董蕾
摘要基于聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)技術(shù)的食品溯源和轉(zhuǎn)基因原材料檢測(cè),取決于DNA模板量和品質(zhì)。而在食品加工過程中,溫度、pH值、發(fā)酵、機(jī)械力作用等都會(huì)導(dǎo)致原材料DNA降解,為后續(xù)食品溯源、摻偽檢測(cè)和轉(zhuǎn)基因原料檢測(cè)帶來挑戰(zhàn)。研究發(fā)現(xiàn),雖然加工過程會(huì)導(dǎo)致DNA降解,但加工食品DNA提取后進(jìn)行PCR擴(kuò)增仍可實(shí)現(xiàn)。本文總結(jié)食品加工過程中的溫度、pH值、發(fā)酵、機(jī)械力作用等對(duì)DNA的影響,以期為加工食品溯源、摻偽檢測(cè)和轉(zhuǎn)基因原料檢測(cè)提供理論依據(jù)。
關(guān)鍵詞 食品加工;DNA降解;聚合酶鏈?zhǔn)椒磻?yīng)
中圖分類號(hào) TS201.1
文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼 A
文章編號(hào) 1007-5739(2019)05-0212-04
隨著分子生物學(xué)技術(shù)的不斷發(fā)展和大量應(yīng)用,以PCR技術(shù)為基礎(chǔ)的食品溯源檢測(cè)摻偽檢測(cè)和GMO成分分析快速發(fā)展,但食品加工過程中的多種因素會(huì)對(duì)原材料DNA造成巨大影響,導(dǎo)致DNA一級(jí)結(jié)構(gòu)被破壞,使DNA水解、氧化或脫氨基1-2,影響PCR的定性或定量檢測(cè),造成檢測(cè)結(jié)果不穩(wěn)定或失敗。同時(shí),加工食品的DNA提取方法也會(huì)影響檢測(cè)結(jié)果。如何最大限度地獲得加工食品中的原料DNA,去除多糖、多酚、蛋白質(zhì)等對(duì)后續(xù)PCR過程的影響或抑制,也成為食品安全分子檢測(cè)的重要考慮因素。
本文總結(jié)了近年來國內(nèi)外針對(duì)加工食品的DNA提取、檢測(cè)及檢測(cè)方法,并進(jìn)行簡(jiǎn)要分析,以期為我國食品安全檢測(cè)、食品溯源和GMO成分分析的進(jìn)一步發(fā)展提供理論參考。
1加工食品DNA提取影響因素
進(jìn)行加工食品檢測(cè)的第一步是提取DNA.DNA的品質(zhì)(數(shù)量、純度)決定后續(xù)檢測(cè)效果。對(duì)于單一原料食品,如豆腐、玉米片等,可以認(rèn)為原料同一,則提取難度降低。但對(duì)于復(fù)合原料食品,如餅干、披薩等,原料的復(fù)雜性會(huì)導(dǎo)致DNA提取難度上升。在這類食品的處理過程中,就需要確定主要檢測(cè)原料,并制訂相應(yīng)提取方案。
一般情況下,加工食品的植物性原材料DNA提取利用CTAB(十六烷基三甲基溴化銨)方法進(jìn)行,該方法具有去除植物性多糖S8和成本低廉的優(yōu)勢(shì)910。另外,也有利用磁珠富集的方式進(jìn)行DNA提取,產(chǎn)物直接進(jìn)行PCR擴(kuò)增"。但由于食品加工過程的許多因素都可以造成DNA降解,導(dǎo)致DNA純度或濃度下降,因而在提取過程中通??紤]這2個(gè)因素的折中方案。表1總結(jié)了前人進(jìn)行食品DNA提取中的優(yōu)化方案,這些方案通過凝膠成像、UV分光光度計(jì)、熒光檢測(cè)、傳統(tǒng)PCR巢式PCR或RT一PCR等方法進(jìn)行驗(yàn)證,獲得最優(yōu)結(jié)果。
食品中存在許多化學(xué)成分,這些化學(xué)成分會(huì)影響DNA的提取。如各種殺菌劑加工過程中物理性質(zhì)或化學(xué)性質(zhì)的改變,使DNA附著在非溶解性物質(zhì)上,降低DNA的抽提效果21-2);氧化劑或酶水解縮短DNA長度!P21加工過程中的一些處理,如加熱冷凍等,也會(huì)降低DNA片段長度,從而改變DNA提取效率。
2DNA的數(shù)量、純度與PCR的關(guān)系
DNA的數(shù)量:與純度決定PCR擴(kuò)增效率。一般通過檢測(cè)DNA片段長度或平均分子量來判斷所提DNA的質(zhì)量,而DNA的質(zhì)量與所檢材料種類、加工過程和DNA提取方法相關(guān)(262)。在轉(zhuǎn)基因食品檢測(cè)中,通過PCR擴(kuò)增目標(biāo)片段(外源基因片段)分析是否為轉(zhuǎn)基因加工食品。
食品基質(zhì)中存在的大量化學(xué)物質(zhì)對(duì)于DNA純度有嚴(yán)重影響。DNA提取過程的選擇和優(yōu)化,可以消除潛在干擾和反應(yīng)抑制物,使基于DNA基礎(chǔ)的檢測(cè)技術(shù)獲得成功80-31。首先,原料自身包含的蛋白質(zhì)、多糖、脂類或多酚可能引起DNA污染25.31-32;其次,提取DNA時(shí)所用的CTABEDTA、酚類氯仿、SDS、乙醇、異丙醇等,都會(huì)干擾Taq酶活性,從而抑制PCR反應(yīng)18.3-31;再次,緩沖液中包含的鹽類、糖類以及其他化合物也會(huì)不同程度地降低PCR反應(yīng)效率35-37。因此,在進(jìn)行加工食品PCR擴(kuò)增時(shí),往往需要稀釋DNA提取液,通過降低干擾物的濃度來提高PCR反應(yīng)效率陽通過分光光度計(jì)進(jìn)行DNA純度檢測(cè),確定在230、260、280nm處的吸光值,計(jì)算A2xo/A280和Azo/A20當(dāng)A20/A280吸收值為1.5~2.0、A206A20超過1.7時(shí),所提取DNA適用于PCR反應(yīng)839。眾多研究發(fā)現(xiàn),用于PCR的樣品需要DNA的數(shù)量在20~200ng之1間4.31.4042,濃度過高影響反應(yīng)效率明,而過低則容易導(dǎo)致擴(kuò)增失敗。
加工食品中往往包含多種原材料,并且經(jīng)過多重工序。由于原材料的特性不同,就會(huì)影響DNA的提取效率。對(duì)于不同食品,往往無法適用一種或幾種通用的提取方法,需要根據(jù)不同材料優(yōu)化不同提取過程。
3目標(biāo)片斷選擇和引物設(shè)計(jì)與PCR的關(guān)系
提取DNA是為了進(jìn)行后續(xù)的PCR檢測(cè)。普通PCR是使用最普遍的一種分子檢測(cè)手段。一般認(rèn)為,普通PCR作為一種定性分析手段,對(duì)目標(biāo)片段有很好的擴(kuò)增性。表2總結(jié)了大豆轉(zhuǎn)基因食品PCR評(píng)估DNA方法。另外,在小麥146-48]、精煉菜籽油149、馬鈴薯加工23.50-54等加工食品的研究中也常用普通PCR進(jìn)行。
與其他材料的PCR過程相似,加工食品DNA檢測(cè)的PCR過程,其引物序列、引物濃度、酶體系大小和程序設(shè)定都會(huì)對(duì)檢測(cè)結(jié)果有重要影響。而由于加工食品的DNA隨著加工步驟的不斷進(jìn)行已經(jīng)出現(xiàn)不同程度的降解,終產(chǎn)品的目標(biāo)片段長度往往僅有100~300bp,因而目標(biāo)片段選擇和弓物設(shè)計(jì)至關(guān)重要。
4加工過程對(duì)原材料DNA的影響
加工過程種類繁多,溫度、pH值、微生物發(fā)酵等均對(duì)食品原材料的DNA有影響,不同材料對(duì)于不同的加工過程也會(huì)有不同的降解效率,從而影響后續(xù)PCR反應(yīng)1586-9)。因此,了解不同加工過程對(duì)不同原料DNA的影響十分關(guān)鍵。
4.1溫度
高溫容易使DNA發(fā)生物理降解,即變性,其作用機(jī)理是高溫引起DNA的脫氨基或脫嘌呤作用。雖然高于100C會(huì)導(dǎo)致DNA鏈斷裂,二級(jí)結(jié)果被破壞5961,但高溫滅菌或灌制時(shí)使用121C進(jìn)行15min處理并不會(huì)導(dǎo)致全部DNA破壞。因此,這種加工過程處理后的食品,進(jìn)行DNA有效提取后仍可進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng)40但如果再有后續(xù)的烹煮、烘烤、干燥等加熱過程,會(huì)5|起DNA的進(jìn)一步降解,而這些過程會(huì)導(dǎo)致DNA被切斷成小片段,使PCR效率降低。
4.1.1干熱加工。高溫伴隨干燥過程對(duì)DNA影響很大。在薯片制作過程中,70C、2h烘干會(huì)導(dǎo)致馬鈴薯DNA降解!21。而溫度越高,DNA的降解速率越快。94C、5min烘烤玉米過程就會(huì)導(dǎo)致玉米DNA577bp大小的片段全部消失;同時(shí),研究人員發(fā)現(xiàn),在玉米片加工過程中1009C烘烤會(huì)導(dǎo)致玉米基因組DNA降解7,但大部分經(jīng)過烘烤加工的食品中仍有小分子片段存在,使PCR擴(kuò)增成為可能。
4.1.2濕熱加工。Ogasawara等6對(duì)比利用千豆和濕豆制作豆奶制品的過程,同樣是100C60min以上的處理,千豆DNA未出現(xiàn)明顯的改變,而濕豆的830bp和1022bp片段都發(fā)生嚴(yán)重降解。加熱DNA溶液是影響DNA片段最簡(jiǎn)便的方法(通過改變時(shí)間和溫度).Hupfer等I62發(fā)現(xiàn),95C60min后,DNA片段長度損失600bp以上。同樣,Debode等網(wǎng)發(fā)現(xiàn),在99C7h烹煮后,DNA平均片段仍保持在400bp。微波處理0~15min800W條件下,每次保持最長時(shí)間(15min)3次,中間冷卻,會(huì)導(dǎo)致DNA嚴(yán)重降解,但DNA片段大小仍大于目標(biāo)片段。
煮沸過程中添加化學(xué)成分也會(huì)增加DNA的損失。在玉米粉制作過程中,添加1%石灰粉煮沸20min,這一聯(lián)合效果使DNA片段降解到585bp以下。但后續(xù)沉降蛋白質(zhì)所加人酸和氯化鈣并不會(huì)導(dǎo)致DNA進(jìn)一步降解19但在豆腐制作過程中,酸和CaCl的添加并未影響目標(biāo)595bp大片段的擴(kuò)增61。在polenta(一種玉米淀粉制作的粥狀食物)制作過程中,玉米面粉溶解在0.4%氯化鈉溶液中30min煮沸,1914bp片段消失,然而211bp片段在105min加熱后仍可檢測(cè)到6。這些結(jié)果均顯示,水煮加熱時(shí)間越長,對(duì)片段的降解程度越高。
4.1.3油炸。在薯片的加工過程中,植物DNA在175C3min和150C1min下嚴(yán)重降解,只有96bp片段能夠被擴(kuò)增(終產(chǎn)品中)8。然而在油豆腐中,175C對(duì)其影響比較小,595bp擴(kuò)然增仍然能陂擴(kuò)增161。另外,對(duì)比油炸濕masa和烤干masa,油炸濕masa降解較低,表明水分的存在緩沖了油炸的熱沖擊。
4.2pH值
4.2.1酸性環(huán)境。水果或蔬菜的汁液通常均為酸性環(huán)境,或處理過程中環(huán)境為酸性。如番茄汁,pH值在4.0~4.4之間網(wǎng)。DNA在酸性環(huán)境下,純度下降,同時(shí)導(dǎo)致DNA斷裂網(wǎng)。在酸性環(huán)境下,輔以熱處理也會(huì)加速酸催化反應(yīng)66.70,BauerT等發(fā)現(xiàn),在番茄醬制作過程中,pH值為4.3、溫度為65C時(shí)會(huì)導(dǎo)致DNA快速降解,在面粉發(fā)酵過程中,由于酵母菌發(fā)酵降低面團(tuán)pH值,使小麥DNA出現(xiàn)酸降解現(xiàn)象1-7)。濕磨玉米(酸性環(huán)境下浸泡)比單獨(dú)濕磨玉米更容易使DNA降解7。4.2.2堿性環(huán)境。相比酸性環(huán)境,DNA在堿性環(huán)境下穩(wěn)定性較高。pH值為8.5~9.5之間時(shí),DNA雙螺旋結(jié)構(gòu)解鏈但并不會(huì)斷裂6。在墨西哥卷餅制作的最初階段,需要添加pH值較高的溶液同時(shí)加熱,形成pH值為11.0的加熱水溶液,這一過程導(dǎo)致DNA降解。在墨西哥,許多食物(如trilla,玉米片、tacoshells)均需要這種堿性溶液加熱處理。Kharazmi等發(fā)現(xiàn),585bp片段擴(kuò)增失?。?0),但Hupfer卻發(fā)現(xiàn),pH值9.0加熱60min,仍能夠檢測(cè)到1914bp片段大小DNA。
4.3發(fā)酵
在發(fā)酵過程中,由于微生物以食品原材料為原料進(jìn)行消化代謝,所產(chǎn)生的DNA酶對(duì)DNA有強(qiáng)烈降解效果[64]。Pan等叫發(fā)現(xiàn),miso(日本豆面醬)的制作過程中經(jīng)過120d的發(fā)酵后,35S啟動(dòng)子無法檢測(cè)到。發(fā)酵結(jié)束放置5~6個(gè)月的miso中,DNA片段降解到200bp以下67。通過普通PCR和巢式PCR,可以檢測(cè)到95bp大小的DNA片段。因此,巢式PCR技術(shù)對(duì)于降解成小片段的DNA有更好的擴(kuò)增效果。
4.4機(jī)械力作用
在食品加工過程中,物理作用(如打磨、壓榨)也會(huì)使DNA原始片段出現(xiàn)斷裂。尤其在豆類加工制品、各種面粉的制作過程中,打磨是最基礎(chǔ)、最初的步驟,這些物理作用力將DNA降解成小片段,破壞DNA結(jié)構(gòu)。
對(duì)預(yù)包裝食品往往進(jìn)行輻照滅菌,以延長其貨架期。輻照射線也會(huì)對(duì)食品中的DNA產(chǎn)生強(qiáng)烈影響。Villavicencio等叫對(duì)豆粕制品施以1000Gy強(qiáng)度的輻照,DNA的破壞程度與輻照強(qiáng)度成正比。
5結(jié)論與展望
食品加工過程中的許多過程都會(huì)影響DNA的各級(jí)結(jié)構(gòu)。其中高溫和酸度是破壞DNA結(jié)構(gòu)的最主要因素。隨著PCR技術(shù)的不斷發(fā)展,利用各種變異型的PCR技術(shù)(如熒光定量PCR、巢式PCR技術(shù)等),使被降解為小分子的DNA片段檢測(cè)成為可能。但為了提高檢測(cè)的成功率和靈敏性,目標(biāo)片段的選擇成為關(guān)鍵因素。
由于人們對(duì)食品安全的關(guān)注度越來越高,食品摻偽、溯源和GMO檢測(cè)成為食品安全檢測(cè)的重要發(fā)展方向,利用分子生物學(xué)手段進(jìn)行原料檢測(cè),使食品安全檢測(cè)更加快速、準(zhǔn)確。但由于食品加工過程中的各種過程會(huì)對(duì)原材料DNA分子造成破壞。因此,了解各種加工過程對(duì)DNA的影響,尤其是常見的、重要的加工過程,對(duì)于不同食品原料的影響,在產(chǎn)品溯源和GMO檢測(cè)時(shí)顯得非常關(guān)鍵。
未來,在食品原材料的分子檢測(cè)中,最應(yīng)關(guān)注的是小目標(biāo)片段的篩選以及針對(duì)不同食品建立特異性強(qiáng)的目標(biāo)片段及對(duì)應(yīng)引物體系,檢測(cè)確定在加工過程中各食品原材料的更穩(wěn)定基因,同時(shí)結(jié)合近年來發(fā)展起來的蛋白組學(xué)轉(zhuǎn)錄組學(xué)和核酸適配體等技術(shù),為食品安全檢測(cè)提供更加便捷、準(zhǔn)確的方法革新。
6參考文獻(xiàn)
[1] MEYER R.Development and application of DNA analytical methods for?the detection of GMOs in food[J].Food Control, 1999, 10(6):319- 399.
[2] KHARAZMI M, BAUER T, HAMMES W P,et al.Effect of food proces -?sing on the fate of DNA with regard to degradation and transformationcapability in Bacillus subilis[J].Syst Appl Microbiol , 2003 , 26(4) :495-501
[3] LIPP M, SHILLITO R , GIROUX R,et al.Polymerase chain reaction tech-?nology as analytical tool in agricultural biotechnology[J].AOAC Int,2005,88(1):136-155.
[4] CANKAR K, STEBIH D, DREO T, et al.Critical points of DNA quanti-?fication by real-time PCR- effects of DNA extraction method and samplematrix on quantification of genetically modified organisms[J].BMC Biotech,2006 , 6:37.
[5] ANKLAM E,GADANI F, HEINZE P,et al.Analytical methods for detec-?tion and determination of genetically modified organisms in agriculturalcrops and plantderived food products[J.Eur Food Res Technol ,2002,214:3- -26.
[6] ISO 21571.Foodstuffs-Methods of analysis for the detection of genetically?modified organisms and derived products-nucleicacid extraction[S].Int-ernational Standard ISO 21571.ISO, Geneva, lstedition, 2005 ,43.
[7] GR YSON N, MESSENS K, DEWETTINCK K.Evaluation and optimisation?of five different extraction methods for soy DNA inchocolate and biscuits.Extraction of DNA as a first step in GMO analysis[J].Sci Food Agric ,2004, 84(11):1357- 1363.
[8]OLEXOVA L,DOVI 0VI OVA L, KUCHTA T.Comparison of three types?of methods for the isolation of DNA from flours , biscuits and instantpaps[J].Eur Food Res Technol, 2004 ,218:390- 393.
[9] ZIMMERMAN A, L0THY J, PAULI U.Quantitative and qualitative eval-?uation of nine different extraction methods fornucleic acids on soya beanfood samples[J].Lebensm UntersForsch, 1998 , 207(2):81-90.
[10] KAKIHARA Y ,MATSUFUJI H, CHINO M,et al.Extractionand detect-ion of endogenous soybean DNA from fermented foods[J].Food Control,2006, 17(10):808- -813.
[11] WEIGHARDT F.GMO quantification in processed food?and feed[J].NatBiotechnol , 2007 ,25:1213- 1214.
[12] LIPP M.IUPAC collaborative trial study of a method to detect genetically?modified soy beans and maize in dried powder[J].Food Composition andAdditives, 1999. 82(4):923- 928.
[13] DI BERNARDO G, GALDERISI U,CIPOLLARO M , et al.Methods to i-?mprove the yield and quality from dried and processed figs[J].BiotechnolPro.2005,21:546- -549.
[14] YAMAGUCHI H,SASAKI K, KIDACHI Y ,et al.Detection of recombin-?ant DNA in genetically modified soybeans and tofu[J]Jpn J Food Chem,2000,7:112-116.
[15] GRYSON N,DEW ETTINCK K , MESSENS K.Influence of cocoacompo -?nents on the PCR detection of soy lecithin[J].Eur Food Res Technol,2007 ,226:247-254.
[16] SMITH DS, MAXWELL PW.Use of quantitative PCR toevaluate several?methods for extracting DNA from corn flourand cornstarch[J].Food Con-trol, 2007, 18:236 -242.
[17] DI BERNARDO G,DEL GAUDIO S,GALDERISI U,et al.Comparative?evaluation of different DNA extraction procedures from food samples[J].Biotechnol Prog 2007 ,23:297-301.
[18] ZIMMERMAN A,L0THY J,PAULI U.Quantitative andqualitative eva-?luation of nine different extraction methods fornucleic acids on soyabean food samples[J].Lebensm UntersForsch, 1998 , 207(2):81-90.
[19] CANKAR K,STEBIH D, DREO T,et al.Criticalpoints of DNA quanti-?fication by real-time PCR -effects of DNA extraction method and sam-ple matrix on quantification ofgenetically modified organisms [J].BMCBiot- -ech 2006 , 6:37.
[20] QUIRASCO M , SCHOEL B, PLASENCIA J,et al.Suitability of real-ti-?me quantitative polymerase chain reactionand enzyme -linked immuno-sorbent assay for ery9C detection in Mexican corn tortillas: Fate of DNAand protein after alkaline cooking[J].AOAC Int , 2004,87(3):639- -646.
[21] BAUER T, HAMMES W P, HAASE N U,et al.ffct of food components?and processing parameters on DNA degradation in food[J].Environ Bio-safety Res, 2004,3:215- -223.
[22] MURRAY S R, BUTLER R C,HARDACRE A K,et al.Use of quanti-?tative real-time PCR to estimate maizeendogenous DNA degradation aftercooking and extrusion or infood products[J].Agric Food Chem 2007,55:223 I -2239.
[23] MEYER R.Development and application of DNA analyticalmethods for?the detection of GMOs in food[J].Food Control, 1999, 10(6):391-399.[24] BOYCE 0, BURKE G, HENEHAN G.Detecting geneticallymodified fo-ods[J].Food Sci Technol Today, 1998, 12:213-216.
[25] ANKLAM E,GADANI F, HEINZE P,et al.Analytical methods for dete-?ction and determination of genetically modified organisms in agriculturalcrops and plantderived food products[JEur Food Res Technol,2002 ,214: 3- 26.
[26] HEMMER W .Foods derived from genetically modified organisms and?detection methods[Z].Agency for Biosafety Researchand Assessment ofTechnology Impacts of the Swiss PriorityProgramme Biotechnology ofthe Swiss Science Foundation( BATS), 1997.
[27] MEYER R, CANDRIAN U.PCR -based DNA analysis for theidenti -?fication and characterization of food components[J].Lebensm Wiss Tec-hnol, 1996,29:1-9.
[28] VAN HOEF AMA, KOK EJ, BOUW E,et al.Development and applica-?tion of a selective detection method forgenetically modified soy and soy-derived products[J].Food AdditContam, 1998, 15 :767-774.
[29] KUIPER H A.Summary report of the ILSI Europe workshopon detection?methods for novel foods derived from geneticallymodified organisms[J]. Food Control , 1999, 10:339- 349.
[30] ROSSEN L, NORSKOV P, HOLMSTROM K , et al.Inhibition of PCR by?components of food samples , microbialdiagnostic assays and DNA-extraction solutions[J.Int J FoodMicrobiol ,1992, 17:37-45.
[31] TINKER N A, FORTIN M G, MATHER D E.Random amplifiedpolymo-?rphic DNA and pedigree relationships in spring barley[J].Theor ApplGenet, 1993,85:976- 984.
[32] ZIMMERMAN A,LUTHY J,PAULI U.Quantitative andqualitative eva-?luation of nine different extraction methods fornucleic acids on soyabean food samples[J].Lebensm Unters Forsch, 1998 ,207(2):81-90.
[33] WILSON I G.Inhibition and faciltation of nucleic acidamplification[J].Appl Environ Microbiol, 1997 ,63( 10):3741-375110.
[34] HAMMES W P, HERTEL C.Mit Hilfe der Gentechnik erzeugte Lebens-?mittel : Novel foods und die problematik ihres nachweises [J].Biol Uns-erer Zeit, 1995 ,25:246- -255.
[35] MATSUOKA T, KURIBARA H,et al.A multiplex PCR method of dete- cting recombinant DNAs from five lines ofgenetically modified maize[J].Food Hygienic Soc Japan ,2001 ,42:24 -32.
[36] Joint Research Centre(2005) In:QUERCI M, JERMINI M, VAN DEN- EEDE G(eds) Users manual -Training course on the analysis offood andfeed samples for the presence of genetically modifiedorganisms[J].Ispra,Italy , 2005.
[37] LIPP M, BRODMANN P, PIETSCH P,et al.IUPAC collaborative trial study of a method to detect geneticallymodified soy beans and maize indried powder[J].AOAC Int, 1992, 82(4):923- 928.
[38] KNIGHT A.Detecting genetically modified raw materials [J].ManufactConfect , 2000, 80(5):51-62.
[39] KAY S,VAN DEN EEDE G.The limits of GMO detection.Nat Biotec -hnol , 2001 , 19:405
[40] HUBNER P, WAIBLINGER H U, PIETSCH K,et al.Validation of PCR?methods for quantitation of genetically modified plants in food[J].AOACInt , 2001 , 84(6): 1855-1864.
[41] YOSHIMURA T,KURIBARA H, MATSUOKA T,et al.Applicability of the quantification of genetically modifiedorganisms to foods processedfrom maize and soy[J].Agric Food Chem, 2005 , 53(6):2052-2059.
[42] YOSHIMURA T, KURIBARA H, KODAMA T, et al.Comparative stud-?ies of the quantification ofgenetically modified organisms in foods proc-essed from maizeand soya using trial producing[J].Agric Food Chem,2005,53:2060 -2069.