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    納米二氧化鈦對IEC-6細(xì)胞炎癥因子表達(dá)及JAK 2/STAT3蛋白磷酸化的影響

    2019-04-11 02:52:50張小強苗歆雨盧曉星
    癌變·畸變·突變 2019年2期
    關(guān)鍵詞:磷酸化腸道通路

    劉 靜,張小強,*,王 旭,苗歆雨,盧曉星

    (1.東南大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,江蘇 南京 210009;2.東南大學(xué)環(huán)境醫(yī)學(xué)工程教育部重點實驗室,江蘇 南京 210009)

    近年來,用于食品的二氧化鈦(titanium dioxide,TiO2)已被美國食品藥品監(jiān)督管理局(Food and Drug Administration,F(xiàn)DA)和歐洲食品安全局(European Food Safety Authority,EFSA)認(rèn)定為是一種安全的食品添加劑[1]。然而,Kim等[2]在標(biāo)注含TiO2的食品中檢測出一定量的納米二氧化鈦(titanium dioxide nanoparticles,nano-TiO2)。腸道是大多數(shù)營養(yǎng)物質(zhì)消化和吸收的場所,易與經(jīng)口攝入的外來污染物相互作用。研究發(fā)現(xiàn),經(jīng)口暴露的nano-TiO2富集在腸道上皮細(xì)胞層[3],誘導(dǎo)腸道隱窩結(jié)構(gòu)改變以及緊密連接蛋白和炎癥相關(guān)基因表達(dá)異常[4-5]。上述病理表現(xiàn)提示腸道可能作為nano-TiO2的靶器官之一,出現(xiàn)不良反應(yīng)。迄今為止,有關(guān)nano-TiO2腸道毒性的研究相對較少??紤]到人群每日經(jīng)口暴露于nano-TiO2的機會增加,關(guān)于nano-TiO2腸道毒性效應(yīng)及相關(guān)機制值得深入探討。因此,本研究選擇不同濃度的nano-TiO2刺激腸道上皮細(xì)胞(intestinal epithelial cells,IEC-6),觀察 nano-TiO2對細(xì)胞活性和炎癥因子表達(dá)的影響,探討nano-TiO2是否導(dǎo)致IEC-6細(xì)胞炎癥反應(yīng)及相關(guān)分子機制。

    1 材料與方法

    1.1 實驗材料

    1.1.1 主要材料和試劑 大鼠小腸隱窩上皮細(xì)胞(IEC-6)購于中國科學(xué)院昆明細(xì)胞庫;nano-TiO2粉末,購于德國Degussa公司;DMEM高糖培養(yǎng)基購于美國HyClone公司;胎牛血清購于美國Hyclone公司;0.25%胰蛋白酶-EDTA溶液購于美國Gibco公司;四甲基偶氮唑鹽(MTT)購于美國Sigma公司;IL-1β、IL-6和TNF-α雙抗體夾心酶聯(lián)免疫吸附實驗(ELISA)試劑盒購于南京森貝伽生物科技有限公司;BCA蛋白定量試劑盒購于北京康為世紀(jì)生物技術(shù)有限公司;JAK2、p-JAK2、STAT3、p-STAT3抗體、山羊抗兔二抗IgGHRP、Western blot魯米諾試劑均購于美國Santa Cruz公司。

    1.1.2 主要儀器 Olympus IX51倒置相差顯微鏡購于日本Olympus公司;Esco二氧化碳培養(yǎng)箱購于新加坡Esco公司;JEM-2100型透射電鏡購于日本JEOL公司;Zetasizer Nano-ZS90型馬爾文粒徑分析儀購于英國馬爾文儀器有限公司;RT-6000酶標(biāo)分析儀購于美國Rayto公司;5417R高速冷凍離心機購于德國Eppendorf公司;Mini-Protein 3小型垂直電泳槽購于美國Bio-Rad公司;DYCZ-40D轉(zhuǎn)印電泳槽購于北京六一儀器廠;JY600C電泳儀購于北京君意東方電泳設(shè)備有限公司;Tanon 5200化學(xué)發(fā)光成像系統(tǒng)購于上海天能科技有限公司。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 制備nano-TiO2染毒懸液 使用電子天平精確稱量10.0 mg nano-TiO2粉末,120℃加熱2 h殺菌處理,加入10 mL完全培養(yǎng)基配成1 mg/mL的母液,置于4℃冰箱保存待用。使用前100 Hz超聲震蕩30 min,根據(jù)實驗需要稀釋成相應(yīng)濃度。

    1.2.2 腸道上皮細(xì)胞的培養(yǎng) 將大鼠小腸隱窩上皮細(xì)胞(IEC-6)培養(yǎng)于含10%胎牛血清、100 U/mL青霉素與100 mg/mL鏈霉素的DMEM高糖培養(yǎng)基中,置于37℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。每隔1 d換液1次,每3~4 d傳代一次。當(dāng)細(xì)胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期時進(jìn)行實驗。

    1.2.3 nano-TiO2顆粒表征 取nano-TiO2懸液滴加在銅網(wǎng)上并烘干,在樣品表面鍍上具有導(dǎo)電性的金膜,將樣品放入透射電子顯微鏡(transmission electron microscope,TEM)樣品倉,在加速電壓200 kV下,觀察nano-TiO2的粒徑。取一定量的nano-TiO2染毒懸液,超聲處理30 min,使用馬爾文粒徑分析儀檢測nano-TiO2的平均水合粒徑、分散系數(shù)(polydispersity,PDI)和Zeta電位。

    1.2.4 MTT法測定細(xì)胞存活率 待IEC-6細(xì)胞培養(yǎng)至對數(shù)生長期,調(diào)整濃度為1×105個/mL,以每孔100μL接種于96孔培養(yǎng)板,在37℃、CO2體積分?jǐn)?shù)為5%的培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。待細(xì)胞貼壁后分為調(diào)零組、對照組和nano-TiO2處理組(濃度分別為5.0、10.0、15.0、20.0μg/mL)培養(yǎng)24 h,每組5個復(fù)孔。每孔加入5 mg/mL的MTT溶液10μL繼續(xù)培養(yǎng)4 h,棄上清。每孔加150μL的DMSO,震蕩5~10 min,使結(jié)晶物充分溶解。酶標(biāo)儀檢測吸光度D(570)值,并計算細(xì)胞存活率。

    1.2.5 ELISA法檢測IL-1β、IL-6和TNF-α水平 將對數(shù)生長期的IEC-6細(xì)胞調(diào)整濃度為2×105個/mL,以每孔500μL接種于24孔培養(yǎng)板上,待細(xì)胞貼壁后,實驗分組同1.2.4,處理24 h后取細(xì)胞培養(yǎng)液上清3 000 r/min離心20 min,收集離心后的培養(yǎng)液上清。各細(xì)胞因子水平應(yīng)用ELISA雙抗體夾心法測定,按照ELISA試劑盒說明書進(jìn)行,操作完畢后用酶標(biāo)儀測定吸光度D(450)值。根據(jù)標(biāo)準(zhǔn)曲線分別確定樣品中IL-1β、IL-6和TNF-α含量。

    1.2.6 Western blot法檢測JAK2/STAT3蛋白表達(dá)及其磷酸化水平 將處于對數(shù)生長期的IEC-6細(xì)胞以濃度為6×105個/mL接種于直徑為6 cm培養(yǎng)皿中,細(xì)胞貼壁后,分組同1.2.4,加入nano-TiO2。用RIPA裂解液提取蛋白,在4℃、12 000 r/min條件下,離心15 min,吸取上清,-80℃冰箱保存。用BCA蛋白定量試劑盒確定所得蛋白濃度后,在制備好的分離膠中加入樣品,SDS-PAGE電泳,待溴酚藍(lán)到達(dá)下層膠的底部停止電泳。蛋白轉(zhuǎn)移至PVDF膜,將膜置于封閉液中37℃封閉2 h,加入成比例稀釋的一抗,4℃孵育過夜,加入1∶5 000稀釋的二抗室溫孵育2 h,ECL顯影,使用Image J軟件掃描分析條帶灰度值。

    1.3 統(tǒng)計學(xué)方法

    所有實驗數(shù)據(jù)均以xˉ±s表示。應(yīng)用SPSS 17.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計學(xué)分析,多組之間比較采用單因素方差分析(One-Way ANOVA)。兩兩比較時,若方差齊則采用LSD-t檢驗;若不齊則選擇Dunnett’s T3檢驗,以α=0.05為檢驗水準(zhǔn)。

    2 結(jié)果

    2.1 nano-TiO2的表征

    TEM檢測結(jié)果見圖1,顯示分散在細(xì)胞培養(yǎng)基中的nano-TiO2形態(tài)不規(guī)則,顆粒團(tuán)聚。粒徑儀檢測到顆粒的平均水合粒徑為(64.59±2.05)nm,PDI為(0.23±0.01),Zeta電位為(-5.27±0.21)mV,上述結(jié)果提示nano-TiO2的混合分散體系較為穩(wěn)定。

    圖1 nano-TiO2表征

    2.2 nano-TiO2對IEC-6細(xì)胞存活率的影響

    MTT法測定細(xì)胞存活率結(jié)果見圖2,與對照組相比,各個nano-TiO2處理組(5.0、10.0、15.0、20.0μg/mL)IEC-6細(xì)胞活性差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05),說明本試驗濃度的nano-TiO2對IEC-6細(xì)胞活性未產(chǎn)生明顯影響。

    圖2 nano-TiO2對IEC-6細(xì)胞存活率的影響

    2.3 nano-TiO2誘導(dǎo)IEC-6細(xì)胞釋放IL-1β、IL-6、TNF-α因子

    ELISA法測定IEC-6細(xì)胞分泌炎癥因子結(jié)果見圖3,IEC-6 細(xì)胞給予 10.0、15.0、20.0 μg/mL nano-TiO2染毒處理后,與對照組相比,細(xì)胞IL-1β分泌增加(P<0.05);與對照組相比,nano-TiO2各個濃度(5.0、10.0、15.0、20.0 μg/mL)作用組中IEC-6細(xì)胞IL-6和TNF-α水平均明顯升高(P<0.05),且nano-TiO2染毒劑量與上述促炎性因子分泌水平呈劑量依賴性增加(rIL-1β=0.870, P<0.01; rIL-6=0.938, P<0.01; rTNF-α=0.982,P<0.01)。

    2.4 nano-TiO2引起IEC-6細(xì)胞JAK2/STAT3蛋白磷酸化

    圖3 nano-TiO2對IEC-6細(xì)胞IL-1β、IL-6和TNF-α水平的影響

    Western blot實驗的結(jié)果見圖4,與對照組相比,在濃度為15.0和20.0μg/mL nano-TiO2作用下p-JAK2和p-STAT3蛋白表達(dá)水平明顯增加(圖4A),且p-JAK2和p-STAT3蛋白表達(dá)水平與炎癥因子分泌水平呈正相關(guān)關(guān)系(rJAK2,IL-1β=0.561,P<0.05;rJAK2,IL-6=0.711,P<0.01;rJAK2,TNF-α=0.675,P<0.01;rSTAT3,IL-1β=0.782,P<0.01;rSTAT3,IL-6=0.532,P<0.05;rSTAT3,TNF-α=0.668,P<0.01)。灰度值分析結(jié)果(圖4B和圖4C)顯示,IEC-6細(xì)胞在15.0和20.0μg/mL nano-TiO2作用下,JAK2和STAT3蛋白磷酸化水平明顯增加,與對照組相比,差異具有統(tǒng)計學(xué)意義(P<0.05)。

    圖4 nano-TiO2對IEC-6細(xì)胞JAK2/STAT3蛋白磷酸化水平的影響

    3 討論

    納米顆粒作為一種新興材料,因其具有特殊的物理化學(xué)特性被使用于工業(yè)、生物醫(yī)藥[6]和食品行業(yè)[7]。隨著應(yīng)用途徑多樣化,納米顆??呻S食品經(jīng)口分布于機體腸道。腸道中的腸道屏障主要由腸道上皮細(xì)胞和細(xì)胞間的緊密連接構(gòu)成,能有效隔離外源性有害物質(zhì)到達(dá)機體內(nèi)部。當(dāng)腸道屏障遭到破壞,可能誘導(dǎo)腸道炎性疾病發(fā)生,進(jìn)而導(dǎo)致結(jié)直腸癌[8]。因此,評價nano-TiO2對腸道上皮細(xì)胞的毒性效應(yīng)對nano-TiO2的安全性評估具有重要意義。

    本實驗結(jié)果表明,nano-TiO2對體外培養(yǎng)的IEC-6細(xì)胞存活率無顯著影響,這與YE等[9]的研究一致。一般來說,nano-TiO2的毒性具有時間和劑量依賴性[10-11]。而本研究的IEC-6細(xì)胞僅單次暴露于較低濃度的nano-TiO2且接觸時間較短(24 h),可能尚未表現(xiàn)出nano-TiO2的細(xì)胞毒性??紤]到各年齡段人群每日經(jīng)口攝入nano-TiO2的頻率和用量的差異性[12],未來可能需要進(jìn)行高劑量和長期染毒實驗進(jìn)一步確證重復(fù)暴露nano-TiO2對人體腸道的影響。

    一項有關(guān)金屬納米毒性對比的研究發(fā)現(xiàn),不同的金屬納米顆粒對細(xì)胞活性的影響差異較大,但是卻都能引起細(xì)胞相關(guān)炎性因子分泌[13]。所以,本研究在發(fā)現(xiàn)nano-TiO2不影響IEC-6細(xì)胞活性后,我們對nano-TiO2能否引起腸道細(xì)胞炎癥反應(yīng)進(jìn)行評估。本實驗結(jié)果表明,較低濃度的nano-TiO2(5和10μg/mL)就能刺激細(xì)胞顯著分泌炎性相關(guān)因子。這可能是因為細(xì)胞將納米顆粒識別為外源性物質(zhì),極低濃度的nano-TiO2(1×10-3μg/mL)也可能引起細(xì)胞一系列炎性反應(yīng)[14]。然而,Tada-oikawa等[15]發(fā)現(xiàn)高于25 μg/mL nano-TiO2濃度作用下,腸道細(xì)胞才開始分泌較高水平的IL-1β。出現(xiàn)相悖結(jié)果的原因可能是不同細(xì)胞種屬對nano-TiO2敏感性不一[16],導(dǎo)致反應(yīng)濃度出現(xiàn)差異。另外,根據(jù)晶型分類,常見的nano-TiO2主要來源有3種:銳鈦礦、金紅石和板鈦礦。本實驗采用的是與食品添加劑成分相似的銳鈦礦與金紅石混合物[17],而Tada-oikawa等[15]的研究選用100%純度的銳鈦礦染毒。nano-TiO2成分差異可能是導(dǎo)致不同結(jié)果的原因之一。

    JAK2/STAT3通路是參與調(diào)節(jié)炎癥反應(yīng)的重要通路之一。有研究分析發(fā)現(xiàn),IL-6的表達(dá)與STAT3磷酸化水平呈正相關(guān)關(guān)系[18]。本實驗在nano-TiO2刺激下,IEC-6細(xì)胞中JAK2蛋白和STAT3蛋白磷酸化水平增加,說明JAK2/STAT3信號通路可能被激活。隨著nano-TiO2劑量增加,JAK2/STAT3兩種蛋白磷酸活化水平與3種炎癥相關(guān)因子(IL-1β、IL-6和TNF-α)的分泌水平變化趨勢一致。因此,我們推斷nano-TiO2引起腸上皮細(xì)胞炎癥因子的表達(dá)可能與JAK2/STAT3蛋白磷酸活化相關(guān)。研究發(fā)現(xiàn),JAK2通路抑制劑(AG490)能大幅度緩解JAK2/STAT3蛋白的激活和相關(guān)炎癥因子的產(chǎn)生[19],這提示JAK2/STAT3信號通路參與炎癥的發(fā)生發(fā)展。今后,我們將利用JAK2/STAT3通路的抑制劑探索nano-TiO2是否通過JAK2/STAT3信號通路誘導(dǎo)IEC-6細(xì)胞分泌炎癥因子。Fukatsu等[20]的研究發(fā)現(xiàn),nano-TiO2的炎癥反應(yīng)在核因子-κB(nuclear factor kappa-B,NF-κB)抑制劑作用下逐漸減輕,表明NF-κB通路同樣參與納米引起的炎癥反應(yīng)。除此之外,nano-TiO2暴露伴有炎癥產(chǎn)生的同時還引起小鼠中絲裂原活化蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)家族的p38絲裂原活化蛋白激酶(p38 MAPK)表達(dá)上調(diào)[21]以及細(xì)胞中蛋白激酶B(protein kinase B,PKB)、細(xì)胞外調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular regulated protein kinases,ERK)、c-Jun氨基末端激酶(c-Jun N-terminal kinase,JNK)和p38 MAPK等蛋白磷酸化水平增加[22-23]。由此,我們推斷nano-TiO2致生物體產(chǎn)生炎性反應(yīng)可能與多條信號通路有關(guān),涉及JAK2/STAT3、MAPK家族和PKB等傳導(dǎo)途徑。

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