身痛逐瘀湯對人髓核細(xì)胞模型PI3K/Akt信號通路Bad、Caspase-9、GSK-3β表達(dá)的影響

陳江　劉志超　張帆　孫旗　袁巧妹　祝永剛　輝燈　郭菲宇　柳根哲

摘要：目的 ?觀察身痛逐瘀湯對人髓核細(xì)胞模型PI3K/Akt信號通路凋亡蛋白Bad、Caspase-9、GSK-3β表達(dá)的影響，探討其可能的作用機(jī)制。方法 ?將人髓核細(xì)胞分為6組，分離培養(yǎng)、鑒定及傳代后，取第3代細(xì)胞進(jìn)行實驗。人髓核細(xì)胞加入身痛逐瘀湯藥物血清，置于醫(yī)用恒溫靜水壓壓力罐中干預(yù)，分別于0.3、1、3 MPa壓力下作用2、4、6 h，應(yīng)用倒置相差顯微鏡觀察人髓核細(xì)胞加壓前后形態(tài)及生長狀況，應(yīng)用透射電子顯微鏡觀察人髓核細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)，流式細(xì)胞術(shù)檢測人髓核細(xì)胞凋亡，采用凝膠電泳遷移法檢驗人髓核細(xì)胞PI3K/Akt信號通路標(biāo)志蛋白p-Akt的表達(dá)，Western blot檢測人髓核細(xì)胞Bad、Caspase-9、GSK-3β蛋白的表達(dá)。結(jié)果 ?同一壓力下及作用時間，中藥組人髓核細(xì)胞形態(tài)、超微結(jié)構(gòu)和生長狀況較壓力組明顯變好，其中0.3、1 MPa壓力差異顯著（P<0.05）;與中藥組比較，壓力組人髓核細(xì)胞凋亡率顯著增加（P<0.05）;凝膠電泳遷移顯示，人髓核細(xì)胞在0.3、1、3 MPa壓力下中藥組p-Akt表達(dá)明顯高于壓力組（P<0.05）;Western blot結(jié)果顯示，中藥組人髓核細(xì)胞Bad、Caspase-9、GSK-3β蛋白表達(dá)較壓力組明顯降低（P<0.05）。結(jié)論 ?身痛逐瘀湯能有效延緩髓核細(xì)胞退變，增加細(xì)胞活性及減少細(xì)胞凋亡，其機(jī)制可能與激活PI3K/Akt通路抑制Bad、Caspase-9、GSK-3β蛋白的表達(dá)相關(guān)。

關(guān)鍵詞：身痛逐瘀湯;PI3K/Akt通路;靜水壓;髓核細(xì)胞;細(xì)胞凋亡

中圖分類號：R285.5 ???文獻(xiàn)標(biāo)識碼：A ???文章編號：1005-5304（2019）09-0048-07

Effects of Shentong Zhuyu?Decoction on PI3K/Akt?Pathway?Bad， Caspase-9， GSK-3β?Expression?of Human Nucleus Pulposus Cells

CHEN Jiang¹， LIU Zhichao²， ZHANG Fan¹， SUN Qi¹， YUAN Qiaomei¹， ZHU?Yonggang²，XIAO Huideng²， GUO Feiyu²， LIU Genzhe²

1. Dongzhimen?Hospital， Beijing University of Chinese Medicine， Beijing 100700， China; 2.?Beijing?Traditional Chinese Medicine Hospital， Capital Medical University， Beijing 100010， China

Abstract： Objective?To investigate the effects of Shentong Zhuyu Decoction on the exprossion of Bad， Caspase-9， and GSK-3β in nucleus pulposus cells through PI3K/Akt?signal pathway and its possible mechanism. Methods?Human nucleus pulposus cells were divided into 10 groups. After isolation， culture， identification and passage of six?groups of nucleus pulposus cells， the third-generation cells （P3） were taken for experiment. The human nucleus pulposus cells were added into the serum containing Shentong Zhuyu?Decoction and intervened in a medical hydrostatic pressure vessel with constant temperature. After 2， 4 and 6 hours of action under 0.3， 1，?3 MPa pressure， inverted phase contrast microscopy was used to observe the morphological changes and growth status of nucleus pulposus cells before and after compression. Transmission electron microscope was used to observe the ultrastructural changes and differences of nucleus pulposus cells in each group. Annexin V-FITC/Propidium Iodide flow cytometry was used to detect apoptotic status of nucleus pulposus cells in each group. Electrophoreticmobility shift assay was used to test the activity of p-Akt in PI3K/Akt pathway of the nucleus pulposus cells of each group， and the expressions of Bad， Caspase-9 and GSK-3β in nucleus pulposus cells were detected by Western blot. Results?The morphology， ultrastructure and growth of nucleus pulposus cells in TCM group were better than those in the pressure group under the same pressure and time， and the difference was significant under 0.3 MPa and 1 MPa （P<0.05）. Compared with TCM group， the apoptotic rate of nucleus pulposus cells in the pressure group increased significantly （P<0.05）. Electrophoretic mobility shift assay?showed thhat the expression of p-Akt?in TCM group was significantly higher than that in the pressure group under 0.3， 1，?3 MPa pressure （P<0.05）. Western blot showed that the expressions of Bad， Caspase-9 and GSK-3β in TCM group decreased as a whole， which was significantly different from that in the pressure group （P<0.05）. Conclusion?Shentong Zhuyu?Decoction can effectively delay the degeneration of nucleus pulposus cells， increase cell activity and reduce cell apoptosis. Its mechanism may be related to activating PI3K/Akt signal pathway to inhibit the expressions of Bad， Caspase-9 and GSK-3β.

Keywords：Shentong ZhuyuDecoction; PI3K/Akt pathway; hydrostatic pressure; nucleus pulposus cells; apoptosis

椎間盤退行性疾病（intervertebral disc degeneration?disease，IVDD）是最多見的骨科疾病，據(jù)報道70%～90%人均患過腰痛，年發(fā)病率為10%～30%，且呈逐年上升趨勢^[1]。流行病學(xué)調(diào)查顯示，IVDD發(fā)病人群越來越趨于年輕化，追蹤病史分析病因，發(fā)現(xiàn)久坐、久站等原因已經(jīng)逐漸成為主要的致病因素，提示人體脊柱長期受到的靜壓負(fù)荷是引發(fā)IVDD的重要因素^[2]。椎間盤（intervertebral disc，IVD）在人體運(yùn)動時受到壓應(yīng)力在髓核中形成靜水壓，然后擴(kuò)散至纖維環(huán)，由壓應(yīng)力轉(zhuǎn)變成張應(yīng)力，因此IVDD與人髓核細(xì)胞活力和凋亡密切相關(guān)。臨床上身痛逐瘀湯治療IVDD療效甚佳，因此，本實驗在體外靜水壓加載系統(tǒng)中，以人椎間盤髓核細(xì)胞為研究對象，以常壓環(huán)境為對照，根據(jù)前期研究結(jié)果設(shè)計3種水平的細(xì)胞靜水壓加載負(fù)荷（0.3、1、3 MPa），采用身痛逐瘀湯藥物血清對髓核細(xì)胞培養(yǎng)狀態(tài)進(jìn)行干預(yù)，檢測PI3K/Akt信號通路及其凋亡蛋白的表達(dá)，揭示身痛逐瘀湯治療IVDD的療效機(jī)制及作用靶點。

1 ?實驗材料

1.1 ?動物

5月齡健康新西蘭兔10只，體質(zhì)量2～4 kg，雌雄不限，中國中醫(yī)科學(xué)院實驗動物中心提供。飼養(yǎng)于中國中醫(yī)科學(xué)院基礎(chǔ)理論研究所動物房，溫度24～26 ℃，相對濕度45%～65%，自由攝食飲水。

1.2 ?藥物及制備

身痛逐瘀湯（秦艽3 g，川芎6 g，桃仁9 g，紅花9 g，甘草6 g，羌活3 g，沒藥6 g，當(dāng)歸9 g，香附3 g，牛膝9 g，川烏3 g，地龍6 g），飲片由北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院中藥房提供。藥物血清制備：將飲片裝入容量1 L的圓底燒瓶中，加20倍水，浸泡4 h，放入套式恒溫器煎煮，煮沸1.5 h后，藥液紗布過濾，4000×g離心10 min，將上層藥液置于濾紙過濾，完畢后倒入500 mL圓底燒瓶中，裝入旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀進(jìn)行蒸發(fā)（73 ℃，轉(zhuǎn)速4×g），最后濃縮至20～30 mL，將浸膏倒入培養(yǎng)皿中，放入真空干燥箱（50 ℃）真空干燥2 d，收取固體浸膏，稱重，最終藥液濃度為0.25 g/mL（7.81 g原藥材/mL）。

1.3 ?主要試劑與儀器

DMEM/F12培養(yǎng)基（GIBCO），胰酶/EDTA（美國Sciencell公司），BCA蛋白濃度測定試劑盒（北京索萊寶公司），丙烯酰胺（VETEC），彩虹180光譜蛋白Maker（北京索萊寶公司），Anti-Caspase 9抗體（欣博盛生物科技有限公司），Anti-GSK-3β抗體（賽信通生物試劑有限公司），Anti-Bad抗體（Abcam），Anti-GAPDH抗體（Abcam），雙抗P/S Solution（美國Sciencell公司）。倒置相差顯微鏡（奧林巴斯，IX50），透射電鏡（Hitachi，HF5000），流式細(xì)胞儀（美國Beckmam，型號Cytomics FC500），發(fā)光凝膠成像系統(tǒng)（英國SYNGENE，型號GeneGnome XRQ），蛋白電泳儀（美國Bio-rad，PowerPac^TM），全自動酶標(biāo)儀（美BioTek，型號Synergy H1），醫(yī)用恒溫靜水壓壓力罐（北京世紀(jì)森朗實驗儀器有限公司）。

2 ?實驗方法

2.1 ?造模

人髓核細(xì)胞由Sciencell Research Laboratories提供。復(fù)蘇細(xì)胞時先將髓核細(xì)胞從液氮中取出，立即放入37 ℃恒溫水浴中，待完全融化后取出，使用移液器將髓核細(xì)胞重懸后1000 r/min離心5 min，棄上清液后傳代培養(yǎng)髓核細(xì)胞，鏡下見髓核細(xì)胞增殖到約90%瓶底時傳代，獲得第3代髓核細(xì)胞（P3）后，將髓核細(xì)胞放入醫(yī)用恒溫靜水壓壓力罐中進(jìn)行造模，壓力設(shè)定為0.3、1、3 MPa，分別作用2、4、6 h。

2.2 ?分組

實驗分為單純壓力干預(yù)組（壓力組）、壓力+藥物血清組（中藥組）共6組，分別為0.3、1、3 MPa壓力環(huán)境/單純DMEM培養(yǎng)組，0.3、1、3 MPa壓力環(huán)境/DMEM+藥物血清組。

2.3 ?給藥

按“兔表面積/人體表面積=兔的給藥量/人給藥量”的換算方法，計算兔給藥劑量為3.50 g（/kg·d），為保證血清含藥量，盡量調(diào)高給藥劑量，最終給藥劑量為28 g/（kg·d），即原給藥劑量的8倍。中藥組2只兔分別為3.2、3.8 kg/只，藥物180 g溶于130 mL純水中，以20 mL/（kg·d）灌胃，連續(xù)3 d，最后1 d灌胃結(jié)束1 h后，耳緣靜脈取血，每只家兔取血約50～60 mL，4 ℃靜置數(shù)小時后，3500 r/min離心15 min，取血清，56 ℃滅活30 min，過濾分裝，-80 ℃冰箱保存。課題組前期研究利用MTT比色法篩選出身痛逐瘀湯藥物血清最佳給藥濃度為15%，藥物干預(yù)時間為24 h，因此選用15%身痛逐瘀湯藥物血清濃度。

2.4 ?人髓核細(xì)胞模型一般形態(tài)觀察

3代髓核細(xì)胞鋪片連同培養(yǎng)基一起裝入10 mL注射器中，在靜水壓加載裝置中通過注入氮氣加壓，靜水壓設(shè)定為0.3、1、3 MPa，以模擬人體不同體位下椎間壓力環(huán)境，每個靜水壓分別作用2、4、6 h，并通過智能溫控裝置使容器內(nèi)溫保持在37 ℃。造模結(jié)束后，將氣體放掉，打開裝置蓋子，取出注射器，PBS沖洗玻片3遍，4%多聚甲醛固定30 min，利用倒置顯微鏡觀察細(xì)胞成長及其形態(tài)變化。

2.5 ?人髓核細(xì)胞模型超微結(jié)構(gòu)觀察

分別制作壓力組和中藥組髓核細(xì)胞電鏡樣本，觀察靜水壓加壓前后髓核細(xì)胞的超微結(jié)構(gòu)。分別為0.3、1、3 MPa，以模擬人體不同體位下椎間壓力環(huán)境，每個靜水壓分別作用2、4、6 h。取出細(xì)胞玻片，2.5%戊二醛溶液固定，電鏡下觀察。

2.6 ?流式細(xì)胞術(shù)檢測人髓核細(xì)胞凋亡

人髓核細(xì)胞2000 r/min離心5 min，胰酶消化，收集1×10⁵～5×10⁵細(xì)胞，添加500 μL Binding Buffer懸浮細(xì)胞，加5 μL Annexin V-FITC混勻后，加5 μL Propidium Iodide，混勻室溫、避光、反應(yīng)5～15 min，1 h內(nèi)流式細(xì)胞儀檢測。正常活細(xì)胞不被Annexin V- FITC和Propidium Iodide染色;凋亡早期細(xì)胞僅被AnnexinV-FITC染色，Propidium Iodide染色呈陰性;壞死細(xì)胞和凋亡晚期細(xì)胞同時被AnnexinV-FITC和Propidium Iodide染色。

2.7 ?凝膠電泳遷移法檢測p-Akt活性

使用核蛋白抽提試劑盒提取細(xì)胞核蛋白，按產(chǎn)品說明書進(jìn)行p-Akt探針標(biāo)記，采取10 V/cm電壓電泳10 min，干燥，X光片壓片，檢測各組灰度值。

2.8 ?Western blot檢測Bad、Caspase-9、GSK-3β蛋白的表達(dá)

①組織蛋白提?。簩⑹占募?xì)胞樣本離心，加入RIPA裂解液（含PMSF），離心10 min后，抽吸上清液，-80 ℃冰箱保存。②蛋白含量測定：將標(biāo)準(zhǔn)品及樣本PBS稀釋后，加入工作液，37 ℃反應(yīng)30 min，于酶標(biāo)儀檢測OD值并畫出標(biāo)準(zhǔn)曲線，計算樣本蛋白濃度。③電泳：將分離膠灌入玻璃板間，加入無水乙醇封層后倒出乙醇，然后將濃縮膠倒入分離膠上層，即刻插入梳子，37 ℃等待40 min，取下玻璃板后放入電泳槽，100 V電泳，當(dāng)樣品到濃縮膠與分離膠交界時，改為200 V電泳至終止。④轉(zhuǎn)膜：卸膠、剪膠，放入緩沖液中15 min;剪下PVDF膜，分別浸潤在甲醇、超純水、電轉(zhuǎn)液中;平鋪濾紙、PVDF膜、凝膠及濾紙，構(gòu)成“三明治”模型，固定放入半干轉(zhuǎn)儀器中，25 V恒壓轉(zhuǎn)膜30 min。⑤孵育及顯影：轉(zhuǎn)膜后，將膜置于一抗溶液，室溫水平搖動1 h，4 ℃孵育過夜;次日TBST洗膜10 min×3次，二抗（1︰3000）室溫孵育60 min，TBST沖洗10 min×3次。膜上滴加ECL反應(yīng)液500 μL，30 s后，曝光10 min，成像。

3 ?統(tǒng)計學(xué)方法

采用SPSS18.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行分析。研究所得指標(biāo)均獨立重復(fù)測定3次，實驗數(shù)據(jù)以x（—）±s表示，2組間比較符合正態(tài)分布采用獨立t檢驗，2組間比較不符合正態(tài)分布用秩和檢驗;多組間比較用方差分析。P<0.05表示差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

4 ?結(jié)果

4.1 ?光鏡觀察結(jié)果

①細(xì)胞體積：0.3、1、3 MPa靜水壓作用4 h，人髓核細(xì)胞體積均縮小，3 MPa靜水壓作用下細(xì)胞體積縮小最明顯;②突起：0.3、1、3 MPa靜水壓作用下細(xì)胞突起均變短，3 MPa靜水壓作用下細(xì)胞突起縮短最明顯，部分細(xì)胞突起不顯著，呈皺縮狀改變;③相同壓力和加載時間，中藥組較壓力組人髓核細(xì)胞數(shù)目更多，形態(tài)保存更完整，生長狀況更好。結(jié)果見圖1。

4.2 ?電鏡觀察結(jié)果

人髓核細(xì)胞超微結(jié)構(gòu)變化：①人髓核細(xì)胞在0.3、1、3 MPa靜水壓作用4 h后突起均有斷裂。②0.3、1 MPa靜水壓作用下人髓核細(xì)胞主級突起完整、次級突起均有斷裂;3 MPa靜水壓作用下人髓核細(xì)胞主級突起與次級突起均有斷裂。③相同靜水壓不同作用時間，人髓核細(xì)胞超結(jié)構(gòu)無明顯變化。④相同壓力和作用時間，中藥組較壓力組人髓核細(xì)胞在掃描電鏡下形態(tài)及超微結(jié)構(gòu)保存更完整，生長狀況更好。結(jié)果見圖2。

4.3 ?身痛逐瘀湯對人髓核細(xì)胞模型凋亡的影響

2組人髓核細(xì)胞0.3、1、3 MPa作用2 h細(xì)胞凋亡率較低。隨著時間的增加，壓力組和中藥組0.3、1、3 MPa細(xì)胞凋亡率上升，其中3 MPa靜水壓作用2、4、6 h細(xì)胞凋亡率較0.3 MPa差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05，P<0.01）;2組人髓核細(xì)胞3 MPa作用4 h細(xì)胞凋亡率明顯增加;中藥組人髓核細(xì)胞0.3 MPa作用2 h后凋亡率最低，壓力組人髓核細(xì)胞3 MPa壓力作用6 h凋亡率最高;2組人髓核細(xì)胞3 MPa壓力作用4 h和6 h，細(xì)胞凋亡率差異不明顯（P>0.05）。結(jié)果見圖3。

4.4 ?身痛逐瘀湯對人髓核細(xì)胞模型PI3K/Akt信號通路相關(guān)蛋白表達(dá)的影響

0.3 MPa壓力作用下隨著時間的增加，中藥組人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)4 h時下降，6 h時明顯增加，壓力組人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)呈上升趨勢，但中藥組p-Akt水平明顯高于壓力組，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）;壓力組凋亡蛋白Bad、Caspase-9、GSK-3β的表達(dá)隨時間增加而升高，加入身痛逐瘀湯藥物血清后其表達(dá)受到抑制，其中4 h時最明顯，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）。結(jié)果見圖4。

1 MPa壓力作用下，隨著時間的增加，壓力組人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)4 h時明顯升高，6 h時降低，整體水平明顯下降，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）;中藥組人髓核細(xì)胞p-Akt水平隨著時間的增加其表達(dá)逐漸降低，但中藥組p-Akt整體水平高于壓力組，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）;壓力組人髓核細(xì)胞凋亡蛋白Bad、Caspase-9、GSK-3β的表達(dá)隨時間增加而升高，而加入身痛逐瘀湯藥物血清后其表達(dá)受到明顯抑制，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）。見圖5。

3 MPa壓力作用下，隨著時間的增加，壓力組人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)4 h時明顯升高，6 h時明顯降低，但整體水平升高，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）;中藥組人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)2 h時最高，后隨著時間增加其表達(dá)明顯下降，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）;凋亡蛋白Bad、Caspase-9、GSK-3β的表達(dá)隨時間增加而升高，加入身痛逐瘀湯藥物血清后其表達(dá)受到明顯抑制，差異有統(tǒng)計學(xué)意義（P<0.05）。見圖6。

5 ?討論

PI3K/Akt通路在調(diào)控椎間盤髓核細(xì)胞凋亡方面發(fā)揮著重要作用。Deng等^[3]研究發(fā)現(xiàn)，淫羊藿苷通過PI3K/Akt途徑抑制大鼠髓核間盤細(xì)胞H₂O₂誘導(dǎo)的凋亡，其機(jī)制是淫羊藿苷顯著降低了H₂O₂誘導(dǎo)的細(xì)胞凋亡和細(xì)胞內(nèi)活性氧，上調(diào)p-Akt和Bcl-2表達(dá)，下調(diào)Caspase-3和Bax表達(dá)。Liu等^[4]研究發(fā)現(xiàn)，椎間盤受到應(yīng)力刺激時，髓核細(xì)胞可激活PI3K/Akt信號通路抑制促凋亡Bcl-2家族成員Bad、Caspase-9、GSK-3β等凋亡轉(zhuǎn)錄因子的轉(zhuǎn)錄而起到抑制髓核細(xì)胞凋亡的作用。

研究表明，當(dāng)過高的壓力加載時，IVD會發(fā)生形變，且IVD內(nèi)的靜水壓會明顯增加，導(dǎo)致IVD內(nèi)水分外移，繼而細(xì)胞外基質(zhì)分解加快，IVD內(nèi)環(huán)境趨于惡化，誘發(fā)IVDD^[5-6]。反之IVD內(nèi)靜水壓缺失同樣會導(dǎo)致IVD組織內(nèi)蛋白聚糖的表達(dá)量顯著降低，這種作用與壓力的強(qiáng)度和作用時間相關(guān)^[7-8]。這些結(jié)果同國外學(xué)者的研究結(jié)果^[9-12]一致。表明靜水壓力學(xué)因素與IVD髓核細(xì)胞的凋亡和細(xì)胞外基質(zhì)代謝的影響最為密切^[13-14]。

中醫(yī)學(xué)認(rèn)為，腰痹常由氣血瘀滯引起，現(xiàn)代醫(yī)學(xué)提出腰腿痛的根本原因是炎性因子刺激或神經(jīng)根受壓后水腫所致^[15]。北京中醫(yī)藥大學(xué)東直門醫(yī)院名老中醫(yī)孫呈祥教授總結(jié)治療臨床腰腿痛的核心是行氣活血，關(guān)鍵是祛瘀通絡(luò)，并以中醫(yī)經(jīng)典方劑身痛逐瘀湯臨床辨證治療IVDD療效較好^[16]，方中秦艽、羌活祛風(fēng)除濕，沒藥、香附行氣血、止疼痛，桃仁、紅花、當(dāng)歸、川芎活血祛瘀，牛膝、地龍疏通經(jīng)絡(luò)以利關(guān)節(jié)，甘草調(diào)和諸藥，全方共奏活血祛瘀、祛風(fēng)除濕、通痹止痛之效。國內(nèi)有關(guān)身痛逐瘀湯治療IVDD的相關(guān)臨床研究報道顯示該方療效顯著^[17-19]。

本研究以身痛逐瘀湯藥物血清在體外靜水壓環(huán)境下干預(yù)人椎間盤髓核細(xì)胞，表明中藥藥物血清對髓核細(xì)胞活力、形態(tài)和超微結(jié)構(gòu)具有保護(hù)作用，降低髓核細(xì)胞凋亡率。Western blot檢測加入身痛逐瘀湯藥物血清后人髓核細(xì)胞p-Akt表達(dá)升高，凋亡蛋白Bad、Caspase-9、GSK-3β表達(dá)降低。通過與壓力組對比發(fā)現(xiàn)，隨著椎間盤靜水壓的增加身痛逐瘀湯藥物血清后雖不能逆轉(zhuǎn)間盤退變趨勢，但明顯抑制了這一進(jìn)程，說明身痛逐瘀湯可能通過上調(diào)PI3K/Akt通路的表達(dá)延緩人髓核細(xì)胞凋亡，從而減緩椎間盤退變。

綜上所述，體外培養(yǎng)髓核細(xì)胞存在時間-壓力依賴關(guān)系，作用時間延長及壓力增大均可導(dǎo)致髓核退變;在相對短時間內(nèi)（6 h內(nèi)），壓力負(fù)荷是導(dǎo)致髓核細(xì)胞凋亡的主要因素，低靜水壓環(huán)境（0.3、1 MPa）下，髓核細(xì)胞活力隨時間變化不明顯，而在高靜水壓（3 MPa）環(huán)境下，隨時間增加，髓核細(xì)胞活力顯著下降;身痛逐瘀湯可能通過激活PI3K/Akt信號通路，進(jìn)而調(diào)控通路相關(guān)分子蛋白的表達(dá)，延緩IVD的退變，其作用機(jī)制可能與抑制Bad、Caspase-9、GSK-3β蛋白表達(dá)相關(guān)。

參考文獻(xiàn)：

[1]?DINO S， JARO K， FLORENCE M， et al. A population-based study of juvenile disc degeneration and its association with overweight and obesity， low back pain， and diminished functional status[J]. Journal of Bone & Joint Surgery-American Volume，2011，93（7）：662-670.

[2]?CHIWARIDZO M， NAIDOO N. Prevalence and associated characteristics of recurrent non-specific low back pain in Zimbabwean adolescents：a cross-sectional study[J]. BMC?Musculoskeletal Disorders，2014，15（1）：1-10.

[3]?DENG X， CHEN S， ZHENG D， et al. Icariin Prevents H₂O₂-induced apoptosis via the PI3K/Akt pathway in rat nucleus pulposus intervertebral disc cells[J]. Evidence-Based Complementray and Alternative Medicine，2017，24（4）：254-261.

[4]?LIU B， CONG W， CHEN P， et al. RACKI induces chemotherapy resistance in esophageal carcinoma by upregulating the PI3K/AKT pathway and Bcl-2 expression[J]. Oncotargets &?Therapy，2018，?4（11）：211-220.

[5]?OBI S， YAMAMOTO K， ANDO J， et al. Differentiation of circulating endothelial progenitor cells induced by shear stress[C]// International Symposium on Micro-nanomechatronics & Human Science，2012：4-7.

[6]?YANG J， ZOU Y， JIANG D. Honokiol suppresses proliferation and induces apoptosis via regulation of the miR-21/PTEN/PI3K/AKT signaling pathway in human osteosarcoma cells[J]. International Journal of Molecular Medicine，2018，41（4）：1845-1854.

[7]?MANOS S， JIN L， PHILLIP P， et al. ISSLS Prize winner：Mechanical influences in progressive intervertebral disc degeneration[J]. Spine，2014，39（17）：1365-1372.

[8]?COSTA R L B， HAN H S， GTADISHAR W J. Targeting the PI3K/AKT/mTOR pathway in triple-negative breast cancer： a review[J]. Breast Cancer Research & Treatment，2018，169（6）：1-10.

[9]?COMELIA N W， ANTJE M， CHRISTINA R， et al. Interactions of environmental conditions and mechanical loads have influence on matrix turnover by nucleus pulposus cells[J]. Journal of Orthopaedic Research，2011，30（1）：112-121.

[10]?HIROAKI H， TAKASHI Y， KENICHIRO K， et al. A rat tail temporary static compression model reproduces different stages of intervertebral disc degeneration with decreased notochordal cell phenotype[J]. Journal of Orthopaedic Research，2014，32（3）：455-463.

[11] ZHANG?C C， ZHOU J?S， HU?J?G， et al. Effects of IGF-1 on IL-1β-induced apoptosis in rabbit nucleus pulposus cells in vitro[J]. Molecular Medicine Reports，2013，7（2）：440-441.

[12]?MOENCH R， GRIMMIG T， KANNEN V， et al. Exclusive inhibition of PI3K/Akt/mTOR signaling is not sufficient to prevent PDGF-?mediated effects on glycolysis and proliferation in colorectal cancer[J]. Oncotarget，2016，7（42）：68749-68767.

[13]?JIANG L， YUAN F， YIN X， et al. Responses and adaptations of intervertebral disc cells to microenvironmental stress：a possible central role of autophagy in the adaptive mechanism[J]. Connective Tissue Research，2014，55（5/6）：311.

[14]?ZHAO Y， PANG W， YANG N， et al. MicroRNA-511 inhibits malignant behaviors of breast cancer by directly targeting SOX9 and regulating the PI3K/Akt pathway[J]. International Journal of Oncology，2018，53（6）：2715-2726.

[15] 許早榮，鄭愛紅.身痛逐瘀湯加減治療慢性腰痛的體會[J].中國民間療法，2018，26（4）：30-31.

[16] 王賓，武師偉，劉長信，等.孫呈祥教授治療筋傷病用藥經(jīng)驗[J].現(xiàn)代中醫(yī)臨床，2016，23（5）：46-48

[17] 李東山.身痛逐瘀湯加減治療腰椎間盤突出癥的臨床價值分析[J].中國醫(yī)藥指南，2013，11（33）：206-207.

[18] 吳剛忠.加味身痛逐瘀湯治療腰椎間盤突出癥18例[J].湖南中醫(yī)雜志，2014，30（9）：88.

[19] 葉志堅，邵大清，方韜.中西醫(yī)結(jié)合治療腰椎間盤突出癥疼痛的臨床研究[J].中華中醫(yī)藥學(xué)刊，2015，33（5）：1249-1251.