趙 晶 李旭彤 梁學(xué)忠 王志城 崔 靜 陳 斌 吳立強(qiáng) 王省芬 張桂寅 馬峙英 張 艷
陸地棉漆酶基因家族鑒定及在黃萎病菌脅迫下的表達(dá)分析*
趙 晶**李旭彤**梁學(xué)忠 王志城 崔 靜 陳 斌 吳立強(qiáng) 王省芬 張桂寅 馬峙英 張 艷*
河北農(nóng)業(yè)大學(xué) / 華北作物種質(zhì)資源研究與利用重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 / 河北省棉花產(chǎn)業(yè)協(xié)同創(chuàng)新中心, 河北保定 071001
黃萎病是降低棉花產(chǎn)量和品質(zhì)較為嚴(yán)重的維管束病害。棉花在抵抗病原菌的過(guò)程中, 抗病基因起著尤為重要的作用。漆酶是一種多功能氧化酶, 在植物木質(zhì)素合成和提高植株抗逆性等方面發(fā)揮著重要作用。高質(zhì)量版本的基因組是提升基因家族分析準(zhǔn)確性的必要條件。本研究以目前最新的陸地棉TM-1高質(zhì)量版本基因組為參考, 通過(guò)生物信息學(xué)分析鑒定了陸地棉基因組中的()基因家族, 并對(duì)其進(jìn)行了理化性質(zhì)、基因結(jié)構(gòu)、染色體定位以及在黃萎病脅迫下的表達(dá)模式分析。結(jié)果表明, 陸地棉TM-1基因組中共包含83個(gè)家族成員, 分布在24條染色體上, 所有GhirLAC蛋白均定位在胞外, 且具有相同/相似的保守基序。系統(tǒng)發(fā)育樹(shù)分析顯示,基因家族成員可分為7個(gè)亞組。結(jié)合黃萎病脅迫下棉花轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù), 將基因家族各成員的表達(dá)分為3種模式, 其中第1類和第2類基因在黃萎病菌脅迫下分別呈現(xiàn)有規(guī)律的表達(dá)量升高和降低, 推測(cè)這些基因在棉花抗黃萎病反應(yīng)中發(fā)揮重要功能。熒光定量PCR結(jié)果表明,()、()和() 3個(gè)候選基因均受黃萎病菌誘導(dǎo)表達(dá), 其表達(dá)趨勢(shì)與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)相吻合。本研究為以后深入解析棉花基因的抗病功能及分子機(jī)制奠定基礎(chǔ)。
陸地棉; 漆酶; 基因家族; 黃萎病; 基因表達(dá)
棉花(spp)是世界上第一大天然纖維作物, 具有重要的經(jīng)濟(jì)價(jià)值, 也是食品、飼料和生物燃料的重要來(lái)源[1]。在生長(zhǎng)過(guò)程中, 棉花的品質(zhì)和產(chǎn)量會(huì)受到多種生物和非生物脅迫, 其中危害最大的是由大麗輪枝菌(Kleb.)引起的黃萎病[2]。黃萎病菌寄主范圍極其廣泛, 其產(chǎn)生的菌核對(duì)極端溫度變化適應(yīng)能力強(qiáng), 可在土壤中存活數(shù)十年, 因此防治難度很大, 每年造成巨大經(jīng)濟(jì)損失[3-4]。研究表明利用品種的遺傳抗性可以有效降低黃萎病帶來(lái)的危害, 實(shí)現(xiàn)棉花的高產(chǎn)、穩(wěn)產(chǎn)[5]。
細(xì)胞壁是植物抵御病原體侵襲的天然屏障, 當(dāng)病原菌侵染時(shí), 寄主植物細(xì)胞在細(xì)胞壁、胞間層、細(xì)胞質(zhì)等不同部位產(chǎn)生一系列抗性反應(yīng), 可以有效地阻止病原菌的再度侵染和蔓延[6-8]。已有研究表明, 在細(xì)胞壁的木質(zhì)化過(guò)程中, 從薄壁組織細(xì)胞內(nèi)合成的木質(zhì)醇單體分泌至胞外經(jīng)脫氫聚合反應(yīng)形成木質(zhì)素[9]。植物細(xì)胞壁的木質(zhì)化能夠抵抗病原菌侵入的機(jī)械壓力、抵抗真菌酶類對(duì)細(xì)胞壁的降解和阻斷病原菌與寄主植物間的物質(zhì)交流[10]。木質(zhì)素是構(gòu)成植物細(xì)胞壁的成分之一, 而漆酶又是木質(zhì)素合成途經(jīng)中的關(guān)鍵酶之一, 因此漆酶在植物細(xì)胞壁形成和抗病過(guò)程中的作用值得深入研究。
漆酶屬于銅藍(lán)蛋白家族, 是一種結(jié)合多個(gè)銅離子的糖蛋白, 廣泛存在于細(xì)菌、真菌和動(dòng)植物中。目前高等植物中已有部分漆酶基因成員的研究報(bào)道, 如短柄草對(duì)其細(xì)胞壁木質(zhì)化具有重要作用[11]; 亞洲棉漆酶基因?qū)胄陆畻詈竽軌驅(qū)е罗D(zhuǎn)基因植株中總木質(zhì)素含量的增加, 表明參與了植物木質(zhì)素的合成[12]; 趙先炎等[13]研究表明, 增強(qiáng)番茄中漆酶基因的活性, 可以提高植株對(duì)酚類物質(zhì)的抗性; 田奇琳等[14]克隆了龍眼基因, 并發(fā)現(xiàn)其可能參與茉莉酸、水楊酸和脫落酸的逆境脅迫信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo)途徑, 調(diào)控龍眼多種非生物脅迫應(yīng)答過(guò)程; 黃晨等[15]發(fā)現(xiàn)龍井茶樹(shù)在茉莉酸處理、機(jī)械損傷和茶尺蠖取食后, 漆酶基因和的表達(dá)量有明顯的變化。此外, 在水稻[16]、甜高粱[17]和亞麻[18]中, 漆酶基因家族成員也被相繼鑒定出來(lái), 由此可見(jiàn), 不同植物漆酶基因在生物和非生物脅迫中具有重要功能。
已有關(guān)于漆酶基因家族的研究多集中在二倍體植物[16-18], 棉花屬于異源四倍體, 基因組龐大而復(fù)雜, 目前漆酶基因在栽培棉花中的研究報(bào)道相對(duì)較少, 課題組前期基于SSH文庫(kù)篩選到, 研究發(fā)現(xiàn)其通過(guò)防御誘導(dǎo)的木質(zhì)素的合成增強(qiáng)黃萎病抗性[19]; Hu等[20]超表達(dá)棉花基因同時(shí)提高了植株對(duì)黃萎病菌及棉鈴蟲(chóng)的抗性。Balasubramanian等[21-22]以2015年公布的陸地棉TM-1基因組為參考, 通過(guò)全基因組鑒定家族成員并明確了不同成員在陸地棉纖維發(fā)育中的表達(dá)模式。隨著測(cè)序技術(shù)的不斷提升和基因組質(zhì)量的進(jìn)一步完善, Wang等[23]通過(guò)三代基因組獲得的最新的陸地棉TM-1基因組較之前版本基因組質(zhì)量有很大提升, 為全基因組基因家族分析提供更為可靠的參考序列; 另外棉花中漆酶基因家族除目前已報(bào)道的兩個(gè)成員外[19-20], 其他成員是否參與抗黃萎病反應(yīng)尚不清楚。因此, 本研究參考最新的陸地棉TM-1基因組, 利用生物信息學(xué)方法, 提取并鑒定得基因家族成員, 并對(duì)各成員的理化性質(zhì)、基因結(jié)構(gòu)、系統(tǒng)進(jìn)化和染色體定位等方面進(jìn)行系統(tǒng)分析, 結(jié)合黃萎病脅迫處理后的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù), 明確基因家族成員的表達(dá)規(guī)律, 為深入解析棉花基因的抗病功能及分子機(jī)制奠定基礎(chǔ)。
本研究利用最新公布的陸地棉TM-1基因組序列為參考, 相關(guān)基因組和蛋白質(zhì)組數(shù)據(jù)從COTTONGEN (http://www.cottongen.org/)數(shù)據(jù)庫(kù)中下載[24]。借助基因結(jié)構(gòu)域的隱馬可夫模型(PF00394、PF07731和PF07732), 搜索棉花蛋白質(zhì)組中的LAC蛋白序列。去除冗余后, 將所有的候選基因在Pfam (http:// pfam.xfam.org/)數(shù)據(jù)庫(kù)中進(jìn)行結(jié)構(gòu)域驗(yàn)證, 對(duì)搜索出來(lái)的棉花基因家族成員進(jìn)一步確認(rèn)。利用ExPASy軟件(http://cn.expasy.org/tools)計(jì)算棉花LAC蛋白序列的長(zhǎng)度; 采用EuLoc在線軟件(http://euloc.mbc.nctu.edu.tw/)對(duì)棉花LAC蛋白進(jìn)行亞細(xì)胞定位預(yù)測(cè)。
利用MEGA 7軟件中的Clustal W功能對(duì)83個(gè)陸地棉LAC蛋白序列和17個(gè)擬南芥LAC蛋白序列進(jìn)行序列比對(duì), 然后基于序列比對(duì)的結(jié)果, 采用鄰近法構(gòu)建系統(tǒng)進(jìn)化樹(shù), 其中Bootstrap值設(shè)定為1000。
從陸地棉基因組注釋文件中提取基因家族成員的染色體位置信息, 利用MapChart軟件2.32繪制基因的染色體定位圖, GSDS在線軟件(http://gsds.cbi.pku.edu.cn/)繪制基因結(jié)構(gòu)圖, MEME (http://meme-suite.org/tools/meme)分析LAC蛋白的保守結(jié)構(gòu)域。
本課題組前期以抗病陸地棉品種農(nóng)大601為試驗(yàn)材料, 獲得在處理組(黃萎病菌脅迫處理后) 2、6、12、24和48 h和對(duì)照組(各對(duì)應(yīng)時(shí)間點(diǎn)接種水)的根部轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)。將陸地棉基因家族各成員的表達(dá)量數(shù)據(jù)進(jìn)行l(wèi)og2(1+RPKM)處理后, 利用MEV軟件, 繪制基因家族各成員的表達(dá)熱圖。
根據(jù)陸地棉家族基因的cDNA信息, 采用Primer 5.0軟件在基因序列5′端、ORF或3′端的特異區(qū)域設(shè)計(jì)引物(表1), 擴(kuò)增片段約為200 bp。分別以陸地棉農(nóng)大601根、莖、葉不同組織和接菌后6、12、24、36和48 h的根組織cDNA為模板, 利用qRT-PCR方法檢測(cè)候選基因的表達(dá)情況, 設(shè)置每個(gè)樣本3次重復(fù), 內(nèi)參基因?yàn)閇25]。qRT-PCR體系為10.0 μL, 其中cDNA 1 μL、2×SYBR預(yù)混液5.0 μL、基因特異正向引物(10 μmol L–1) 0.5 μL、反向引物(10 μmol L–1) 0.5 μL、RNase-Free H2O 2.8 μL、ROX校正液0.2 μL。qRT-PCR在ABI7500儀器反應(yīng), 反應(yīng)程序?yàn)?4℃預(yù)變性30 s; 95℃變性5 s, 57℃退火5 s, 72℃延伸34 s, 40個(gè)循環(huán)。采用2–ΔΔCt方法計(jì)算基因的相對(duì)表達(dá)量[26]。
通過(guò)Hmmsearch搜索和數(shù)據(jù)庫(kù)驗(yàn)證, 在陸地棉基因組中共鑒定出83個(gè)LAC基因家族成員, 根據(jù)其在染色體上的位置信息, 命名為(表1), 其中和沒(méi)有定位到染色體上。除A亞組的第7染色體和D亞組的第7染色外, 其他染色體都不均勻地分布著LAC基因(圖1)。所有LAC基因所編碼蛋白的氨基酸數(shù)量在420~583個(gè)之間, 差異較小, 且所有基因的亞細(xì)胞定位結(jié)果都在胞外, 屬于分泌蛋白。
表1 陸地棉LAC基因家族信息
(續(xù)表1)
(續(xù)表1)
圖1 陸地棉LAC基因家族成員的染色體定位分析
用83個(gè)陸地棉GhirLACs蛋白序列和17個(gè)擬南芥AtLACs蛋白序列構(gòu)建系統(tǒng)發(fā)育樹(shù), 并根據(jù)擬南芥漆酶基因的功能[27], 將棉花漆酶分為7組(圖2)。第1組包括23個(gè)陸地棉漆酶成員和2個(gè)擬南芥漆酶成員(和), 第2組包括22個(gè)陸地棉漆酶成員和4個(gè)擬南芥漆酶成員(、、和), 擬南芥、和在調(diào)控木質(zhì)素單體和細(xì)胞壁木質(zhì)化方面具有重要作用, 屬于參與木質(zhì)素生物合成的單木質(zhì)素漆酶, 基于該進(jìn)化樹(shù)結(jié)果, 初步認(rèn)為棉花第1組與第2組漆酶成員具有類似的功能[27-29]。第3組包括13個(gè)陸地棉漆酶成員和4個(gè)擬南芥漆酶基因(、、和), 其中、和對(duì)ABA信號(hào)有響應(yīng)[29];第4組包括12個(gè)陸地棉漆酶成員和2個(gè)擬南芥漆酶基因(和), 可能與干旱、低溫和鹽脅迫有關(guān)[29]; 第5組包括9個(gè)陸地棉漆酶成員和3個(gè)擬南芥漆酶成員(、和); 第6組只有1個(gè)擬南芥漆酶成員第7組包括4個(gè)陸地棉漆酶成員和1個(gè)擬南芥漆酶成員(), 其在生物脅迫下表達(dá)會(huì)下調(diào)[30]。
圖2 陸地棉和擬南芥LACs基因家族進(jìn)化樹(shù)分析
對(duì)陸地棉LAC基因家族83個(gè)成員的基因結(jié)構(gòu)和保守域分析結(jié)果如圖3所示, 所有LAC基因的外顯子個(gè)數(shù)在4~7個(gè)之間變化, 且基本都含有相同的保守結(jié)構(gòu)域(Motif 1、Motif 2、Motif 3、Motif4、Motif5、Motif 9和Motif 10; 圖4)。經(jīng)Pfam數(shù)據(jù)庫(kù)驗(yàn)證, Motif 1和Motif 9完全對(duì)應(yīng)于Cu_oxidase_3結(jié)構(gòu)域; Motif 3與Cu_oxidase結(jié)構(gòu)域相對(duì)應(yīng); Motif2和Motif4則構(gòu)成了Cu_oxidase_2結(jié)構(gòu)域。某些保守基序只存在于某一亞組中, 如Motif 8只存在于第7亞組中, motif是蛋白質(zhì)分子中具有特定空間構(gòu)象和特定功能的結(jié)構(gòu)成分, 是結(jié)構(gòu)域的亞單位, 與特定的功能聯(lián)系在一起, 推測(cè)具有不同motif的漆酶成員在進(jìn)化和功能上可能存在差異。
基于本課題組前期已有的抗病農(nóng)大601黃萎病菌脅迫下的根轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)[31], 將不同處理時(shí)間點(diǎn)下的RPKM值進(jìn)行l(wèi)og2(1+RPKM) 處理后, 構(gòu)建LAC基因家族成員的表達(dá)熱圖。結(jié)果顯示, 在83個(gè)陸地棉LAC基因中, 有80個(gè)基因的表達(dá)量在黃萎病脅迫下都發(fā)生了顯著的變化。80個(gè)差異基因在根中的表達(dá)模式分為3種類型, 第1類基因呈現(xiàn)出病原菌誘導(dǎo)后表達(dá)上調(diào), 包括、等24個(gè)成員。根據(jù)該類基因?qū)S萎病菌的響應(yīng)速度和程度, 進(jìn)一步劃分為3個(gè)亞組, 即快速上調(diào)表達(dá)基因(I), 包括和, 這些成員在接菌后2 h基因表達(dá)達(dá)到高峰; 較快上調(diào)表達(dá)基因(II),包括77、等9個(gè)成員, 該亞組基因在接菌后6 h達(dá)到表達(dá)高峰; 以及第III亞組, 包括01等10個(gè)成員, 受黃萎病菌誘導(dǎo)后這些基因在12~24 h之間達(dá)到表達(dá)高峰。第2類基因受病原菌脅迫后呈現(xiàn)不同程度下調(diào)表達(dá), 包括、、、等56個(gè)成員, 接菌后這些基因的表達(dá)明顯受到抑制, 暗示這些基因在棉花抗黃萎病反應(yīng)中起負(fù)調(diào)控作用; 第3類基因不響應(yīng)黃萎病菌處理, 推測(cè)其不參與棉花抗黃萎病過(guò)程, 包括、和(圖5)。
圖3 陸地棉LAC家族成員基因結(jié)構(gòu)分析
圖4 陸地棉LAC基因家族保守基序
結(jié)合抗病轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)、全長(zhǎng)cDNA文庫(kù)篩選以及功能尚未報(bào)道的前提, 本研究進(jìn)一步挑選出3個(gè)分別與擬南芥、和直系同源的新基因, 分別命名為()、()和()。熒光定量PCR結(jié)果表明,在接黃萎病后6 h表達(dá)量顯著提高;受黃萎病菌誘導(dǎo)明顯, 接菌后6 h快速響應(yīng), 24 h達(dá)到表達(dá)高峰;的表達(dá)在接菌后各時(shí)間點(diǎn)均顯著上調(diào)。這3個(gè)基因的熒光定量結(jié)果與轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的趨勢(shì)相吻合, 該結(jié)果在進(jìn)一步明確三個(gè)基因的表達(dá)規(guī)律的同時(shí)也反映了轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)的可靠性(圖6)。組織特異性表達(dá)結(jié)果顯示3個(gè)基因在棉花根、莖、葉中均有表達(dá);在莖中表達(dá)量最高,和在根中表達(dá)量最高(圖6)。
基因組質(zhì)量的完整性是全基因組水平分析基因家族的基礎(chǔ)。隨著基因組測(cè)序技術(shù)的不斷深入, 棉花基因組從二倍體棉到四倍體陸地棉不斷更新[22,32-33]。基于二代基因組測(cè)序組裝獲得的四倍體陸地棉TM-1的基因組草圖為開(kāi)展全基因組水平分析提供了可能, 但由于棉花屬于異源多倍體, 基因組龐大而復(fù)雜, 高質(zhì)量版本的基因組成為提升基因家族分析準(zhǔn)確性的必要條件。最新的研究釋放了基于超高深度測(cè)序、10×Genomics、BioNano光學(xué)圖譜及Hi-C數(shù)據(jù)等多技術(shù)聯(lián)合組裝的陸地棉TM-1基因組[23], 較以前發(fā)表的基因組草圖在連續(xù)性和完整性上提高了10~20倍, 并對(duì)具有高度重復(fù)的區(qū)域(如著絲粒)進(jìn)行了成功組裝。此外, 新版本基因組預(yù)測(cè)出72,761。個(gè)高度可信的蛋白編碼基因, 較舊版本預(yù)測(cè)的70,478個(gè)蛋白編碼基因多出了2283個(gè)新基因。因此, 利用更新的陸地棉參考基因組分析復(fù)雜的基因家族, 將為深入研究該基因家族的功能提供更為準(zhǔn)確的信息
圖5 陸地棉LAC基因在黃萎病脅迫下的表達(dá)熱圖
圖6 黃萎病菌脅迫下GhLAC4、GhLAC11和GhLAC12基因的表達(dá)
本研究通過(guò)生物信息學(xué)方法從高質(zhì)量的陸地棉TM-1全基因組中鑒定出83個(gè)漆酶基因成員, 經(jīng)過(guò)分析發(fā)現(xiàn), 所有基因的外顯子個(gè)數(shù)在4~7之間, 所編碼蛋白的氨基酸數(shù)量在500個(gè)左右, 且基本含有相同的保守基序, 表明基因家族不同成員之間具有較強(qiáng)的保守性。已有研究報(bào)道擬南芥、和屬于參與木質(zhì)素生物合成的單木質(zhì)素漆酶, 在木質(zhì)素合成方面具有重要功能, 基于本研究棉花漆酶與擬南芥直系同源基因進(jìn)化樹(shù)分析, 初步推測(cè)分別與擬南芥、和基因聚為一組的棉花漆酶成員可能具有類似的功能[27-29]。本研究結(jié)果與2016年報(bào)道的一篇關(guān)于棉花漆酶基因家族的分析結(jié)果存在較大差異。本研究基于高質(zhì)量的TM-1基因組鑒定到83個(gè)LAC成員, 除At07和Dt07染色體外, 其他染色體都不均勻地分布著LAC基因, 其中At05和Dt05上LAC基因分布最多, 分別為8個(gè); Balasubramanian等[21]基于舊版本的TM-1基因組草圖鑒定到84個(gè)LAC成員, 其結(jié)果顯示在3條染色體At07、Dt07、At08中均沒(méi)有LAC的分布, LAC成員分布最多的染色體位于At05, 分布著11個(gè)LAC基因。這些信息的不匹配性為我們深入研究LAC基因家族帶來(lái)很大困擾甚至是誤導(dǎo), 因此本研究以目前最高質(zhì)量的基因組版本系統(tǒng)分析LAC基因家族, 為深入研究LAC重要成員的功能奠定基礎(chǔ)。
細(xì)胞壁是抵御病原菌入侵的天然屏障, 木質(zhì)素是細(xì)胞壁的重要組成部分, 在植物抗病防御反應(yīng)中發(fā)揮重要功能。漆酶位于木質(zhì)素合成途徑的最后一步, 負(fù)責(zé)將G、S、H不同木質(zhì)素單體交聯(lián)聚合形成多聚物-木質(zhì)素。自然條件下, 細(xì)胞壁作為植物固有的基本組成部分保證植株生長(zhǎng)發(fā)育, 在此過(guò)程中漆酶參與的木質(zhì)素合成被定義為specific-lignification, 如擬南芥、和[27-29]; Chezem等[34]研究表明擬南芥可以激活防御誘導(dǎo)的木質(zhì)素的合成, 參與該過(guò)程的木質(zhì)素合成基因受丁香加單包桿菌的誘導(dǎo)表達(dá), 課題組前期的研究也發(fā)現(xiàn)()對(duì)黃萎病菌迅速響應(yīng), 其表達(dá)趨勢(shì)與本研究在轉(zhuǎn)錄組中的表達(dá)趨勢(shì)類似, 超表達(dá)基因通過(guò)增加植株防御誘導(dǎo)的木質(zhì)素的合成而提高抗病性[19]。Hu等[20]研究了棉花基因, 發(fā)現(xiàn)超表達(dá)的植株木質(zhì)素增加, 從而提高了對(duì)黃萎病和棉鈴蟲(chóng)的抗性; 抑制基因植株苯丙烷代謝流發(fā)生改變, 木質(zhì)素合成降低而黃酮代謝增強(qiáng), 同時(shí)還激活了植物激素茉莉酸的合成, 從而富集了更多對(duì)病蟲(chóng)有害的次生代謝物質(zhì)。自然條件下, 植物生長(zhǎng)面臨生物和非生物脅迫等復(fù)雜的外界環(huán)境, 植物通過(guò)能量與物質(zhì)的重新分配來(lái)調(diào)控生長(zhǎng)與防御的平衡[35]。由此推測(cè), 病菌脅迫條件下, 植物暫?;驎壕徤L(zhǎng)發(fā)育進(jìn)度, 能量物質(zhì)向防御反應(yīng)方向傾斜。從本研究的家族的表達(dá)結(jié)果來(lái)看, 其中屬于第二類的各成員受病菌脅迫后, 基因的表達(dá)量或快速、或大幅度下調(diào), 推測(cè)這些基因在調(diào)控生長(zhǎng)與防御的平衡方面發(fā)揮重要作用。此外, 從第一類基因的表達(dá)來(lái)看, 該類基因的大部分成員在自然生長(zhǎng)狀態(tài)下處于低或較低表達(dá)水平, 受病菌誘導(dǎo)后這些基因在某個(gè)時(shí)間點(diǎn)達(dá)到表達(dá)峰值, 隨后表達(dá)水平逐漸回落, 表明這些基因?qū)儆诜烙T導(dǎo)的一類抗病漆酶基因, 對(duì)病原菌迅速響應(yīng), 推測(cè)植株一旦防御體系建立, 為了協(xié)調(diào)防御和植株生長(zhǎng)發(fā)育, 該類基因的表達(dá)隨后降低。綜上, 本研究基于表達(dá), 認(rèn)為80個(gè)響應(yīng)黃萎病菌的成員在棉花抗黃萎病反應(yīng)中具有功能, 但第一類基因可能側(cè)重于增加木質(zhì)素的合成提高抗病性; 第二類基因可能側(cè)重于改變苯丙烷代謝流來(lái)提高抗病性; 二者也可能存在部分交叉。該研究結(jié)果為進(jìn)一步研究的功能提供一定指導(dǎo)。
本研究鑒定了陸地棉基因組中的Laccase基因家族, 83個(gè)家族成員分布在24條染色體上, 所有GhirLAC蛋白均定位在胞外, GhirLAC家族成員可分為7個(gè)亞組。黃萎病菌脅迫下,家族各成員的表達(dá)分為3種模式, 其中第1類和第2類基因在棉花抗黃萎病反應(yīng)中發(fā)揮重要功能。()、()和() 3個(gè)候選基因均受黃萎病菌誘導(dǎo)表達(dá)。本研究為以后深入解析棉花基因的抗病功能及分子機(jī)制奠定基礎(chǔ)。
[1] Gao X Q, Wheeler T, Li Z H, Kenerley C M, He P, Shan L B. Silencingandcompromises cotton resistance to Verticillium wilt., 2011, 66: 293–305.
[2] Bolek Y, Elzik K M, Pepper A E,Bell A A, Magill C W, Thaxton P M, Reddy O U K. Mapping of Verticillium wilt resistance genes in cotton., 2005, 168: 1581–1590.
[3] Zhang Y, Wang X F, Rong W, Yang J, Li Z K, Wu L Q, Zhang G Y, Ma Z Y. Histochemical analyses reveal that stronger intrinsic defenses inthan inare associated with resistance to., 2017, 30: 984–996.
[4] Cai Y F, He X H, Mo J C, Sun Q, Yang J P, Liu J G. Molecular research and genetic engineering of resistance toin cotton: a review., 2009, 8: 7363–7372.
[5] 張?zhí)煺? 周兆華, 閔留芳, 郭旺珍, 潘家駒, 何金龍, 縱瑞收, 湯杰珍, 郭小平, 蒯本科, 王謐, 朱協(xié)飛, 陳兆夏, 唐燦明, 劉康, 孫敬, 惠書(shū)勤, 黃在進(jìn). 棉花對(duì)黃萎病的抗性遺傳模式及抗(耐)病品種的選育技術(shù). 作物學(xué)報(bào), 2000, 26: 673–680. Zhang T Z, Zhou Z H, Min L F, Guo W Z, Pan J J, He J L, Zong R S, Tang J Z, Guo X P, Kuai B K, Wang M, Zhu X F, Chen Z X, Tang C M, Liu K, Sun J, Hui S Q, Huang Z J. Inheritance of cotton resistance toand strategies to develop resistant or tolerant cultivars.,2000, 26: 673–680 (in Chinese with English abstract).
[6] Malinovsky F G, Fangel J U, Willats W G T. The role of the cell wall in plant immunity., 2014, 5: 178.
[7] Bowers J H, Nameth S T, Riedel R M,Rowe R C. Infection and colonization of potato roots byas affected byand., 1996, 86: 614–621.
[8] Fradin E F, Thomma B P H J. Physiology and molecular aspects of Verticillium wilt caused byand., 2006, 7: 71–86.
[9] 趙蕾, 張?zhí)煊? 植物病原菌產(chǎn)生的降解酶及其作用. 微生物學(xué)通報(bào), 2002, 29: 89–93. Zhao L, Zhang T Y. Production and roles of the degrading enzymes prodused by phytopathogen., 2002, 29: 89–93 (in Chinese with English abstract).
[10] Smit F, Dubery I A. Cell wall reinforcement in cotton hypocotyls in response to aelicitor., 1997, 44: 811–815.
[11] Wang Y, Coussa O B, Lebris P, Antelme S, Soulhat C, Gineau E, Dalmais M, Bendahmane A, Morin H, Mouille G, Legée F, Cézard L, Lapierre C, Sibout R. LACCASE 5 is required for lignification of theculm., 2017, 168: 192–204.
[12] 王驥, 朱木蘭, 衛(wèi)志明. 棉花漆酶基因在轉(zhuǎn)基因新疆楊中的表達(dá)及其對(duì)木質(zhì)素合成的影響. 分子細(xì)胞生物學(xué)報(bào), 2008, (1): 11–18.W J, Zhu M L, Wei Z M. Cotton Laccase gene overexpression in transgenicvar.and its effects on the lignin biosynthesis in transgenic plants.2008, (1): 11–18 (in Chinese with English abstract).
[13] 趙先炎, 龐明利, 趙強(qiáng), 任怡然, 郝玉金, 由春香. 番茄漆酶基因的克隆與表達(dá)分析. 園藝學(xué)報(bào), 2015, 42: 1285–1298.Zhao X Y, Pang M L, Zhao Q, Ren Y R, Hao Y J, You C X. Cloning and expression analysis of tomatogene., 2015, 42: 1285–1298 (in Chinese with English abstract).
[14] 田奇琳, 林玉玲, 鄭慶游, 蘇榮峰, 賴鐘雄. 龍眼的克隆及其表達(dá)調(diào)控分析. 果樹(shù)學(xué)報(bào), 2016, 33: 1185–1193.Tian Q L, Lin Y L, Zheng Q Y, Su R F, Lai Z X. Cloning and expression analyses ofin., 2016, 33: 1185–1193 (in Chinese with English abstract).
[15] 黃晨, 陳帥, 程小芳, 張新, 黎星輝, 孫曉玲. 茶樹(shù)漆酶基因和的克隆與表達(dá)分析. 植物保護(hù)學(xué)報(bào), 2018, 45: 1069–1077.Huang C, Chen S, Cheng X F, Zhang X, Li X H, Sun X L. Cloning and expression analysis of the laccase genesandfrom the tea plant.2018, 45: 1069–1077 (in Chinese with English abstract).
[16] Liu Q Q, Luo L, Wang X X,Shen Z G, Zheng L QComprehensive analysis of rice laccasegene () family and ectopic expression ofenhances tolerance to copperstress in Arabidopsis., 2017, 18: 1–16.
[17] Wang J H, Feng J J, Jia W T, Fan P X, Bao H X G D L, Li S Z, Li Y X. Genome-wide dentification of sorghum bicolor laccases reveals potential targets for lignin modification., 2017, 8: 714.
[18] Roy J L, Blervacq A S, Créach A, Huss B, Hawkins S, Neutelings G. Spatial regulation of monolignol biosynthesis and laccase genes control developmental and stress-related lignin in flax., 2017, 17: 124.
[19] Zhang Y, Wu L Z, Wang X F, Chen B, Zhao J, Cui J, Li Z K, Yang J, Wu L Q, Wu J H, Zhang G Y, Ma Z Y. The cotton laccase geneenhancedresistance via increasing defense-induced lignification and lignin components in the cell wall of plants., 2019, 20: 309–322.
[20] Hu Q, Min L, Yang X Y, Jin S X, Zhang L, Li Y Y, Ma Y Z, Qi X W, Li D Q, Liu H B, Lindsey K, Zhu L F, Zhang X L. Laccasemodulates broad-spectrum biotic stress tolerance via DAMP-triggered immunity., 2017, 176: 1–34.
[21] Balasubramanian V K, Rai K M, Thu S W, Hii M M, Mendu V. Genome-wide identification of multifunctional laccase gene family in cotton (spp.); expression and biochemical analysis during fiber development., 2016, 29: 6.
[22] Li F G, Fan G Y, Lu C R, Xiao G H, Zou C S, Kohel R J, Ma Z Y, Shang H H, Ma X F, Wu J Y, Liang X M, Huang G, Percy R G, Liu K, Yang W H, Chen W B, Du X M, Shi C C, Yuan Y L, Ye W W, Liu X, Zhang X Y, Liu W Q, Wei H L, Wei S J, Huang G D, Zhang X L, Zhu S J, Zhang H, Sun F M, Wang X F, Liang J, Wang J H, He Q, Huang L H, Wang J, Cui J J, Song G L, Wang K B, Xu X, Yu J Z, Zhu Y X, Yu S X. Genome sequence of cultivated Upland cotton (TM-1) provides insights into genome evolution., 2015, 33: 524–530.
[23] Wang M J, Tu L L, Yuan D J, Zhu D, Shen C, Li J Y, Liu F Y, Pei L L, Wang P C, Zhao G N, Ye Z X, Huang H, Yan F L, Ma Y Z, Zhang L, Liu M, You J Q, Yang Y C, Liu Z P, Huang F, Li B Q, Qiu P, Zhang Q H, Zhu L F, Jin S X, Yang X Y, Min L, Li G L, Chen L L, Zheng H K, Lindsey K, Lin Z X, Udall J A, Zhang X L. Reference genome sequences of two cultivated allotetraploid cottons,and., 2019, 51: 224–229.
[24] Yu J, Jung S, Cheng C H, Ficklin1 S P, Lee T, Zheng P, Jones D, Percy R G, Main D. CottonGen: a genomics, genetics and breeding database for cotton research., 2014, 42: 1229–1236.
[25] Zhang Y, Wang X F, Rong W, Yang J, Ma Z Y. Island cotton enhanced disease susceptibility 1 gene encoding a lipase-like protein plays a crucial role in response toby regulating the SA level and H2O2accumulation., 2016, 7: 1830.
[26] Livak K J, Schmittgen T D. Analysis of relative gene expression data using real-time quantitative PCR and the 2(-Delta Delta C(T)) method.,2001, 25: 402–408.
[27] Berthet S, Demont-Caulet N, Pollet B, Bidzinski P, Cézard L, Bris P L, Borrega N, Hervé J, Blondet E, Balzergue S, Lapierre C, Jouanin L. Disruption ofandresults in tissue-specific alterations to lignification ofstems., 2011, 23: 1124–1137.
[28] Zhao Q, Nakashima J, Chen F, Yin Y B, Fu C X, Yun J F, Shao H, Wang X Q, Wang Z Y, Dixon R A.is necessary and nonredundant withfor lignin polymerization during vascular development in., 2013, 25: 3976–3987.
[29] Turlapati P V, Kim K W, Davin L B, Lewis N G. The laccase multigene family in: towards addressing the mystery of their gene function(s)., 2011, 233: 439–470.
[30] Szakasits D, Heinen P, Wieczorek K, Hofmann J, Wagner F, Kreil D P, Sykacek P, Grundler F M W, Bohlmann H. The transcriptome of syncytia induced by the cyst nematodei in Arabidopsis roots., 2010, 57: 771–784.
[31] Yang J, Zhang Y, Wang X F, Wang W Q, Li Z K, Wu J H, Wang G N, Wu L Q, Zhang G Y, Ma Z Y. HyPRP1 performs a role in negatively regulating cotton resistance tovia the thickening of cell walls and ROS accumulation., 2018, 18: 339.
[32] Li F G, Fan G Y, Wang K B, Sun F M, Yuan Y L, Song G L, Li Q, Ma Z Y, Lu C R, Zou C S, Chen W B , Liang X M , Shang H H , Liu W Q, Shi C C , Xiao G H, Gou C Y , Ye W W, Xu X, Zhang X Y, Wei H L, Li Z F, Zhang G Y, Wang G Y, Liu K, Kohel R J, Percy R G, Yu J Z, Zhu Y X, Wang J, Yu S X. Genome sequence of the cultivated cotton., 2014, 46: 567–572.
[33] Zhang T Z, Hu Y, Jiang W K, Fang L, Guan X Y, Chen J D, Zhang J B, Saski C A, Scheffler B E, Stelly D M, Hulse-Kemp A M, Wan Q, Liu B L, Liu C X, Wang S, Pan M Q, Wang Y K, Wang D, Ye W X, Chang L J, Zhang W P, Song Q X, Kirkbride R C, Chen X Y, Dennis E, Llewellyn D J, Peterson D G, Thaxton P, Jones D C, Wang Q, Xu X Y, Zhang H, Wu H T, Zhou L, Mei G F, Chen S Q, Tian Y, Xiang D, Li X H, Ding J, Zuo Q Y, Tao L N, Liu Y C, Li J, Lin Y, Hui Y Y, Cao Z S, Cai C P, Zhu X F, Jiang Z, Zhou B L, Guo W Z, Li R Q, Chen Z J. Sequencing of allotetraploid cotton (L. accTM-1) provides a resource for fiber improvement., 2015, 33: 531–537.
[34] Chezem W R, Memon A, Li F S, Weng J K, Clay N. SG2-Type R2R3-MYB Transcription factor MYB15 controls defense- induced lignification and basal immunity in Arabidopsis., 2017, 29: 1907–1926.
[35] Ye J, Zhong T, Zhang D, Ma C, Wang L, Yao L, Zhang Q, Zhu M, Xu M. The auxin-regulated protein ZmAuxRP1 coordinates the balance between root growth and stalk rot disease resistance in maize., 2019, 12: 360–373.
Genome-wide identification of Laccase gene family in updateL. genome and expression analysis understress
ZHAO Jing**, LI Xu-Tong**, LIANG Xue-Zhong, WANG Zhi-Cheng, CUI Jing, CHEN Bin, WU Li-Qiang, WANG Xing-Fen, ZHANG Gui-Yin, MA Zhi-Ying, and ZHANG Yan*
Hebei Agricultural University / North China Key Laboratory for Crop Germplasm Resources of Education Ministry / Co-Innovation Center for Cotton Industry of Hebei Province, Baoding 071001, Hebei, China
stress causes a disease in vascular bundle that decreases cotton yield and fiber quality. During cotton defense against pathogen infection, disease resistance genes play important roles. Laccase is a multifunctional oxidase that plays an important role in lignin synthesis and plant resistance. High-quality cotton reference genome is necessary to improve the accuracy of gene family analysis. In this study, the laccase () family genes in the update genome ofL. cv. TM-1 were identified by bioinformatics, and its physical and chemical properties, gene structure, chromosome location and expression pattern understress were analyzed. There were 83 members offamily in the genome ofL., which distributed on 24 chromosomes. All GhirLAC proteins predicted were located in extracellular and had the same conserved motif. Phylogenetic analysis showed that the members of thegenes family were divided into seven subgroups. According to the analysis results of cotton transcription understress, it was clear that the expression pattern ofgenes could be divided into three groups, of which, group 1 and group 2genes displayed down-regulation and up-regulation expression patterns, respectively, suggesting that these genes should play important roles in cottonresistance. Furthermore, we identified three candidate genes expression patterns induced by, including(),(), and(), the qPCR results were consistent with the expression trend based on transcriptome data. This study lays a foundation for further analysis of disease resistance function and molecular mechanism ofgene in cotton.
L.; laccase; gene family; Verticillium wilt; gene expression
本研究由河北省優(yōu)秀青年科學(xué)基金項(xiàng)目(C2017204011), 河北省高等學(xué)??茖W(xué)技術(shù)研究重點(diǎn)項(xiàng)目(ZD2014019)和河北省青年拔尖人才支持計(jì)劃資助。
This study was supported by the Natural Science Foundation of Hebei Province (C2017204011), Key Scientific and Technological Research Projects of University in Hebei Province (ZD2014019), and Talents Support Program of Hebei Province.
張艷, E-mail: zhangyan7235@126.com
**同等貢獻(xiàn)(Contributed equally to this work)
趙晶, E-mail: 824802835@qq.com
2019-04-02;
2019-06-22;
2019-07-13.
URL:http://kns.cnki.net/kcms/detail/11.1809.S.20190711.1619.006.html
10.3724/SP.J.1006.2019.94053