陳少瑜 吳濤 肖良俊
摘要:【目的】揭示三江并流區(qū)金沙江流域云南核桃種質資源的遺傳多樣性及分布特征,為該區(qū)域核桃資源的合理開發(fā)利用及科學保護提供參考依據(jù)?!痉椒ā垦亟鹕辰饔虿杉?53份云南核桃資源,根據(jù)鄉(xiāng)(鎮(zhèn))行政區(qū)劃及資源分布情況將其劃分成5個群體(YL、DQ、QZ、PTG和YC),采用微衛(wèi)星(SSR)分子標記進行等位片段檢測;運用GenAIEx 6.5計算等位片段數(shù),并以POPGENE version 1.32分析群體的遺傳多樣性?!窘Y果】19對SSR引物共檢測到130個等位片段,各片段在153份樣本中的出現(xiàn)頻率各不相同,其中片段A122出現(xiàn)的頻率最高,達0.8301;有14個片段頻率最低(稀有等位片段),僅0.0033。5個群體等位片段數(shù)量占總數(shù)的比例在70.70%~85.38%,Nei’基因多樣性指數(shù)(H)平均為0.6046,Shannon’s信息指數(shù)(I)平均為1.1709,期望雜合度(He)平均為0.6165。5個群體遺傳多樣性的分布排序依次為QZ>YL>PTG>YC>TD。其中,TD群體高頻率等位片段頻率達0.9062,稀有等位片段占總稀有等位片段的比例為21.43%;PTG群體稀有等位片段占總稀有等位片段的比例達42.86%?!窘Y論】三江并流區(qū)金沙江流域云南核桃種質資源的遺傳多樣性屬于中等水平,應采取積極措施進行保護和利用,尤其應加強對野生核桃資源的保護和利用。開展品種選育及種質資源保護工作時,在選擇遺傳多樣性高的群體基礎上,應結合表型性狀及稀有等位片段頻率的分布特征,側重于群體內單株的選擇。
關鍵詞: 云南核桃;種質資源;SSR標記;遺傳多樣性;分布特征;三江并流區(qū)金沙江流域
中圖分類號: S664.1? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? ? 文獻標志碼: A 文章編號:2095-1191(2019)12-2656-09
Genetic diversity and distribution characteristic of Juglans sigillata resources along Jinsha River in Three Parallel
Rivers Belt of Yunnan
CHEN Shao-yu1,2, WU Tao1,2, XIAO Liang-jun3
(1Yunnan Academy of Forestry and Grassland,Kunming? 650201, China; 2Laboratory for Conservation and Breeding for Rare, Endangered and Endemic Forest Plants of State Forestry Administration/Yunnan Provincial Key Laboratory for Cultivation and Utilization of Forest Plants,Kunming? 650201, China; 3Institute of Economic Forest Trees, Yunnan Academy of Forestry and Grassland, Kunming? 650201, China)
Abstract:【Objective】In order to provide scientific information for utilization and protection of walnut resource in the area,genetic diversity and distribution characteristic of Juglans sigillata populations along Jinsha River in Three Parallel Rivers Belt of Yunnan was revealed. 【Method】A total of 153 walnut individuals were sampled along Jinsha River. Based on administrative division and distribution characteristic of resources, they were divided into five populations (YL, DQ, QZ, PTG and YC). Simple sequence repeat(SSR) molecular technique was used to detect allelic fragments. GenAIEx 6.5 was used to calculate number of allelic fragments and POPGENE version 1.32 was used to analyze diversity of populations. 【Result】130 allelic fragments were detected by 19 pairs of primers. The frequency of each allele in 153 samples was different,among which allelic fragment A122 showed the highest frequency with 0.8301,while there were 14 allelic fragments(rare allelic fragments) showed the lowest frequency with only 0.0033. The allele percentage in total of five populations was from 70.70% to 85.38%. The average Nei’s gene diversity was 0.6046 and average Shannon’s information index was 1.1709. The average expected heterozygosity(He) was 0.6165. The order of genetic diversity from high to low of the five populations was QZ,YL,PTG,YC and TD. It was worth noticing that TD population,of which high frequency allelic fragments reached 0.9062,and the proportion of rare allelic fragments was 21.43%. Another population,PTG population,showed the highest rare allelic fragments proportion of 42.86%. 【Conclusion】The J. sigillata genetic diversity in the area is of medium level,which should be protected and utilized reasonably. During the work of breeding and conservation,based on selecting population with high genetic diversity,individuals within populations should be put particular emphasis on while combining phenotypic characters and distribution characteristic of rare allelic fragments.
Key words: Juglans sigillata; germplasm; SSR markers; genetic diversity; distribution characteristic; Jinsha River in Three Parallel Rivers Belt
0 引言
【研究意義】核桃(Juglans spp.)是世界著名的四大堅果之一,具有重要的經(jīng)濟價值及生態(tài)意義。全世界核桃共有23個種,我國有8個種,目前廣泛栽培的是核桃(J. regia)和云南核桃(深紋核桃、鐵核桃和泡核桃)(J. sigillata)2個種。其中,核桃適應性強,廣泛分布于我國北方地區(qū),云南核桃則是我國的特有種,云南的主要栽培種,主要分布于我國西南地區(qū)(王滑等,2009)。三江并流區(qū)是由高黎貢山、怒山、云嶺及怒江、瀾滄江、金沙江等構成的位于滇西北橫斷山區(qū)的一縱谷地,是世界上生物多樣性最豐富的地區(qū)之一(歐光龍等,2013)。該區(qū)域核桃資源非常豐富,亦是云南核桃的自然分布區(qū),但目前對這些資源尚缺乏系統(tǒng)了解,尤其缺乏對其遺傳背景的系統(tǒng)研究。遺傳多樣性決定了植物種質對環(huán)境的適應能力和利用潛力,因此遺傳多樣性研究不僅關系到種質資源的有效收集、保護和利用,還對植物新品種選育具有重要的指導意義?!厩叭搜芯窟M展】DNA分子標記技術已成為當前遺傳多樣性評價的一項有力工具,廣泛應用于各種植物的多樣性研究中(Agarwal et al.,2008)。其中,簡單重復序列(Simple sequence repeat,SSR)分子標記是基于PCR的核酸多態(tài)檢測技術,因具有高靈敏性、高通用性、共顯性及高重復性等優(yōu)點(Kelkar et al.,2010;Guichoux et al.,2011),在植物的指紋分析、親子鑒定、基因作圖和遺傳結構分析中得到廣泛應用(Jones et al.,2010),在核桃種質資源遺傳多樣性的研究中也有應用(Chen et al.,2014)。Dangel等(2005)分析了歐美48份核桃種質資源的遺傳多樣性,同時采用SSR分子標記鑒定不同的核桃品種,結果顯示這些種質資源具有較豐富的遺傳多樣性,篩選出的14個微衛(wèi)星分子標記可有效用于核桃品種鑒定。Victory等(2006)對美國闊葉樹分布中心區(qū)域43個黑核桃(J. nigra)群體的遺傳多樣性進行研究,結果顯示研究群體具有較豐富的遺傳多樣性,僅輕度偏離哈迪溫伯格比例,認為在分析的樣品范圍內,黑核桃具有顯著的遺傳同質性。郝艷賓等(2007)對核桃組(Sect. Juglans)種質資源中的29份核桃(J. regia L.)樣品、2份鐵核桃(J. sigillata D.)樣品、4份J. sigillata D.× J. regia L.樣品進行SSR標記分析,結果表明核桃組內樣品的雜合度較低,聚類分析結果顯示秦巴山地核桃應分別屬于華北和新疆2個地理生態(tài)型,且認為鐵核桃和西藏核桃作為核桃種下的一個生態(tài)類型更合適。王滑等(2007)對中國核桃8個天然居群的遺傳多樣性進行分析,結果發(fā)現(xiàn)居群的遺傳多樣性及居群間的遺傳分化皆處于較高水平,佐證了核桃和云南核桃為同一個種不同生態(tài)型的觀點。劉曉麗等(2008)對新疆地區(qū)3個核桃群體進行SSR分子標記的遺傳多樣性分析,探討伊犁野核桃、喀什實生核桃和栽培品種間的親緣演化關系,結果表明,3個核桃群體均具有較高的遺傳多樣性水平,核桃群體間存在基因滲透和基因交流,進一步從分子層面證明了我國是世界栽培核桃的起源中心之一的論斷。徐永杰等(2016)對大巴山區(qū)12個實生居群的386個實生單株的堅果表型和SSR分子標記的遺傳多樣性進行分析,發(fā)現(xiàn)該區(qū)域核桃堅果表型和遺傳多樣性均較豐富,大巴山區(qū)核桃在長期的實生繁殖和多樣立地環(huán)境中形成了豐富的堅果表型和遺傳變異,是我國重要的核桃資源多樣性分布區(qū)。彭少兵等(2017)利用SSR分子標記對安康串狀核桃及同屬的其他核桃品種進行親緣關系分析,結果顯示串狀核桃和西洛3號的親緣關系最近。Wang等(2015b)對西藏86份核桃種質資源表型和SSR分子標記遺傳多樣性及遺傳結構進行研究,結果表明86份資源具有中等水平的遺傳多樣性,表型聚類和遺傳距離聚類結果顯示86份資源未按地理起源聚類?!颈狙芯壳腥朦c】三江并流區(qū)復雜的地形地貌和多樣的氣候蘊育了豐富的核桃種質資源,但這些資源尚未得到系統(tǒng)研究,更未得到充分的開發(fā)和利用,尤其是分布在偏僻山區(qū)、高山溝壑的野生資源,亟待進一步保護和開發(fā)利用?!緮M解決的關鍵問題】在云南省核桃種質資源調查及深紋核桃分子SSR標記開發(fā)的基礎上,開展基于SSR分子標記的三江并流區(qū)金沙江流域核桃資源多樣性研究,闡明其遺傳多樣性及分布特征,為該區(qū)域核桃種質資源的保護和利用提供科學依據(jù)。
1 材料與方法
1. 1 試驗材料
供試的153份樣品均為當?shù)靥烊簧L的野生核桃資源,樹齡大于50年,資源間隔100 m以上,記錄資源的海拔、經(jīng)緯度及生境狀況,以采集的單株葉片為1個樣本,置于自封袋中,帶回提取DNA。資源分別采自3個縣8個鄉(xiāng)(鎮(zhèn)),玉龍縣(黎明鄉(xiāng)、巨甸鄉(xiāng)和塔城鄉(xiāng))、德欽縣(拖頂鄉(xiāng))和維西縣(其宗鎮(zhèn)、塔城鎮(zhèn)、攀天閣鄉(xiāng)和永春鄉(xiāng))。根據(jù)鄉(xiāng)(鎮(zhèn))行政區(qū)劃及資源的地理分布情況,將其劃分成5個群體進行分析,其中玉龍縣和德欽縣各為1個群體(YL和DQ),維西縣的4個鄉(xiāng)(鎮(zhèn))主要按照地理距離和資源分布及數(shù)量情況劃分成3個群體,其宗鎮(zhèn)和塔城鎮(zhèn)地理距離較小,劃為1個群體(QZ),地理距離相對較大的攀天閣鄉(xiāng)和永春鄉(xiāng)分別各為1個群體(PTG和YC),資源和群體的相關信息列于表1。CTAB、TEMED、2×ES Taq Master Mix、DNA Marker、Loading Buffer、Taq Polymerase等DNA提取及PCR試劑購自北京康為世紀生物科技有限公司;引物委托昆明碩擎生物工程有限公司合成。主要儀器設備:Bio-Rad公司的PCR擴增儀和凝膠成像儀,Thermo NanoDrop 2000超微量分光光度計及低溫高速離心機(Eppendorf A G)。
1. 2 試驗方法
1. 2. 1 基因組DNA提取 采用楊恩等(2005)的方法提取核桃葉片DNA,分別以瓊脂糖凝膠電泳和紫外分光光度計檢測DNA樣品的濃度和純度,將符合純度要求的樣品稀釋至20 ng/μL,-20 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1. 2. 2 PCR擴增及產(chǎn)物檢測 SSR-PCR反應體系參照陳少瑜等(2017)的方法,用篩選出的19對SSR引物進行SSR擴增,引物信息參見肖良俊等(2018)。毛細管電泳參照Chen等(2014)的方法。
1. 3 統(tǒng)計分析
根據(jù)擴增片段大小將每對引物的電泳結果依次記為A1~Ai,Ai為第i個等位片段,用Excel 2007統(tǒng)計分析各引物擴增的等位片段種類和數(shù)量、Ai的百分率及Ai在各群體中的分布頻率。
用GenAIEx 6.5計算等位基因數(shù);用POPGENE version 1.32(Yeh et al.,1997)計算各群體多態(tài)位點百分率(PPB)、觀察等位基因數(shù)(Na)、有效等位基因數(shù)(Ne)、觀察雜合度(Ho)、期望雜合度(He)、Shannon’s信息指數(shù)(I)和Nei’s基因多樣性指數(shù)(H)。
2 結果與分析
2. 1 SSR擴增產(chǎn)物的多態(tài)性
圖1為引物CUJRA123對92~95號資源擴增產(chǎn)物的毛細管電泳圖譜。由表2可知,19對引物共檢測到130個等位片段,每對引物平均擴增6.84個,片段大小在82~248 bp。19對引物擴增的等位片段數(shù)存在差異,其中擴增出的等位片段數(shù)最多(15個)的引物為CUJRB103a,其次是引物CUJRA206a(13個),CUJRD204a、JH3753、JSI-15和JSI-63等4對引物擴增的等位片段數(shù)最少(各3個)。由表3還可看出,130個等位片段在153份樣本中出現(xiàn)的頻率各不相同,其中片段A122出現(xiàn)的頻率最高,達0.8301,其次是A120,為0.8125;頻率最低的僅為0.0033,共有14個,占總數(shù)的10.77%。
2. 2 等位片段的分布特征
2. 2. 1 各群體等位片段的總體狀況 由表4可見,QZ群體的等位片段數(shù)量最多(共111個),占總數(shù)的85.38%;其次是YL群體(99個),占總數(shù)的76.15%;TD群體的等位片段數(shù)量最少(92個),占總數(shù)的70.70%。14個稀有片段中有6個出現(xiàn)在PTG群體中,占稀有等位片段比例最高(42.86%),其次是TD群體中出現(xiàn)3個,占稀有等位片段比例為21.43%,YC群體出現(xiàn)1個,僅占7.14%。
2. 2. 2 等位片段在5個群體中的分布及頻率 130個等位片段在5個群體中的分布及頻率各不相同(圖2)。總體上,5個群體中高頻率片段主要出現(xiàn)在A75~A130,其中5個群體出現(xiàn)頻率皆大于0.5000的片段有4個(A1、A75、A120和A122)。值得關注的是A120和A122在5個群體中的分布頻率分別高于0.7600和0.7400,兩個等位片段在TD群體中高達0.9062。
2. 3 群體遺傳多樣性狀況
表5為5個群體的遺傳多樣性參數(shù)及總體水平。由表5可看出,5個群體的Ne、He、I和H的平均值分別為2.8944、0.6165、1.1709和0.6046。5個群體的遺傳多樣性參數(shù)各不相同,其中QZ群體的Ne、He、I和H在5個群體中最高(分別為3.2135、0.6405、1.2766和0.6347);TD群體的以上各參數(shù)最低(分別為2.7444、0.5920、1.0994和0.5828)。說明三江并流區(qū)金沙江流域5個核桃群體中QZ群體的遺傳多樣性相對較高,TD群體的遺傳多樣性相對較低。
3 討論
位點多態(tài)性能反映群體的遺傳多樣性或基因庫的豐富程度。H、I和He是反映群體遺傳多樣性的重要指標,其中He不僅可衡量群體的遺傳多樣性狀況,還能反映群體中等位基因的豐富度和均勻度(王滑等,2007;黃勇,2013)。本研究中,153份資源擴增出的等位片段總數(shù)為130個,5個群體擴增片段的數(shù)量占擴增片段總數(shù)的比例在70.70%~85.38%;H、I和He 3個遺傳參數(shù)的平均值分別為0.6046、1.1709和0.6165,與采用SSR分子標記對核桃的相關研究(表6)進行比較,結果發(fā)現(xiàn)三江并流區(qū)金沙江流域核桃種質資源的遺傳多樣性屬于中等水平。
對于某一樹種的基因保存和優(yōu)樹選擇來說,準確估算其在分布區(qū)的遺傳多樣性具有重要意義(廖柏勇等,2016),因此非常有必要掌握多樣性在區(qū)域內的分布格局及分布特征。本研究中的5個核桃群體,其遺傳多樣性分布排序依次為QZ>YL>PTG>YC>TD,其中QZ群體的遺傳多樣性最高,可能與該群體的地理位置、樣品數(shù)量、樣品分布范圍(涵蓋其宗鎮(zhèn)和塔城鎮(zhèn))、人為影響的程度相關,在遺傳資源保存和選育時應給予注重。
遺傳多樣性水平及其分布格局受繁育系統(tǒng)、遺傳漂變、基因突變、基因流等內因及環(huán)境變化和人為干擾造成的群體隔離、生境片段化等外因的影響(文亞峰等,2010)。研究區(qū)域復雜的地形地貌和多樣氣候環(huán)境是維持該區(qū)域核桃種質資源多樣性的主要原因,而核桃特有的繁育系統(tǒng)(同株異花、雌雄異熟的風媒傳粉)及長期的自然雜交導致核桃群體高度雜合是桃種質資源遺傳多樣性較豐富的另一個主要原因。然而,核桃的風媒傳粉距離有限、野生資源砍伐及生境破壞形成的片段化導致其多樣性降低。在資源調查中發(fā)現(xiàn),許多核桃野生資源由于土地的開發(fā)被砍伐,其生境因人為活動被破壞。綜合因素的作用導致研究區(qū)域核桃種質資源遺傳多樣性僅處于中等水平。
對等位片段及頻率分布特征的分析結果顯示,130個等位片段中A120和A122出現(xiàn)的頻率較高(大于0.7000)、頻率很低的稀有片段(僅0.0033)有14個,且每個稀有片段為各群體所特有。其中值得關注的是TD群體,盡管此群體的遺傳多樣性在5個群體中最低,但其A120和A122片段的頻率高達0.9062,稀有片段占稀有片段總數(shù)的比例也達21.43%,其次是PTG群體,稀有片段占稀有片段總數(shù)的42.86%。等位片段的多態(tài)性及頻率分布特征,不僅能反映群體的遺傳多樣性狀況,還可為進一步探索片段差異與相應表型多態(tài)性的關系打下基礎。因此,本研究獲得的結果,尤其以上16個等位片段及分布特征將為進一步開展片段差異與表型多態(tài)性關系的研究及特異分子標記的開發(fā)、優(yōu)異資源的挖掘和鑒定提供有益信息。
4 結論
本研究以19對SSR引物檢測三江并流區(qū)金沙江流域5個群體共153份云南核桃種質資源的遺傳多樣性,結果表明種質資源的遺傳多樣性整體上處于中等水平,其中QZ群體的多樣性最高,TD群體最低;在130個等位片段中有2個片段頻率較高、14個片段的頻率很低。應采取積極的措施加強對該區(qū)域核桃資源的保護和開發(fā)利用,尤其是對于野生資源的保護和利用。在優(yōu)先保護現(xiàn)有群體的基礎上,加強對遺傳多樣性高的群體(QZ群體)的保護和選擇,尤其應結合表型性狀及稀有片段頻率的分布特征(TD和PTG群體),側重于群體內單株的選擇,以更有助于保存和利用該區(qū)域核桃種質資源的多樣性和特異性。
參考文獻:
陳少瑜,寧德魯,吳濤,肖良俊,林紅丁,朱云鳳,賀娜,潘莉. 2017. 泡核桃SSR標記開發(fā)及在遺傳多樣性研究中的應用[J]. 西北林學院學報,32(3):91-96. [Chen S Y,Ning D L,Wu T,Xiao L J,Lin H D,Zhu Y F,He N,Pan L. 2017. Development of SSR markers in Juglans sigillata and its application in genetic analysis[J]. Journal of Northwest Forestry University,32(3):91-96.]
郝艷賓,黃武剛,王克建,齊建勛,續(xù)九如. 2007. 我國核桃組(Sect. Juglans)種質資源的SSR標記分析[J]. 果樹學報,24(5):620-625. [Hao Y B,Huang W G,Wang K J,Qi J X,Xu J R. 2007. Analysis of Sect. Juglans germplasm in China by using SSR marker[J]. Journal of Fruit Science,24(5):620-625.]
黃勇. 2013. 基于SRAP分子標記的小果油茶遺傳多樣性分析[J]. 林業(yè)科學,49(3):43-50. [Huang Y. 2013. Analysis of Camellia meiocarpa genetic diversity based on SRAP markers[J]. Scientia Silvae Sinicae,49(3):43-50.]
廖柏勇,王芳,陳麗君,劉明騫,歐陽昆唏,闕青敏,惠文凱,李培,陳曉陽. 2016. 基于SRAP分子標記的苦楝種質資源遺傳多樣性分析[J]. 林業(yè)科學,52(4):48-58. [Liao B Y,Wang F,Chen L J,Liu M Q,Ouyang K X,Que Q M,Hui W K,Li P,Chen X Y. 2016. Genetic diversity of germplasm resources of Melia azedarach revealed by SRAP markers[J]. Scientia Silvae Sinicae,52(4):48-58.]
劉曉麗,陳學森,張美勇,陳曉流,何天明,張立杰,張春雨. 2008. 普通核桃(Juglans regia)3個群體遺傳結構的SSR分析[J]. 果樹學報,25(4):526-530. [Liu X L,Chen X S,Zhang M Y,Chen X L,He T M,Zhang L J,Zhang C Y. 2008. Population genetic structure analysis of Juglans regia using SSR markers[J]. Journal of Fruit Science,25(4):526-530.]
歐光龍,彭明春,王崇云,向伶. 2013. 三江并流區(qū)云南貢山片植被景觀類型分布特征[J] . 山地學報,31((4):464-472. [Ou G L,Peng M C,Wang C Y,Xiang L. 2013. Distribution of vegetation landscape in Gongshan County of Yunnan Province,the core area of the Three Parallel rivers Belt[J]. Journal of Mountain Science,31(4):464-472.]
彭少兵,張貝貝,王娟,李生萍,強虹. 2017. 利用SSR技術對安康串狀核桃親緣關系分析研究[J]. 西北林學院學報,32(1):126-130. [Peng S B,Zhang B B,Wang J,Li S P,Qiang H. 2017. Genetic relationship of a Juglans regia cultivar ‘Ankangchuan’ with SSR technique[J]. Journal of Northwest Forestry University,32(1):126-130.]
王滑,郝俊民,王寶慶,裴東. 2007. 中國核桃8個天然居群遺傳多樣性分析[J]. 林業(yè)科學,43(7):120-124. [Wang H,Hao J M,Wang B Q,Pei D. 2007. SSR analysis of genetic diversity of eight natural walnut populations in China[J]. Scientia Silvae Sinieae,43(7):120-124.]
王滑,閻亞波,張俊佩,裴東. 2009. 應用ITS序列及SSR標記分析核桃與鐵核桃親緣關系[J]. 南京林業(yè)大學學報(自然科學版),33(6):35-38. [Wang H,Yan Y B,Zhang J P,Pei D. 2009. Application of ITS sequence and SSR mar-kers to study the relationship between Juglans regia and Juglans sigillata[J]. Journal of Nanjing Forestry University(Natural Science Edition),33(6):35-38.]
文亞峰,韓文軍,吳順. 2010. 植物遺傳多樣性及其影響因素[J]. 中南林業(yè)科技大學學報,30(12):80-87. [Wen Y F,Han W J,Wu S. 2010. Plant genetic diversity and its influencing factors[J]. Journal of Central South University of Forestry & Technology,30 (12):80-87.]
肖良俊,陳少瑜,寧德魯,吳濤,賀娜. 2018. 滇西北深紋核桃(Juglans sigillata)種質資源遺傳多樣性研究[J]. 云南農(nóng)業(yè)大學學報(自然科學),33(4):597-604. [Xiao L J,Chen S Y,Ning D L,Wu T,He N. 2018. Study on the genetic diversity of germplasm resources of Juglans sigillata in Northwest Yunnan[J]. Journal of Yunnan Agricultural University (Natural Science),33(4):597-604.]
徐永杰,韓華柏,王滑,陳凌娜,馬慶國,裴東. 2016. 大巴山區(qū)核桃實生居群的堅果表型和遺傳多樣性[J]. 林業(yè)科學,52(5):111-118. [Xu Y J,Han H B,Wang H,Chen L N,Ma Q G,Pei D. 2016. Phenotypic and genetic diversities of nuts of Walnut(Juglans regia)populations originated from seedlings in Daba Mountains[J]. Scientia Silvae Sinicae,52(5):111-118.]
楊恩,陳少瑜,張雨,范志遠,習學良. 2005. 漾濞核桃葉片基因組DNA的兩種提取方法效果比較[J]. 西部林業(yè)科學,34(4):72-75. [Yang E,Chen S Y,Zhang Y,F(xiàn)an Z Y,Xi X L. 2005. Comparison on effect between two methods of DNA extraction from leaves of Juglans sigillata[J]. Journal of West China Forestry Science,34(4):72-75.]
Agarwal M,Shrivatava N,Padh H. 2008. Advances in mole-cular marker techniques and their applications in plant sciences[J]. Plant Cell Reports,27(4):617-631.
Chen L N,Ma Q G,Chen Y K,Wang B Q,Pei D. 2014. Identification of major walnut cultivars grown in China based on nut phenotypes and SSR markers[J]. Scientia Horticulturae,168:240-248.
Dangel G S,Woeste K,Aradhya M K,Koehmstedt A,Simon C,Potter D,Leslie C A,McGranahan G. 2005. Characte-rization of 14 microsatellite markers for genetic analysis and cultivar identification of walnut[J]. Journal of Ame-rican Society for Horticultural Science,130(3):348-354.
Guichoux E,Lagache L,Wagner S,Chaumeil P,Leger P,Lepais O,Lepoittevin C,Malausa T,Revardel E,Salin F,Petit R J. 2011. Current trends in microsatellite genotyping[J]. Molecular Ecology Resources,11(4):591-611.
Jones A G,Small C M,Paczolt K A ,Ratterman N L. 2010. A practical guide to methods of parentage analysis[J]. Molecular Ecology Resources,10(1):6-30.
Kelkar Y D,Strubczewski N,Hile S E,Chiaromonte F,Eckert K A,Makova K D. 2010. What is a microsatellite:A computational and experimental definition based upon repeat mutational behavior at A/T and GT/AC repeats[J]. Genome Biology and Evolution,2:620-635.
Victory E R,Glaubitz J C,Rhodes O E,Woeste K E. 2006. Genetic homogeneity in Juglans nigra(Juglandaceae)at nuclear microsatellites[J]. American Journal of Botany,93(1):118-126.
Wang H,Pan G,Ma Q G,Zhang J P,Pei D. 2015a. The genetic diversity and introgression of Juglans regia and Juglans sigillata in Tibet as revealed by SSR markers[J]. Tree Genetics & Genomes,11(1):1-11.
Wang H,Pei D,Gu R S,Wang B Q. 2008. Genetic diversity and structure of Walnut populations in central and southwestern China revealed by microsatellite markers[J]. Journal of the American Society for Horticultural Science,133(2):197-203.
Wang H,Wu W B,Pan G,Pei D. 2015b. Analysis of genetic diversity and relationships among 86 Persian walnut (Juglans regia L.)genotypes in Tibet using morphological traits and SSR markers[J]. The Journal of Horticultural Science and Biotechnology,90 (5):563-570.
Yeh F C,Yang R C,Boyle T,Ye Z H,Mao J X. 1997. POPGENE,the user-friendly shareware for population genetic analysis[M]. Molecular Biology and Biotechnology Center,Canada:University of Alberta.
(責任編輯 王 暉)