王國征,吳遠彬,郭坤元,代喜平
(廣州中醫(yī)藥大學第二附屬醫(yī)院血液科,廣東省中醫(yī)院血液科,廣東 廣州 510120)
急性白血病是人類最常見的惡性腫瘤,白血病干細胞(leukemia stem cell,LSC)是其復發(fā)和難治根源之一[1-2]。LSC在多個基因和信號調節(jié)系統(tǒng)上發(fā)生異常,失去正常的增殖分化能力,具有很強的無控性自主增殖能力,能夠對藥物、放射和免疫細胞的殺傷產生強大的抵抗力[3]。研究表明,從急性髓系白血病細胞株KG1a中分選的CD34+CD38-KG1a具有LSC生物學特性,可抵抗化學藥物的殺傷作用[4]。本研究擬探討CD34+CD38-KG1a對自然殺傷(natural killer,NK)細胞的抵抗作用及可能機制。
1.1 細胞系、試劑和儀器人急性髓系白血病細胞株K562由本實驗室凍存,KG1a細胞株由中國醫(yī)學科學院血液病研究所惠贈,本實驗室傳代保存;PRMI-1640培養(yǎng)基、胎牛血清購自美國Gibco公司,淋巴細胞分離液購自天津血液研究所,乳酸脫氫酶(lactate dehydrogenase,LDH)殺傷活性試劑盒購自美國Promega公司,抗主要組織相容性復合體(major histocompatibility complex,MHC)-I類鏈相關分子A/B(MHC class I chain-related molecules A and B,MICA/B)單抗、抗人巨細胞病毒UL16結合蛋白(human cytomegalovirus glycoprotein UL16 binding proteins,ULBP)1單抗、抗ULBP2單抗、抗ULBP3單抗、抗人類白細胞抗原(human leukocyte antigen,HLA) -Ⅰ類分子抗體、CD38-異硫氰酸熒光素 (fluorescein isothiocyanate,F(xiàn)ITC)、抗-FITC免疫磁珠、抗CD16CD56免疫磁珠購自德國MiltenyiBiotec公司,殺傷細胞免疫球蛋白樣受體(inhibitory killer cell immunoglobulin- like receptor,KIR)基因檢測試劑盒、HLA基因檢測試劑盒購自德國Biotest公司;精密加樣槍購自美國Apendorff公司,免疫磁珠細胞分選儀(immune magnetic bead separator,MACS)、LD分離柱購自德國Miltenyi Biotec公司,ELX800光吸收酶標儀購自美國Bio-TeK公司,Eppendorf高速低溫離心機購自美國Fisher Scientific公司,流式細胞儀購自美國Coulter公司,超凈工作臺購自蘇州凈化設備有限公司,Olympus倒置顯微鏡購自日本Olympus公司,CO2培養(yǎng)箱購自美國Thermo公司,一次性100 cm2培養(yǎng)瓶、試管、96孔培養(yǎng)板購自美國Corning公司,血球計數(shù)板購自上海求精生化試劑儀器有限公司。
1.2 細胞培養(yǎng)37 ℃水浴箱中溶解凍存的K562、KG1a細胞,1 000 r·min-1離心5 min,棄上清,重懸浮細胞于4 mL含體積分數(shù)10%胎牛血清、100 U·mL-1青霉素和100 mg·L-1鏈霉素的RPMI-1640培養(yǎng)基,接種于25 cm2培養(yǎng)瓶,置于 37 ℃、含體積分數(shù)5%CO2培養(yǎng)箱中進行孵育。
1.3 免疫磁珠法分選CD34+CD38-KG1a細胞取對數(shù)生長期KG1a細胞,磷酸鹽緩沖液(phosphate buffered saline,PBS)洗滌2次,每107個細胞加100 μL PBS和帶FITC的CD38抗體10 μL,4 ℃下避光孵育30 min。PBS洗滌1次,棄上清液,重懸浮細胞,每107個細胞加PBS 9 μL和抗FITC的免疫磁珠10 μL,混勻后4 ℃下孵育15 min,PBS再洗滌1次,棄上清液,重懸于5 mL分選液中,將LD柱安裝在磁鐵中,取2 mL分選液濕潤LD分離柱,細胞懸液加入LD柱中,每次加入1 mL緩沖液,沖洗2次,無菌試管收集分離的CD34+CD38-KG1a細胞。每106個細胞加1 μg單抗,4 ℃下孵育30 min,加PBS 2 mL,1 000 r·min-1離心10 min,棄上清液,重新懸浮細胞,流式細胞儀檢測分離細胞的純度。
1.4 同種異體NK細胞分離采用梯度密度沉淀法分離4例健康個體外周血單個核細胞,PBS洗滌后,每107個細胞加緩沖液80 μL和抗NK細胞免疫磁珠20 μL,4 ℃下孵育15 min,每107個細胞加緩沖液1 mL,離心,棄上清。每108個細胞加緩沖液500 μL重新懸浮細胞,置于Mini-MACS磁場中進行分離,一次性試管收集CD3陰性細胞,再次用 500 μL 緩沖液沖洗分選的CD56陽性細胞,共2次,卸下分選柱,加RPMI-1640培養(yǎng)液 1 mL,推注器推出陽性細胞,分選的CD3-CD16+CD56+細胞即為NK細胞。PBS洗滌2次,每106個細胞加CD3FITC/CD16CD56PE單抗1 μg,4 ℃孵育 30 min,加入PBS 2 mL,1 000 r·min-1離心10 min,棄上清后重懸細胞,以同型的IgG為對照,采用流式細胞術檢測NK細胞數(shù)。
1.5 NK細胞對K562細胞和CD34+CD38-KG1a細胞的殺傷作用以NK細胞為效應細胞,以對數(shù)生長期K562細胞為靶細胞對照,分離的CD34+CD38-KG1a細胞為靶細胞,RPMI-1640培養(yǎng)基調整細胞密度為2×108L-1,加入96孔板中,每孔 50 μL。將細胞分為效靶組、效應細胞自發(fā)釋放組、靶細胞自發(fā)釋放組、靶細胞最大釋放組和空白對照組。效靶組按不同效靶比(5:1、10:1、20:1)分別加入不同濃度的NK細胞各50 μL;效應細胞自發(fā)釋放組加入NK細胞50 μL、RPMI-1640培養(yǎng)基50 μL;靶細胞自發(fā)釋放組加入靶細胞50 μL、RPMI-1640培養(yǎng)基50 μL;靶細胞最大釋放組加入裂解液10 μL、靶細胞50 μL、RPMI-1640培養(yǎng)基50 μL;空白對照組加入100 μL RPMI-1640培養(yǎng)液。各組均設4個復孔,于37 ℃下在含體積分數(shù)5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)4 h后,2 000 r·min-1離心5 min,吸取 50 μL 上清,加入96孔平底酶標板中,加LDH底物反應液50 μL,室溫下避光放置30 min,每孔加 50 μL 終止液終止反應。酶標儀測波長490 nm 處吸光度值。計算NK細胞殺傷活性。殺傷率=(效靶組平均吸光度值-靶細胞自然釋放組平均吸光度值-效應細胞自然釋放組平均吸光度值)/(靶細胞最大釋放組平均吸光度值-靶細胞自然釋放組平均吸光度值)×100%。
1.6 NK細胞KIR和CD34+CD38-KG1a細胞HLA-Ⅰ基因分型采用聚合酶鏈式反應-序列特異性引物法(polymerase chain reaction with sequence specific primers,PCR-SSP)進行NK細胞KIR和CD34+CD38-KG1a細胞HLA-Ⅰ基因分型,嚴格按照試劑盒說明書進行操作。
融化試劑盒配備PCR緩沖液,震蕩混勻,每管1份(150.0 μL);取出Taq酶置于冰盒上;加60 μL蒸餾水和2.4 μL Taq酶于備用的PCR緩沖液管,震蕩混勻。取上述混合液8 μL加至污染監(jiān)控孔(對照孔)。加25 μL提純的DNA標本至剩余的混合液中,震蕩均勻;除對照孔外,每孔加上述混合液 8 μL,用密封條密封試劑板。放入PCR儀進行擴增,擴增程序:95 ℃預變性1 min,95 ℃變性20 s,63 ℃ 退火20 s,72 ℃延伸90 s,共30個循環(huán)。4 ℃終止反應。5×Tris-硼酸緩沖液制備20 g·L-1的瓊脂糖凝膠,冷卻至60 ℃時,每100 mL TBE加2 μL 10 g·L-1的溴化乙錠,電泳槽中鋪好膠后放置梳子,冷卻。去掉PCR試劑板上的密封條,加入6 μL PCR產物于電泳膠孔內。以ONELAMBDA gel box 120V恒壓電泳25 min,將凝膠取出置紫外燈下拍照觀察。
1.7 K562細胞和CD34+CD38-KG1a細胞表面NKG2D配體及HLA-Ⅰ分子的表達取對數(shù)生長期K562細胞和分選的CD34+CD38-KG1a細胞,PBS洗滌,計數(shù),分管,直接標記法檢測HLA-Ⅰ類分子,每106個細胞加入1 μg W6/32,4 ℃培育 30 min,PBS洗滌3次。間接標記法檢測NKG2D配體的表達,每106個細胞加入抗MICA/B單抗,抗ULBP1單抗,抗ULBP2單抗,抗ULBP3單抗,抗HLA-Ⅰ 單抗一抗各1 μg,4 ℃下作用30 min,PBS洗滌后再加入FITC標記的山羊抗鼠IgG(稀釋度1:100)二抗,4 ℃培育30 min,PBS洗滌后上機,以同型IgG抗體作為陰性對照。流式細胞儀分析1×104個細胞中陽性細胞數(shù),計算百分率。實驗重復3次,取平均值。
2.1 CD34+CD38--KG1a和NK細胞的純度結果見圖1。分選的CD34+CD38--KG1a細胞和NK細胞純度分別為(94.25±2.16)%、(91.70±2.05)%。
A:NK細胞分選前;B:NK細胞分選后;C:CD34+CD38-KG1a 細胞分選前;D:CD34+CD38-KG1a 細胞分選后。
2.2 NK細胞對K562和CD34+CD38-KG1a細胞的殺傷作用結果見表1。NK細胞在各效靶比下對CD34+CD38-KG1a細胞的殺傷率均低于K562細胞,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
表1 NK細胞對K562和CD34+CD38-KG1a細胞殺傷情況
2.3 NK細胞KIR和CD34+CD38-KG1a細胞的HLA-Ⅰ基因分型結果見圖2和圖3。4例健康個體NK細胞KIR基因型KIR2DL1、KIR2DL3、KIR3DL1和KIR3DL2;CD34+CD38-KG1a細胞HLA-Ⅰ基因型為A30、30,B51、78,Cw4、16。
圖2 NK細胞KIR基因分型
圖3 CD34+CD38-KG1a細胞HLA基因分型
2.4 K562和CD34+CD38-KG1a細胞中NKG2D配體及HLA-Ⅰ類分子的表達率結果見表2。K562細胞高表達NKG2D配體,CD34+CD38-KG1a細胞幾乎不表達NKG2D配體,K562細胞中NKG2D配體表達率顯著高于CD34+CD38-KG1a細胞,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05);K562細胞中幾乎不表達HLA-Ⅰ,CD34+CD38-KG1a細胞高表達HLA-Ⅰ,CD34+CD38-KG1a細胞中HLA-Ⅰ的表達率顯著高于K562細胞,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05)。
表2 K562和CD34+CD38-KG1a細胞表面NKG2D配體和HLA-Ⅰ分子的表達率
LSC不僅凋亡相關基因發(fā)生改變,其免疫原性也發(fā)生了改變(尤其在和免疫系統(tǒng)進行對抗作用后),如MHC抗原表達缺失或降低、黏附分子和共刺激分子表達下降、抗原加工提呈障礙、低表達NKG2D配體等,這些免疫原性改變使LSC能夠逃逸免疫細胞識別和殺傷,最終發(fā)展為白血病[5]。NK細胞是機體的細胞毒性淋巴細胞,在殺傷腫瘤細胞的過程中,無需特異性抗原提呈,可直接發(fā)揮殺傷作用,比其他免疫細胞更直接、更迅速,在抗腫瘤免疫中起重要作用,是近年來過繼性免疫治療的新星[6]。
NK細胞的殺傷活性由其表面的活化性受體、抑制性受體傳遞的信號共同決定。NKG2D是NK細胞表面的主要活化性受體,其配體為ULBP,目前發(fā)現(xiàn)的成員有 ULBP1、ULBP2、ULBP3和MICA/B[7]。KIR是NK細胞表面主要抑制性受體,和腫瘤細胞表面的HLA- I類分子結合后傳遞抑制性信號[8]。KIR分子不同,識別并結合的HLA-I分子也不同[9],KIR2DL1識別HLA-Cw2、Cw4、Cw5和Cw6;KIR2DL2/2DL3識別HLA-Cw1、Cw3、Cw7和Cw8;KIR3DL1識別HLA-Bw4;KIR3DL2識別HLA-A3和A11;其余的KIR配體目前尚未完全明確[10]。NK細胞通過其表面2種受體與靶細胞表面配體相結合,傳遞不同信號,調節(jié)NK細胞的功能發(fā)揮。
本研究結果顯示,CD34+CD38-KG1a細胞明顯抵抗NK細胞的殺傷作用,即使在效靶比為20:1時,殺傷率仍小于15%,而K562細胞對NK細胞的殺傷作用高度敏感,在同一效靶比時NK細胞對K562細胞殺傷率顯著高于CD34+CD38-KG1a細胞。進一步研究發(fā)現(xiàn),K562細胞幾乎不表達HLA-I分子,因此不能與NK細胞表面KIR受體結合傳遞抑制性信號,而活化性配體NKG2D高表達,導致殺傷信號明顯增強,故K562細胞對NK細胞殺傷作用高度敏感。而CD34+CD38-KG1a細胞高表達HLA-I類分子,能與NK細胞表面KIR受體結合,傳遞抑制性信號;其基因型為A30、30,B51、78,Cw4、16。HLA-Cw4能與NK細胞表面的KIR2DL1分子識別;因此,CD34+CD38-KG1a細胞能通過Cw4-KIR2DL1途徑向NK細胞傳遞抑制性信號。HLA-A30不能識別KIR3DL2和HLA-B51、78不能識別KIR3DL1、3DL2 配體,存在錯配,傳遞活化信號;但是其活化性配體NKG2D幾乎不表達,導致活化性信號較弱。2種信號作用NK細胞后抑制性信號占優(yōu)勢,導致CD34+CD38-KG1a細胞抵抗NK細胞的殺傷作用。
研究表明,NKG2D配體在白血病細胞中相對廣泛的表達使其在誘導NK細胞毒性反應中起著重要作用,NKG2D配體下調或丟失可導致LSC抵抗免疫細胞殺傷作用[11]。LSC逃逸免疫細胞殺傷作用的能力,一部分是其固有的,一部分是在與免疫細胞相互作用中獲得的[12]。因此,研究如何恢復或增強白血病細胞表面NKG2D配體的表達,或者干擾LSC的HLA基因或分子使之與KIR發(fā)生錯配,將會為提高白血病免疫治療效果提供一種新的思路。