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    松赤枯病病原的快速分子檢測(cè)

    2019-08-01 04:00:06劉應(yīng)高許秀蘭趙景陽李萬艷
    四川林業(yè)科技 2019年3期
    關(guān)鍵詞:多毛云南松針葉

    袁 川,吳 南,劉應(yīng)高,許秀蘭,趙景陽,李萬艷

    (1.廣安市林業(yè)技術(shù)推廣站,四川 廣安 638000;2.四川省林業(yè)有害生物防治協(xié)會(huì),四川 成都 610081;3.四川農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院, 四川 成都 611130)

    由枯斑擬盤多毛孢(PestalotiapsisfunereaDesm.)引起的松赤枯病是松樹幼齡林上常見的病害,分布廣、危害嚴(yán)重。該病在四川自1974年開始發(fā)生危害,到1980年流行以來,已成為主要針葉林木病害,居林木病害首位[1~4]。目前對(duì)松赤枯病的檢測(cè)主要是在病害表現(xiàn)出一定的癥狀之后,通過癥狀觀察,用組織分離的方法,以“形態(tài)結(jié)構(gòu)特征為主、生理生化、細(xì)胞化學(xué)和生態(tài)特征為輔”的分類原則進(jìn)行鑒定[5],但這種方法耗時(shí)耗材,并且病害表現(xiàn)出癥狀后就已經(jīng)給林木造成危害,不利于病害的早期診斷與防控。

    利用病原菌在rDNA的ITS區(qū)段既具保守性,又在科、屬、種水平上均有序列多態(tài)性,對(duì)ITS區(qū)進(jìn)行PCR擴(kuò)增、測(cè)序及序列分析后再設(shè)計(jì)特異引物來診斷和檢測(cè)植物病原菌,尤其是植物病原真菌的分子檢測(cè)已越來越被廣泛應(yīng)用[6~8]。依據(jù)真菌種內(nèi)ITS區(qū)保守序列設(shè)計(jì)引物可實(shí)現(xiàn)對(duì)該種真菌在患病植物體內(nèi)的特異性擴(kuò)增。

    本研究為提高松赤枯病的檢測(cè)效率,通過針對(duì)枯斑擬盤多毛孢設(shè)計(jì)特異性引物與待測(cè)松樹基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增反應(yīng),在松赤枯病癥狀出現(xiàn)前檢測(cè)出病原物的有無,為該病害的早期防治提供依據(jù),以達(dá)到提前預(yù)防該病害的目的。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    1.1.1 供試菌株

    供試菌株由四川農(nóng)業(yè)大學(xué)林學(xué)院森林保護(hù)實(shí)驗(yàn)室提供,陽性對(duì)照為枯斑擬盤多毛孢菌株;陰性對(duì)照為星形擬盤多毛孢、散沫擬盤多毛孢、針葉散斑殼、松針散斑殼、尖孢鐮刀菌株。

    表1供試菌株一覽表

    1.1.2 樣本采集與處理

    于2015年9月至2016年8月,對(duì)四川瀘定二郎山林場(chǎng)和成都蒲江縣石象湖馬尾松林中隨機(jī)選擇4—5個(gè)樣地中的高山松(Pinus.densataMast)、華山松(P.armandiiFranch.)、云南松(P.yunnanensisFranch)、馬尾松(P.massoniana)的1年生針葉共計(jì)進(jìn)行9次采樣。采得樣本按葉尖、葉中和葉基分成3段,經(jīng)75%的酒精表面消毒處理后,保存于-70 ℃的冰箱備用。

    1.1.3 試驗(yàn)試劑

    植物基因組DNA提取試劑盒(DP305)、DNA分子量標(biāo)準(zhǔn)DL2000、PCR反應(yīng)試劑(北京天根生化科技有限公司),瓊脂糖(北京賽百勝基因技術(shù)有限公司)。

    1.2 試驗(yàn)儀器

    5804R冷凍離心機(jī)(德國(guó)Eppendorf公司),iCycler-PCR擴(kuò)增儀、Sub-Cell水平電泳儀、Gel DocTM XR凝膠成像系統(tǒng)(美國(guó)BIO-RAD公司),電熱恒溫水浴鍋(天津民利科學(xué)器材廠)。

    1.3 試驗(yàn)方法

    1.3.1 松針基因組DNA和菌絲DNA的提取

    利用天根植物組DNA提取試劑盒提取松針與菌絲基因組DNA,操作步驟見說明書。DNA提取物經(jīng)1.5%瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)完整性后,于紫外分光度計(jì)檢測(cè)濃度,并用buff TE稀釋至終濃度為1 μg·μL-1,-20℃保存待用。

    1.3.2 引物設(shè)計(jì)與合成

    從Genbank庫(kù)中查找下載枯斑擬盤多毛孢的DNA ITS區(qū)序列及同屬其他菌種同源基因,用Clustal進(jìn)行多序列比對(duì),DNA Star根據(jù)差異位點(diǎn)進(jìn)行引物設(shè)計(jì)。設(shè)計(jì)出AF,GQ-1,GQ-2,GQ-3四對(duì)引物。委托北京六合華大基因科技股份有限公司進(jìn)行引物AF,GQ-1,GQ-2,GQ-3與在已發(fā)表的相關(guān)文獻(xiàn)中選取的3對(duì)引物(ITS4-ITS5[10],LROR-LR5[11],LR3R-LR3[11])的合成。

    表2枯斑擬盤多毛孢菌的7對(duì)PCR引物序列

    1.3.3 rDNA-ITS擴(kuò)增及產(chǎn)物測(cè)序

    以所提松針基因組DNA作為模板,使用1.3.2所設(shè)計(jì)合成的引物對(duì)進(jìn)行PCR擴(kuò)增。反應(yīng)體系50 μL:5μL松針基因組DNA原液,25 μLPremix,上下游引物各2 μL(10 μmol·L-1),用ddH2O補(bǔ)足50 μL。反應(yīng)在iCycler-PCR儀上進(jìn)行,程序?yàn)椋?5 ℃預(yù)變性4 min;95 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,進(jìn)行35個(gè)循環(huán);72 ℃延伸7 min,10 ℃保存[9]。取5 μL PCR產(chǎn)物在1.5%瓊脂糖凝膠100 V下電泳20 min,260 nm紫外燈下觀察并照相。將條帶清晰的PCR產(chǎn)物送往北京六合華大基因科技股份有限公司純化測(cè)序。參考Genbank庫(kù)中枯斑擬盤多毛孢序列并與測(cè)序結(jié)果進(jìn)行blastn比對(duì),以確定擴(kuò)增產(chǎn)物是否為枯斑擬盤多毛孢。

    1.3.4 特異性檢測(cè)

    以枯斑擬盤多毛孢菌株為陽性對(duì)照,星形擬盤多毛孢、散沫擬盤多毛孢、針葉散斑殼、松針散斑殼、尖孢鐮刀菌株為陰性對(duì)照,ddH2O為空白對(duì)照,采用1.3.2所述引物對(duì),按照1.3.3的反應(yīng)體系進(jìn)行特異性檢測(cè)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 引物篩選與擴(kuò)增結(jié)果驗(yàn)證驗(yàn)證

    據(jù)Genbank庫(kù)中枯斑擬盤多毛孢的ITS區(qū)序列,采用DNAStar工具共設(shè)計(jì)引物8對(duì),使用BLAST軟件驗(yàn)證引物特異性,篩選出4對(duì)(AF,GQ-1,GQ-2,GQ-3),在已發(fā)表的相關(guān)文獻(xiàn)中選取引物3對(duì)(ITS4-ITS5[10],LROR-LR5[11],LR3R-LR3[11]),分別對(duì)實(shí)驗(yàn)室保存的枯斑擬盤多毛孢的菌絲DNA進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖1。

    圖1 7對(duì)引物擴(kuò)增枯斑擬盤多毛孢菌絲DNA的電泳圖譜M:DL2000 Marker;1:AF;2:GQ-1;3:GQ-2;4:GQ-3;5:ITS4-ITS5;6:LROR-LR5;7:LR3R-LR3

    從圖1可以看出,引物AF條帶明亮、且無雜帶,滿足特異擴(kuò)增的要求。

    使用引物AF對(duì)枯斑擬盤多毛孢和實(shí)驗(yàn)室存有的已報(bào)道過的其它樹棲真菌菌絲DNA同時(shí)進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖2。

    圖2 AF引物擴(kuò)增幾種樹棲真菌菌絲DNA的電泳圖譜M:DL2000 Marker;1:枯斑擬盤多毛孢;2:CK(空白);3:星形擬盤多毛孢;4:散沫擬盤多毛孢;5:針葉樹散斑殼;6:松針散斑殼;7:尖孢鐮刀菌

    從圖2可以看出,陽性樣品枯斑擬盤多毛孢條帶明亮、且無雜帶,陰性樣品及空白對(duì)照條帶較暗或無條帶,表明引物AF對(duì)枯斑擬盤多毛孢具有較強(qiáng)的特異性。

    2.2 PCR反應(yīng)及電泳結(jié)果

    試驗(yàn)共采樣9次,每次的樣品DNA分別進(jìn)行PCR反應(yīng)及電泳檢測(cè)后,華山松、高山松針葉的電泳圖無條帶,結(jié)果表明,華山松、高山松針葉上全年均沒有檢測(cè)到松赤枯病病原菌。在2016年3月前采集的馬尾松、云南松針葉樣品的電泳圖無條帶,結(jié)果表明,在2016年3月前采集的馬尾松、云南松針葉上均沒有檢測(cè)到松赤枯病病原菌。

    將2016年3月在蒲江石象湖采集的馬尾松針葉DNA,按葉尖、葉中、葉基分別發(fā)生PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖3。

    圖3 馬尾松赤枯病1號(hào)樣地2016年3月檢測(cè)結(jié)果圖M:DL2000 Marker;1-3:松針尖部;4-6:松針中部;7-9:松針基部

    結(jié)果表明,2016年3月在蒲江石象湖采集的馬尾松松針尖部,首先檢測(cè)到侵染針葉的枯斑擬盤多毛孢,而針葉中部、基部均沒有檢測(cè)到枯斑擬盤多毛孢。

    將2016年3月在瀘定二郎山采集的云南松針葉DNA,按葉尖、葉中、葉基分別進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖4。

    圖4 云南松赤枯病2016年3月檢測(cè)結(jié)果圖M:DL2000 Marker;1-3:松針尖部;4-6:松針中部;7-9:松針基部

    結(jié)果表明,2016年3月在瀘定二郎山采集的云南松松針尖部、中部,首先檢測(cè)到侵染針葉的枯斑擬盤但電泳圖譜中針葉中部條帶較暗,無法測(cè)序,而針葉基部沒有檢測(cè)到枯斑擬盤多毛孢。

    將2016年5月在瀘定二郎山采集的云南松針葉DNA,按葉尖、葉中、葉基分別進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖5。

    圖5 云南松赤枯病2016年5月檢測(cè)效果圖M:DL2000 Marker;1-3:松針尖部;4-6:松針中部;7-9:松針基部

    結(jié)果表明,2016年5月在瀘定二郎山采集的侵染云南松的枯斑擬盤多毛孢在其針葉尖部、中部均被檢測(cè)出來,電泳條帶明顯比3月時(shí)更明亮,針葉基部仍沒有檢測(cè)到枯斑擬盤多毛孢。

    將2016年6月在瀘定二郎山采集的云南松針葉DNA,按葉尖、葉中、葉基分別進(jìn)行PCR反應(yīng),反應(yīng)結(jié)果見圖6。

    圖6 云南松赤枯病2016年6月檢測(cè)結(jié)果圖M:DL2000 Marker;1-3:松針尖部;4-6:松針中部;7-9:松針基部

    結(jié)果表明,2016年6月在瀘定二郎山采集的云南松的枯斑擬盤多毛孢在其針葉尖部、中部、基部均被檢測(cè)出來,電泳條帶除針葉基部略暗外,針葉尖部、中部都比較明亮。

    2.3 測(cè)序及序列比對(duì)

    條帶明亮的PCR產(chǎn)物由北京六合華大基因科技股份有限公司測(cè)序,測(cè)序樣品共15個(gè),共得到8條理想的序列,在Genbank中與已注冊(cè)的枯斑擬盤多毛孢序列AF405299.1、GQ412730.1經(jīng)BLAST比對(duì)后[12],相似度均高達(dá)97%~99%,并得到了枯斑擬盤多毛孢的ITS1和ITS2區(qū)序列,可以確定枯斑擬盤多毛孢侵染了馬尾松、云南松針葉。

    3 結(jié)論與討論

    3.1 結(jié)論

    試驗(yàn)表明,根據(jù)Genbank庫(kù)已有的枯斑擬盤多毛孢序列,通過其ITS區(qū)序列設(shè)計(jì)特異性引物,對(duì)松針基因組DNA進(jìn)行PCR擴(kuò)增的方法來檢測(cè)處于潛伏期的枯斑擬盤多毛孢是可行的。使用這種方法可以提前兩個(gè)月檢測(cè)出松赤枯病病原,為病害防治爭(zhēng)取了時(shí)間,同時(shí)也可以為病原真菌大規(guī)模的分類鑒定及分子檢測(cè)工作提供參考。

    3.2 討論

    從2016年3月開始檢測(cè)到枯斑擬盤多毛孢,這是因?yàn)榇藭r(shí)正是枯斑擬盤多毛孢以分生孢子和菌絲體在松樹病葉中越冬完畢,在春季到來氣候適宜時(shí)開始大量生長(zhǎng)傳播[13,14],當(dāng)新生針葉處于速生期,此時(shí)葉表皮細(xì)胞未全部角質(zhì)化,抗逆能力差,病害便相繼發(fā)生[15]。隨著時(shí)間的推移,該菌在針葉上的量也增加,此時(shí)從松針中提取到的枯斑擬盤多毛孢DNA相比之前也大量增加,故檢測(cè)結(jié)果也逐漸明顯。

    實(shí)驗(yàn)最先在松針尖部檢測(cè)到枯斑擬盤多毛孢,可以初步判定該菌先從針葉尖部侵染松針,這是因?yàn)樗舍樇獠肯鄬?duì)中部、基部而言,自然孔口更大,同時(shí)也相對(duì)柔嫩容易受傷,而枯斑擬盤多毛孢侵染松針的時(shí)候,是從自然孔口或傷口侵入[16],所以松針尖部相對(duì)更易被病菌侵染。

    植物病原真菌的檢測(cè)鑒定大多采用傳統(tǒng)方法,即分離培養(yǎng)、顯微鏡觀察形態(tài)及簡(jiǎn)單的生理性狀測(cè)定等,但由于這種以形態(tài)結(jié)構(gòu)為基礎(chǔ)的鑒定方法往往會(huì)受到人為因素和環(huán)境條件干擾,許多子實(shí)體類型經(jīng)常難以獲得,給鑒定工作帶來困難,而且耗時(shí)長(zhǎng)、不適合快速鑒定的要求。而常見的利用ITS序列來檢測(cè)植物真菌病害主要是先分離得到純培養(yǎng)的病原菌菌株,進(jìn)而得到其菌絲DNA,再利用通過引物ITS1和ITS4進(jìn)行PCR反應(yīng),擴(kuò)增出病原菌的ITS區(qū)序列,針對(duì)ITS序列設(shè)計(jì)特異性引物來對(duì)植物真菌病害進(jìn)行分子檢測(cè)[17~19]。本研究立足于前人的研究成果,直接從植物組織中提取植物組織基因組DNA,通過在Genbank庫(kù)中查詢已報(bào)道過的病原菌序列,通過分析該序列并設(shè)計(jì)特異性引物,然后對(duì)整個(gè)植物組織基因組DNA進(jìn)行PCR反應(yīng),擴(kuò)增出植物組織中可能含有的病原菌的ITS序列,達(dá)到檢測(cè)病害的目的。相對(duì)而言,這種方法更省時(shí)、高效,節(jié)約了病害檢測(cè)的時(shí)間和成本,有利于大規(guī)模的推廣應(yīng)用。

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