(cè)器中響應(yīng)微弱，但當(dāng)nitro-PAHs上的硝基還原為氨基之后，其熒光響應(yīng)信號(hào)大幅增強(qiáng)。Hasei等[25]使用一個(gè)硅膠柱和兩個(gè)反相C18色譜柱對(duì)土壤和大氣顆粒物中收集的3，6-二硝基苯并[e]芘樣品進(jìn)行萃取，并通過在線還原-高效液相色譜-熒光檢測(cè)法進(jìn)行定量分析。該方法前處理過程復(fù)雜，耗時(shí)較長，且未用于多組分硝基多環(huán)芳烴的同時(shí)分析。Watanabe等[26]采用高效液相色譜-熒光檢測(cè)方法分離檢測(cè)了3種DNP同分異構(gòu)體，但該方法使用商業(yè)化的不銹鋼色譜柱，分析時(shí)間較長，且未實(shí)現(xiàn)3種樣品的完全分離。目前，仍缺乏一種高效、靈敏、快速且操作方便的方法用于多組分硝基多環(huán)芳烴的分析。

本研究建立了一種集樣品預(yù)處理與分離檢測(cè)于一體的多種nitro-PAHs同分異構(gòu)體的分析方法。采用催化氫化方法還原3種DNPs同分異構(gòu)體，并利用構(gòu)建的IT-SPME-CLC-LIF系統(tǒng)分析了DNPs的還原產(chǎn)物二氨基芘（DAPs）。使用毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置制備了rGO均勻分布的管內(nèi)固相微萃取柱，提高了萃取效率; 以實(shí)驗(yàn)室自制的毛細(xì)管填充柱為分離柱，建立了CLC-LIF系統(tǒng)，實(shí)現(xiàn)了3種DAPs的快速分離檢測(cè)。

2 實(shí)驗(yàn)部分

2.1 儀器與試劑

CBIO-UV8D紫外光反應(yīng)箱（北京賽百奧科技有限公司）; 熔融石英毛細(xì)管（25 μm i.d.和100 μm i.d.，美國Polymicro Technologies公司）; KQ2200B超聲波清洗器（昆山市超聲波儀器有限公司）; 旋渦振蕩器（IKA集團(tuán)）; HITACHI S-4300掃描電子顯微鏡（日本日立公司）。

甲基丙烯酸正丁酯（n-BMA， 99%）、二甲基丙烯酸乙二醇酯（EDMA， 99%）、3-（三甲氧基甲硅基）甲基丙烯酸丙酯（γ-MAPS， 98%）、2，2-二甲氧基-2-苯基苯乙酮（DMPA， 99%）（百靈威科技有限公司）; N，N-二甲基甲酰胺（DMF， 99%）、丙酮、HCl、NaOH、H3PO4、二氯甲烷（分析純，北京化工廠）; 熒光素鈉（分析純，北京伊諾凱科技有限公司）;? rGO（美國Graphene 3D Lab）; 聚乙二醇-6000、乙腈、乙酸（分析純，天津市福晨化學(xué)試劑廠）; 甲醇（99.9%，天津市四友精細(xì)化學(xué)品有限公司）; 甲酸銨（98%，國藥集團(tuán)化學(xué)試劑有限公司）; 氧化鋁載鉑（5%，Alfa Aesar公司）; 1，3-DNP、1，6-DNP、1，8-DNP（美國Accustandard公司）; 1，3-DAP、1，6-DAP、1，8-DAP（98%，梯希愛（上海）化成工業(yè)發(fā)展有限公司）。實(shí)驗(yàn)用水為超純水（18.2 MΩ cm，美國Thermo Scientific公司純水機(jī)制備）。

1.0 g/L DNP儲(chǔ)備液制備：取5.0 mg DNP樣品，加入5.0 mL二氯甲烷，超聲振蕩均勻，于4℃條件下儲(chǔ)存; 500.0 mg/L DAP儲(chǔ)備液制備：取5.0 mg DAP樣品，加入10.0 mL甲醇，超聲振蕩均勻，于4℃條件下儲(chǔ)存。

2.2 搭建毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置

毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置包括旋轉(zhuǎn)電機(jī)（含毛細(xì)管固定裝置）、固定旋轉(zhuǎn)電機(jī)底座、

旋轉(zhuǎn)電機(jī)控制裝置和控制毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)范圍的擋板共4部分，其裝置結(jié)構(gòu)如圖1所示[27]。具體操作過程如下：毛細(xì)管沿旋轉(zhuǎn)電機(jī)主軸方向放置，兩端分別由旋轉(zhuǎn)電機(jī)和擋板固定，調(diào)節(jié)控制裝置的轉(zhuǎn)速可以實(shí)現(xiàn)毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)。改變電機(jī)連接的固定裝置，可實(shí)現(xiàn)多根毛細(xì)管同步旋轉(zhuǎn)（見電子版文后支持信息圖S1所示）。通過改變擋板與固定裝置之間的距離實(shí)現(xiàn)不同長度毛細(xì)管的旋轉(zhuǎn)。

2.3 制備IT-SPME整體柱

在熔融石英毛細(xì)管內(nèi)（100 μm i.d.; 360 μm o.d.）通過深紫外光引發(fā)聚合方法制備聚甲基丙烯酸正丁酯-二甲基丙烯酸乙二醇酯-還原氧化石墨烯（BMA-EDMA-rGO）整體柱。制備整體柱前，首先使用γ-MAPS對(duì)毛細(xì)管內(nèi)壁進(jìn)行乙烯化處理[28]。取BMA（300.0 mg）、EDMA（200.0 mg）、DMF（400.0 mg）、PEG-6000（100.0 mg）、rGO（1.0 mg）和DMPA（5.0 mg）配制預(yù)聚合溶液。預(yù)聚合溶液經(jīng)渦旋振蕩、超聲處理后，注入到乙烯化的毛細(xì)管中，使用硅橡膠密封毛細(xì)管兩端，將該毛細(xì)管固定在毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置中，置于紫外反應(yīng)箱（CBIO-UV8D，254 nm，18 W）中聚合反應(yīng)約 25 min; 最后用甲醇沖洗毛細(xì)管，以去除未反應(yīng)的單體和致孔劑。

2.4 制備色譜分離填充柱

自制的毛細(xì)管填充柱以反相C18固定相為填料，以帶有篩板的二通為柱塞，在石英毛細(xì)管（100 μm i.d.; 360 μm o.d.）中通過勻漿填充法制備毛細(xì)管色譜分離柱。將C18固定相顆粒分散于丙酮中， 形成勻漿液（20 mg/mL）， 并轉(zhuǎn)移到毛細(xì)管柱制柱機(jī)中，通過色譜泵將C18顆粒填充入毛細(xì)管中，當(dāng)填充柱長度達(dá)到20 cm時(shí)關(guān)閉色譜泵，然后取下填充好的毛細(xì)管并連接另一端的柱塞，最后用高壓色譜泵對(duì)毛細(xì)管填充柱進(jìn)行壓實(shí)。

2.5 DNP的還原

參照并改進(jìn)了文獻(xiàn)[24]中催化氫化的方法對(duì)DNP樣品進(jìn)行還原（實(shí)驗(yàn)裝置如電子版文后支持信息圖 S2A所示）。 將1.0 mg Pt/Al2O3催化劑和50.0 μL DNP樣品（1.0 μg/mL; 溶劑為含5.0 mg/mL甲酸銨的80%甲醇溶液）置于離心管中，超聲混合均勻，然后將離心管置于一個(gè)不銹鋼瓶中，于100 psi（約0.69 MPa）壓力下用氮?dú)饬骷訅? min，置于95℃水浴中反應(yīng)2 h。最后，將離心管中的溶液離心，收集上清液，檢測(cè)還原后上清液以及相同濃度DAP樣品的熒光強(qiáng)度，按式（1）計(jì)算還原效率（Re）：

R_e（%）=（A₁/A₂）×100%（1）

其中， A1是還原后上清液的峰面積; A2是相同濃度DAP樣品的峰面積。

2.6 DAP的萃取

萃取過程包括預(yù)處理、萃取、洗滌和解析4個(gè)步驟。萃取實(shí)驗(yàn)裝置示意圖如電子版文后支持信息圖S2B所示。過程如下： （1）預(yù)處理 采用甲醇沖洗聚（BMA-EDMA-rGO）整體柱進(jìn)行預(yù)處理; （2）萃取在400 psi （約2.76 MPa）氮?dú)饬鲏毫ο聦?0.0 μL 5.0 μg/mL DAP樣品加載到萃取柱上，并收集流出液; （3）洗滌 在400 psi氮?dú)饬鲏毫ο?，?0.0 μL超純水沖洗萃取柱，以洗除雜質(zhì)，并收集流出液; （4）解析 在400 psi氮?dú)饬鲏毫ο?，?0.0 μL解析溶液注入萃取柱，以洗脫樣品，并收集流出液; 最后，在相同條件下，檢測(cè)5.0 μg/mL DAP標(biāo)準(zhǔn)樣品和萃取實(shí)驗(yàn)所有收集溶液的熒光信號(hào)，按式（2）計(jì)算萃取效率（Ee）：

E_e（%）=（A₃/A₄）×100%（2）

其中，A3是解析后收集溶液的峰面積; A4是DAP標(biāo)準(zhǔn)樣品的峰面積。

2.7 DAP的色譜分離

采用搭建的CLC-LIF系統(tǒng)（見電子版文后支持信息S3）進(jìn)行色譜分離。通過等度洗脫模式進(jìn)行色譜分離，以乙腈-水為流動(dòng)相，其中乙腈的濃度范圍是50%～70%（V/V）; 采用H3PO4調(diào)整流動(dòng)相至pH 3.7～5.1， 流動(dòng)相流速300～500 nL/min。采用熒光檢測(cè)，激發(fā)波長375 nm，發(fā)射波長405 nm。

3 結(jié)果與討論

3.1 IT-SPME整體柱的表征

預(yù)聚合溶液的組成影響聚（BMA-EDMA-rGO）整體柱的形貌、 結(jié)構(gòu)及滲透性，其組成的優(yōu)化方案見電子版文后支持信息表S1。通過掃描電鏡對(duì)所制備的整體柱進(jìn)行了表征（電子版文后支持信息圖S4）。表S1中，1號(hào)預(yù)聚合溶液所制備的整體柱不能形成均一致密的結(jié)構(gòu)，并且整體柱柱體不能良好地結(jié)合到管壁上。與2號(hào)預(yù)聚合溶液相比，3號(hào)預(yù)聚合溶液所制備的整體柱結(jié)構(gòu)更加致密均勻，具有較大的比表面積，可以提高萃取效率，連續(xù)的大孔結(jié)構(gòu)可確保較高的滲透性。因此，最終選擇的預(yù)聚合溶液組成是：BMA（300.0 mg）、EDMA（200.0 mg）、DMF（400.0 mg）、PEG-6000（100.0 mg）、rGO （1.0 mg）和DMPA（5.0 mg）。

為了實(shí)現(xiàn)rGO在聚合物基體中的均勻分散，采用實(shí)驗(yàn)室自制的毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置制備整體柱。圖2A是在水平靜置條件下所制備整體柱的顯微鏡圖片，可見明顯分層結(jié)構(gòu)，黑色的rGO多沉積于毛細(xì)管底部。由圖2B可見，通過毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置所制備整體柱中rGO片層可均勻地分布在聚合物基體中。通過比較靜置與旋轉(zhuǎn)狀態(tài)下所制備的整體柱的形貌 （圖2C和2D），其整體形貌無明顯差別，毛細(xì)管旋轉(zhuǎn)裝置對(duì)整體柱聚合過程無明顯影響，但是從圖2C明顯看出同一個(gè)截面左右出現(xiàn)分界區(qū)域，左邊顏色偏深，右邊顏色偏淺，這與圖2A中觀察到的分層現(xiàn)象一致，進(jìn)一步說明水平靜置條件下所制備整體柱中rGO分布不均勻。

萃取整體柱的SEM表征結(jié)果如圖3所示。在優(yōu)化的預(yù)聚合溶液組成條件下可以制備結(jié)構(gòu)均勻的整體柱（圖3A），聚合物基體與毛細(xì)管內(nèi)壁結(jié)合緊密（圖3B）。所制備的整體柱具有三維網(wǎng)狀骨架結(jié)構(gòu)，由通孔和微孔構(gòu)成。通孔的尺寸約5 μm（圖3C），因此具有良好的通透性，在樣品萃取過程中，有利于快速均勻地傳質(zhì)。由圖3D可見到嵌入到整體柱中的rGO片層。

3.2 DNP的還原效率

DNP還原效率的測(cè)定在中空的毛細(xì)管（100 μm i.d.; 360 μm o.d.）中進(jìn)行，以50%（V/V）乙腈為流動(dòng)相，以LIF為檢測(cè)器，在0.14 MPa（20 psi）氮?dú)饬鲏毫ο买?qū)動(dòng)還原產(chǎn)物進(jìn)行檢測(cè)。根據(jù)公式（1）計(jì)算其還原效率。3種DNP的還原效率為99.53%～110.13%（表1），說明本方法還原效率較高。

3.3 優(yōu)化解析溶劑和計(jì)算DAP的萃取效率

采用與3.2節(jié)中相似的裝置檢測(cè)萃取前后的樣品。 萃取后流出溶液中未檢出樣品信號(hào)峰，說明聚（BMA-EDMA-rGO）整體柱對(duì)DAP具有較強(qiáng)的萃取能力。為了獲得較好的解析效率，對(duì)解析溶劑進(jìn)行了優(yōu)化（見電子版文后支持信息圖S5）。解析溶劑的詳細(xì)優(yōu)化方案見電子版文后支持信息表S2。實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明，80%甲醇（V/V， pH=4.5）作為解析試劑時(shí)，解析效率較高。3種DAP的萃取效率在82.48%～91.65%之間（表2）。上述結(jié)果表明，聚（BMA-EDMA-rGO）整體柱對(duì)DAP具有較好的萃取性能。

3.4 色譜分離條件的優(yōu)化

考察了3種流動(dòng)相濃度對(duì)DAP樣品分離的影響（圖4A）。當(dāng)乙腈濃度由50%（V/V）提高到70%（V/V）時(shí)，由于高比例乙腈對(duì)于DAP樣品的強(qiáng)洗脫能力，其在色譜柱中的保留減弱，并且隨著乙腈濃度的提高，3種DAP樣品分離度降低，因此，應(yīng)選擇低濃度乙腈作為流動(dòng)相。然而，由于DAP樣品與C18鏈有較強(qiáng)的疏水作用，隨著乙腈濃度降低，流動(dòng)相洗脫能力減弱，色譜峰拖尾現(xiàn)象越來越嚴(yán)重。因此，本研究沒有進(jìn)行更低濃度乙腈作為流動(dòng)相的探索，選擇50%（V/V）乙腈作為色譜分離流動(dòng)相條件繼續(xù)進(jìn)行優(yōu)化實(shí)驗(yàn)。

流動(dòng)相流速對(duì)樣品分離的保留時(shí)間和分離度具有重要影響，本研究選擇了3種流動(dòng)相流速（300、 400和500 nL/min） 對(duì)于DAP樣品進(jìn)行分離（圖4B）。當(dāng)流動(dòng)相流速由500 nL/min降低到300 nL/min時(shí)，DAP樣品與C18鏈之間的相互作用時(shí)間延長，增加了樣品的保留，色譜峰的拖尾現(xiàn)象嚴(yán)重，并且在低流速下其分離時(shí)間過長。然而，當(dāng)流速大于500 nL/min時(shí)，分離壓力接近色譜泵的最大壓力。因此，最終采用500 nL/min的流速進(jìn)行實(shí)驗(yàn)樣品的色譜分離。

使用H3PO4調(diào)節(jié)流動(dòng)相的pH值，考察流動(dòng)相pH值對(duì)色譜分離的影響。1，3-DAP、1，6-DAP和1，8-DAP的pKa分別為5.07、4.82和4.84，因此調(diào)整流動(dòng)相的pH范圍為3.7～5.1，圖4C為使用不同pH值流動(dòng)相的分離結(jié)果。以1，3-DAP和1，6-DAP為例計(jì)算分離度（電子版文后支持信息表S3），結(jié)果表明，在pH=4.3的流動(dòng)相條件下，3種樣品的峰形最好，兩種樣品的分離度最高（R36=2.71），而在其它pH條件下，由于3種DAP樣品質(zhì)子化程度不同，影響了樣品與固定相之間的靜電作用，造成了色譜峰的展寬。綜上，得到最優(yōu)的色譜分離條件為：流動(dòng)相為50%（V/V）乙腈， pH=4.3，流速為500 nL/min。

3.5 IT-SPME-HPLC系統(tǒng)的最優(yōu)分離結(jié)果

經(jīng)過系統(tǒng)的優(yōu)化分析，得到的優(yōu)化分離結(jié)果如圖5所示，在10 min內(nèi)實(shí)現(xiàn)3種DAP同分異構(gòu)體的完全分離，其中1，3-DAP、1，6-DAP和1，8-DAP的理論塔板數(shù)依次為12272、9121和10979 plates/m。3種DAP樣品的分離度分別是R36=3.95、R68=2.16和R38=1.80。1，3-DAP和1，6-DAP之間的分離度RSD=2%（n=3）。本系統(tǒng)可實(shí)現(xiàn)DAP同分異構(gòu)體的快速分離與分析。

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Catalytic Reduction-In-Tube Solid Phase Microextraction-Capillary

Liquid Chromatography System for Analysis of Dinitropyrene Isomers

LI Ke， WANG Yu， YAN Yong， ZHAO Lei， ZHANG Dong-Tang， WANG Ya-Nan， GUO Guang-Sheng， WANG Xia-Yan*

（Center of Excellence for Environmental Safety and Biological Effects， Beijing Key Laboratory for Green Catalysis and

Separation， Department of Chemistry and Chemistry Engineering，

Beijing University of Technology， Beijing 100124， China）

Abstract In this study， a catalytic reduction-in-tube solid phase microextraction coupled with capillary liquid chromatography （CR-IT-SPME-CLC） system was developed for rapid analysis of dinitropyrene isomers （DNPs）. Pt/Al2O3 and ammonium formate were used as catalyst and hydrogen donor respectively， and three DNPs were reduced efficiently by catalytic hydrogenation at 95℃. A solid phase microextraction monolithic column embedded into nanomaterial with uniform distribution of reduced graphene oxide and good permeability， which was prepared using self-made capillary rotating device by optimizing the composition of the pre-polymerization solution. For highly efficient extraction of three dinitropyrene reduction products， desorption solution of solid phase microextraction was optimized， and the extraction efficiency was 80.47%-93.37%. Capillary chromatography column was packed with C18 particles （5 μm） at high chromatographic pump pressure， and a capillary liquid chromatography-laser induced fluorescence detection system was established. Complete separation of three diaminopyrenes was achieved in 10 min by optimizing the chromatographic separation conditions. The proposed method is simple， rapid and sensitive for the analysis of DNP isomers among nitropolycyclic aromatic hydrocarbons.

Keywords Capillary rotating device; Dinitropyrene isomers; Catalytic reduction; In-tube solid phase microextraction; Capillary liquid chromatography-laser induced fluorescence detection.