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    水蛭素對單側(cè)輸尿管梗阻大鼠腎間質(zhì)損傷及MCP-1、ICAM-1的干預(yù)效應(yīng)研究*

    2019-05-25 08:26:10朱鵬宇楊洪濤
    天津中醫(yī)藥 2019年5期
    關(guān)鍵詞:單核水蛭那普利

    任 桐,朱鵬宇,楊洪濤

    (天津中醫(yī)藥大學(xué)第一附屬醫(yī)院,天津 300381)

    腎間質(zhì)纖維化(RIF)屬于腎臟纖維化的一部分,是慢性腎臟?。–KD)進(jìn)展為終末期腎臟病(ESRD)過程中重要的病理過程。在RIF發(fā)生的早期,凝血酶可通過激活腎間質(zhì)內(nèi)毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞表面蛋白酶激活受體(PAR-1),引起腎間質(zhì)內(nèi)毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞產(chǎn)生一系列趨化因子及黏附分子如單核細(xì)胞趨化蛋白-1(MCP-1)、細(xì)胞間黏附分子-1(ICAM-1)等,致使單核/巨噬細(xì)胞等炎癥反應(yīng)細(xì)胞向腎間質(zhì)遷移浸潤,進(jìn)一步釋放轉(zhuǎn)化生長因子-β1(TGF-β1)等細(xì)胞因子,最終引起RIF。本實驗從凝血酶這一角度入手,旨在探討水蛭素對腎間質(zhì)纖維化過程的干預(yù)機(jī)制。

    1 實驗材料與方法

    1.1 實驗材料

    1.1.1 實驗動物 健康雄性SD大鼠,體質(zhì)量(180±20)g,購自北京華阜康生物科技有限公司。

    1.1.2 實驗藥物 天然水蛭素凍干粉,購自湖北武漢勝天宇生物科技有限公司;鹽酸貝那普利片,購自北京諾華制藥有限公司。

    1.1.3 實驗儀器 BX60顯微鏡,購自O(shè)LYMPUS;Mini-PROTEAN 3電泳芯,購自 Bio-Rad;FluorChem FC2 Imaging System,購自 Alpha Innotech;Epgiadients PCR儀,購自 Eppendorf;ABI 7500 fast熒光定量PCR儀,購自Life Technologies。

    1.1.4 實驗試劑 10%甲醛溶液、二甲苯、系列乙醇、中性樹膠,購自天津血液研究所病理科;牛血清白蛋白(BSA,V900933),購自 Sigma-Aldrich;Allin-OneTMFirst-Strand cDNA Synthesis Kit(AORT-0060),購 自 GeneCopoeia;Trizol(115596026)、Platinum?SYBR?Green qPCR SuperMix-UDG(C11733-046),購自 invitrogen;蘇木精-伊紅(HE)染色試劑盒(G1120)、RIPA裂解緩沖液(R0010),購自北京索萊寶科技有限公司;BCA蛋白定量分析試劑盒(NCI3225CH),購自 Thermo Fisher;PVDF 膜(IPVH00010),購自 Millipore;ECL(sc-2048),購自Santa Cruz;兔抗大鼠MCP-1多克隆抗體(ab25124)、兔抗大鼠ICAM-1多克隆抗體(ab124760)、辣根過氧化物酶標(biāo)記的山羊抗兔IgG多克隆抗體(ab6721),購自 abcam。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 分組方案 健康雄性SD大鼠120只,體質(zhì)量(180±20)g,隨機(jī)分為假手術(shù)組、模型組、水蛭素高劑量組、水蛭素低劑量組、貝那普利組,每組各24只。1.2.2 大鼠UUO模型制備 對模型組、水蛭素高劑量組、水蛭素低劑量組、貝那普利組均建立大鼠UUO模型:大鼠經(jīng)腹腔注射10%水合氯醛溶液麻醉后固定,于下腹部正中位置切口1.5 cm,游離左側(cè)輸尿管并結(jié)扎切斷,使左腎完全梗阻。對假手術(shù)組僅游離左側(cè)輸尿管,不結(jié)扎切斷。術(shù)后每只大鼠均應(yīng)用20萬單位青霉素注射行抗感染治療3 d。

    1.2.3 實驗過程 術(shù)后第1天起,水蛭素高劑量組均給予水蛭素(84 U/kg,1次/日)皮下注射,水蛭素低劑量組均給予水蛭素(42 U/kg,1次/日)皮下注射,貝那普利組均給予鹽酸貝那普利片溶于生理鹽水后(2 mL,1次/日)灌胃,假手術(shù)組、模型組均給予生理鹽水(2 mL,1次/日)皮下注射。每組分別于術(shù)后第3、7、14天時,隨機(jī)選擇8只大鼠處死,取梗阻側(cè)腎組織,部分制作石蠟切片以備病理檢測,其余部分放入液氮保存并制作冰凍切片,以備逆轉(zhuǎn)錄-聚合酶鏈反應(yīng)(RT-PCR)及蛋白免疫印跡(Western Blot)檢測。

    1.2.4 病理檢測 用二甲苯、系列乙醇將石蠟切片脫蠟并水化;加入蘇木素染液,室溫下靜置20 min;自來水沖洗5 min;加入分化液,室溫下靜置30 s;浸入自來水15 min;加入伊紅染液2 min;自來水沖洗5 min;自來水浸泡5 min;脫水、透明、封片,鏡下觀察其腎小管等腎間質(zhì)結(jié)構(gòu)形態(tài)變化、淋巴細(xì)胞、單核/巨噬細(xì)胞浸潤情況及纖維組織形態(tài)。

    1.2.5 RT-PCR檢測 取出100 mg冰凍組織保存于Eppendorf管中;加入1 mLTrizol溶液,用電動勻漿機(jī)進(jìn)行勻漿;室溫下靜置15 min;加入0.2 mL三氯甲烷,振蕩混勻;室溫下靜置10 min后,4℃下離心(12 000 r/min,10 min);取上清液轉(zhuǎn)移至另一新Eppendorf管中;加入0.5 mL異丙醇,在室溫下靜置10 min 后,4 ℃下離心(12 000 r/min,10 min);棄去上清液,用無水乙醇洗滌沉淀物2次,每次5 min,4℃下離心(8 000 r/min,10 min);室溫下干燥;加入100μLDEPC水以重懸;按照試劑盒說明書,用Allin-OneTMFirst-Strand cDNA Synthesis Kit進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄,用Platinum?SYBR?Green qPCR SuperMix-UDG進(jìn)行擴(kuò)增;取擴(kuò)增產(chǎn)物5μL,瓊脂糖凝膠電泳,凝膠成像系統(tǒng)觀察結(jié)果,用β-actin作參照,MCP-1、ICAM-1 相對表達(dá)水平采用 2-ΔΔCT公式計算[1]。

    1.2.6 Western Blot檢測 采用Western Blot方法檢測腎組織中MCP-1、ICAM-1的表達(dá)。方法如下:取出冰凍組織,加入RIPA裂解緩沖液,冰上勻漿,4℃下離心(12 000 r/min,20 min)后保存于Eppendorf管中;取50μL裂解物,測定蛋白質(zhì)濃度;取等量蛋白質(zhì)及β-Actin進(jìn)行SDS-PAGE,100 V下電泳1 h;轉(zhuǎn)移至PVDF膜;加入含5%奶粉的TBST溶液室溫下靜置1 h;加入含5%奶粉的TBST溶液稀釋一抗,4℃下孵育過夜;用TBST沖洗PVDF膜3次,每次5 min;加入含5%奶粉的TBST溶液稀釋二抗,室溫下孵育1 h;用TBST沖洗PVDF膜3次,每次5 min;用TBS沖洗PVDF膜5 min;加入ECL,室溫下避光靜置10 min以顯色;曝光顯影。

    1.2.7 統(tǒng)計學(xué)方法 實驗所得數(shù)據(jù)采用SPSS22.0統(tǒng)計軟件進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,數(shù)據(jù)多組間比較采用單因素方差分析(one-way Anova),組間兩兩比較采用 LSD 法,以 P<0.05 認(rèn)為差異有統(tǒng)計學(xué)意義。

    2 結(jié)果

    2.1 HE染色結(jié)果 假手術(shù)組術(shù)后各時間點未見明顯病理改變。模型組自術(shù)后第3天可見腎小管輕度擴(kuò)張,腎間質(zhì)輕度水腫,單核/巨噬細(xì)胞少量浸潤;第7天可見腎小管進(jìn)一步擴(kuò)張,腎小管上皮細(xì)胞空泡變性,腎間質(zhì)內(nèi)單核/巨噬細(xì)胞等炎癥細(xì)胞浸潤增多,纖維組織輕度增生;第14天可見腎皮質(zhì)、髓質(zhì)變薄,腎小管結(jié)構(gòu)破壞,出現(xiàn)腎小管萎縮,基底膜部分消失,腎小管上皮細(xì)胞壞死,纖維組織明顯增生,腎間質(zhì)內(nèi)淋巴細(xì)胞、單核/巨噬細(xì)胞大量浸潤。與模型組相比:水蛭素高劑量組、水蛭素低劑量組、貝那普利組腎間質(zhì)損傷均有不同程度減輕。具體見圖1。

    2.2 Western Blot檢測

    2.2.1 MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量 與假手術(shù)組相比:模型組各時間點及水蛭素低劑量組第3、7天MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量顯著增加(P<0.01);水蛭素高劑量組、貝那普利組第3、7天及水蛭素低劑量組第14 天 MCP-1 蛋白質(zhì)相對表達(dá)量增加(P<0.05)。與模型組相比,水蛭素高劑量組第14天MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量顯著減少(P<0.01);水蛭素高劑量組第3、7天及貝那普利組第3、14天MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量減少(P<0.05)。具體見表 1。

    圖1 HE染色結(jié)果(×200倍)Fig.1 HE staining results(× 200)

    表1 MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量(±s)Tab.1 Protein expression of MCP-1(±s)

    表1 MCP-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量(±s)Tab.1 Protein expression of MCP-1(±s)

    注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,**P<0.01;與模型組相比,#P<0.05,##P<0.01。

    組別 第3天 第7天 第14天假手術(shù)組 0.50±0.03 0.48±0.03 0.53±0.04模型組 1.02±0.10** 0.92±0.10** 0.89±0.08**水蛭素高劑量組 0.67±0.04*# 0.66±0.05*# 0.51±0.04##水蛭素低劑量組 1.00±0.08** 0.84±0.08** 0.80±0.07*貝那普利組 0.79±0.05*# 0.80±0.07* 0.60±0.05#

    2.2.2 ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量 與假手術(shù)組相比:模型組各時間點ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量均顯著增加(P<0.01);水蛭素低劑量組、貝那普利組各不同時間點ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量均增加(P<0.05)。與模型組相比:水蛭素高劑量組第7天ICAM-1 蛋白質(zhì)相對表達(dá)量顯著減少(P<0.01);水蛭素高劑量組第3、14天及水蛭素低劑量組第14天、貝那普利組各不同時間點ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量均減少(P<0.05)。具體見表 2。

    2.3 RT-PCR檢測

    2.3.1 MCP-1 mRNA相對表達(dá)量 與假手術(shù)組相比:模型組各時間點、貝那普利組第3天MCP-1 mRNA 相對表達(dá)量顯著升高(P<0.01);水蛭素高劑量組、水蛭素低劑量組各不同時間點及貝那普利組第 7、14天 MCP-1 mRNA 相對表達(dá)量升高(P<0.05)。與模型組相比:水蛭素高劑量組第7、14天MCP-1 mRNA 相對表達(dá)量顯著降低(P<0.01);水蛭素高劑量組第3天及水蛭素低劑量組、貝那普利組各不同時間點 MCP-1 mRNA 相對表達(dá)量降低(P<0.05)。具體見表3。

    2.3.2 ICAM-1 mRNA相對表達(dá)量 與假手術(shù)組相比:模型組各不同時間點ICAM-1 mRNA相對表達(dá)量均顯著升高(P<0.01);水蛭素高劑量組、水蛭素低劑量組及貝那普利組ICAM-1 mRNA相對表達(dá)量均升高(P<0.05)。與模型組相比:水蛭素高劑量組、貝那普利組各不同時間點及水蛭素低劑量組第7、14天ICAM-1mRNA 相對表達(dá)量均降低(P<0.05)。具體見表4。

    表2 ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量(±s)Tab.2 Protein expression of ICAM-1(±s)

    表2 ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量(±s)Tab.2 Protein expression of ICAM-1(±s)

    注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,**P<0.01;與模型組相比,#P<0.05,##P<0.01。

    組別 第3天 第7天 第14天假手術(shù)組 0.54±0.04 0.55±0.04 0.57±0.05模型組 1.00±0.09** 0.92±0.09** 0.99±0.09**水蛭素高劑量組 0.67±0.07# 0.51±0.05## 0.63±0.07#水蛭素低劑量組 0.88±0.08* 0.84±0.08* 0.82±0.07*#貝那普利組 0.76±0.71*# 0.71±0.06*# 0.80±0.07*#

    表3 MCP-1 mRNA相對表達(dá)量(±s)Tab.3 The mRNA expression of MCP-1(±s)

    表3 MCP-1 mRNA相對表達(dá)量(±s)Tab.3 The mRNA expression of MCP-1(±s)

    注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,**P<0.01;與模型組相比,#P<0.05,##P<0.01。

    組別 第3天 第7天 第14天假手術(shù)組 1.00 1.00 1.00模型組 1.87±0.31** 1.98±0.26** 2.10±0.33**水蛭素高劑量組 1.33±0.13*# 1.27±0.17*## 1.25±0.18*##水蛭素低劑量組 1.52±0.23*# 1.45±0.18*# 1.39±0.21*#貝那普利組 1.47±0.20**# 1.52±0.22*# 1.45±0.23*#

    3 討論

    作為CKD進(jìn)展為ESRD的主要病理過程,RIF一直是研究的熱點。目前,尚未發(fā)現(xiàn)能抑制甚至逆轉(zhuǎn)RIF過程的特效藥物。RIF的主要表現(xiàn)包括細(xì)胞外基質(zhì)(ECM)增多與腎小管上皮細(xì)胞轉(zhuǎn)分化(TEMT)。

    CKD進(jìn)展至ESRD過程中,腎臟長期處于缺血、缺氧狀態(tài)。有害內(nèi)環(huán)境可使氧自由基、細(xì)胞因子、內(nèi)毒素及凝血酶等濃度升高。其中,凝血酶能激活腎間質(zhì)毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞表面PAR-1,進(jìn)而激活多種信號通路,導(dǎo)致腎間質(zhì)毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞釋放大量細(xì)胞因子、黏附分子如MCP-1、ICAM-1等,引起一系列病理過程,如Grandaliano等[1]的研究表明PAR-1表達(dá)的增加與纖溶酶原激活物抑制劑-1(PAI-1)表達(dá)的減少能促進(jìn)RIF發(fā)生過程中ECM的蓄積;Mercer等[2]的研究證實在肺纖維化過程中PAR-1的激活能誘導(dǎo)肺泡上皮細(xì)胞釋放MCP-1增多,進(jìn)而從多種途徑引起肺纖維化;Rahman等[3]的研究證實PAR-1能激活毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞核轉(zhuǎn)錄因子-κB(NF-κB)信號通路,從而促進(jìn) ICAM-1 轉(zhuǎn)錄。由上述研究可知PAR-1的激活能誘導(dǎo)細(xì)胞MCP-1、ICAM-1表達(dá)上調(diào),這與對應(yīng)器官纖維化過程有著密切的聯(lián)系。

    表4 ICAM-1 mRNA 相對表達(dá)量(s)Tab.4 The mRNA expression of ICAM-1(±s)

    表4 ICAM-1 mRNA 相對表達(dá)量(s)Tab.4 The mRNA expression of ICAM-1(±s)

    注:與假手術(shù)組相比,*P<0.05,**P<0.01;與模型組相比,#P<0.05。

    組別 第3天 第7天 第14天假手術(shù)組 1.00 1.00 1.00模型組 1.57±0.25** 1.62±0.26** 1.69±0.26**水蛭素高劑量組 1.23±0.12*# 1.29±0.20*# 1.27±0.18*#水蛭素低劑量組 1.42±0.21* 1.37±0.19*# 1.44±0.22*#貝那普利組 1.35±0.18*# 1.31±0.17*# 1.40±0.21*#

    MCP-1對單核/巨噬細(xì)胞有趨化和激活作用[4];ICAM-1主要功能是使單核細(xì)胞激活并與內(nèi)皮細(xì)胞緊密黏附后穿出血管壁到達(dá)炎癥部位[5]。腎間質(zhì)內(nèi)毛細(xì)血管內(nèi)皮細(xì)胞釋放MCP-1、ICAM-1后可引起單核/巨噬細(xì)胞激活并定向遷移、穿出毛細(xì)血管壁到達(dá)腎間質(zhì)中,引起一系列炎癥反應(yīng)。激活的單核/巨噬細(xì)胞能釋放TGF-β1,而TGF-β1已被大量研究證實能引起ECM分泌增多,能促進(jìn)腎間質(zhì)纖維化的發(fā)生與發(fā)展。Yang等[6]的研究證實TGF-β1能誘導(dǎo)TEMT;而Zheng等[7]的研究則證實MCP-1可直接作用于腎小管上皮細(xì)胞,引起TEMT發(fā)生。與此同時,MCP-1與ICAM-1能直接影響ECM的合成,如Lee等[8]的研究指出在MCP-1能誘導(dǎo)腹膜間皮細(xì)胞發(fā)生EMT及ECM過度積聚;Paccosi等[9]的研究則表明應(yīng)用MCP-1合成抑制劑可抑制腎功能惡化過程,且這一作用可能與其減少了腎間質(zhì)中ECM過度沉積有關(guān)。ICAM-1在誘導(dǎo)單核/巨噬細(xì)胞激活與黏附過程之外,也能通過誘導(dǎo)ECM過度沉積導(dǎo)致腎功能惡化,如Janssen等[10]使用ICAM-1基因敲除小鼠證實了ICAM-1在腎損傷過程中可導(dǎo)致ECM過度沉積及腎功能進(jìn)行性惡化。

    結(jié)合目前研究現(xiàn)狀,設(shè)計了本實驗,旨在研究通過對凝血酶的干預(yù),是否能對與RIF密切相關(guān)的MCP-1、ICAM-1兩種標(biāo)志物造成影響,從而在一定程度上抑制RIF的發(fā)生、發(fā)展,并研究凝血酶抑制劑水蛭素在上述一系列病理過程中的保護(hù)性作用。從MCP-1、ICAM-1等方面入手,以UUO大鼠為模型,進(jìn)行了為期14 d的研究。結(jié)果顯示:水蛭素高劑量組及水蛭素低劑量組均能不同程度地減輕UUO模型大鼠腎間質(zhì)損傷程度并抑制MCP-1、ICAM-1的表達(dá),且水蛭素高劑量組相比水蛭素低劑量組有著更好的效果。在相同的劑量下,隨著給藥時間的延長,水蛭素對MCP-1、ICAM-1表達(dá)的抑制作用可持續(xù)增強(qiáng),如水蛭素低劑量組第3天ICAM-1 mRNA相對表達(dá)量及第3、7天ICAM-1蛋白質(zhì)相對表達(dá)量無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),但在第 14 天時,水蛭素低劑量組ICAM-1 mRNA及蛋白質(zhì)相對表達(dá)量相比模型組均有一定降低(P<0.05)。

    綜上所述,通過本實驗研究,可得出如下結(jié)論:水蛭素能不同程度地減輕UUO模型大鼠腎間質(zhì)損傷程度并下調(diào)MCP-1、ICAM-1 mRNA及蛋白質(zhì)的表達(dá),且水蛭素高劑量組的下調(diào)作用更強(qiáng)。因此,水蛭素能在一定程度上下調(diào)RIF發(fā)生過程中腎間質(zhì)血管內(nèi)皮細(xì)胞表達(dá)的趨化因子、黏附因子水平,從而抑制單核/巨噬細(xì)胞趨化與激活,減輕單核/巨噬細(xì)胞浸潤及炎癥反應(yīng),達(dá)到抑制腎間質(zhì)纖維化發(fā)生、發(fā)展的目的。其作用機(jī)制或與水蛭素抑制UUO模型大鼠腎間質(zhì)血管內(nèi)皮細(xì)胞凝血酶活性,進(jìn)而下調(diào)腎間質(zhì)MCP-1、ICAM-1 mRNA及蛋白的表達(dá)有關(guān)。

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