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    2 株植物內(nèi)生菌對油菜和小麥種子萌發(fā)及幼苗生長的影響

    2019-03-21 02:58:12楊亞茹茆少星閆淑珍陸長梅
    河北農(nóng)業(yè)科學(xué) 2019年6期
    關(guān)鍵詞:脫氨酶菌劑懸液

    楊亞茹,茆少星,閆淑珍,陸長梅

    (南京師范大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院,江蘇 南京 210024)

    植物內(nèi)生菌是指生活在植物組織和器官內(nèi)部的微生物,其不會(huì)使宿主植物表現(xiàn)出外在病癥,但可通過組織學(xué)方法或從表面嚴(yán)格消毒的植物組織中分離出來。與宿主植物共生過程中,內(nèi)生菌可以通過產(chǎn)生激素、促進(jìn)營養(yǎng)元素釋放和吸收等方式調(diào)節(jié)植物生長,直接抑制病蟲害以提高宿主植物的抗性;可通過ISR 效應(yīng)等提高宿主植物對生物與非生物脅迫的抗性等[1~4]。大多數(shù)內(nèi)生菌對宿主具有專一性,因此其使用范圍相對較窄;再加上不同菌劑的作用機(jī)制和作用效果相差很大、微生物菌劑功能單一等因素,均制約了微生物菌劑的發(fā)展[1,4]。

    蠟狀芽孢桿菌SZ5(Bacillus cereus) 和熒光假單胞菌DLJ1(Pseudomonas fluorescens biovar I) 是在篩選產(chǎn)1-氨基環(huán)丙烷-1-羧酸(1-a minocyclopropane-1-carboxylate,ACC) 脫氨酶微生物時(shí),分別從柿子和辣椒的成熟果實(shí)中分離獲得的2 株植物內(nèi)生菌。它們均能在非宿主植物番茄中定殖,并促進(jìn)番茄生長和抗性提高[5];能提高辣椒植株對南方根結(jié)線蟲的抗性,其中,SZ5 還具有降低大麗輪枝菌(Verticillium da hliae) 毒素毒性的作用[6]。

    由于DLJ1 和SZ5 對某些病蟲害具有一定的抑制作用,且宿主具有一定的多樣性,因此探究二者能否促進(jìn)其他植物(如大宗農(nóng)作物) 的生長,對于擴(kuò)展其應(yīng)用范圍具有一定的價(jià)值。鑒于此,以小麥(單子葉植物) 和油菜(雙子葉植物) 為試材,探究DLJ1 和SZ5 菌劑對小麥和油菜種子萌發(fā)及幼苗生長的影響,并初步探討其作用機(jī)理和適宜處理時(shí)機(jī),旨為拓展DLJ1 和SZ5 菌劑在農(nóng)業(yè)生產(chǎn)上的應(yīng)用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 試驗(yàn)材料

    油菜和小麥種子由江蘇省農(nóng)業(yè)科學(xué)院提供。供試植物內(nèi)生菌蠟狀芽孢桿菌SZ5(自成熟柿子分離) 和熒光假單胞菌(生物型I) DLJ1(自辣椒果實(shí)分離),均由南京師范大學(xué)微生物工程研究中心篩選獲得,以牛肉膏蛋白胨培養(yǎng)基培養(yǎng)皿冷藏保存。

    1.2 試驗(yàn)方法

    1.2.1 菌劑及種子的前處理

    1.2.1.1 制備菌劑。參照劉維紅等[5]的方法,將2 個(gè)菌株在NA 培養(yǎng)液中培養(yǎng)48 h 獲得純培養(yǎng)物;取純培養(yǎng)物在4 ℃下8 000 轉(zhuǎn)/min 離心5 min,收集沉淀和上清液(發(fā)酵液),備用。將沉淀菌體用無菌水洗滌2 次后,再用無菌水重懸沉淀至OD600為0.5±0.02,制得濃度相當(dāng)于108cfu/mL 的菌懸液,備用。

    1.2.1.2 種子處理。將供試種子先后于70%酒精中消毒1 min、1%的NaClO 溶液中消毒10 min,然后用無菌水充分洗滌5 次,于25~28 ℃黑暗條件下浸種12 h,備用。

    1.2.2 種子萌發(fā)試驗(yàn) 采用培養(yǎng)皿濾紙法[7]進(jìn)行種子萌發(fā)試驗(yàn),整個(gè)操作在無菌條件下進(jìn)行。試驗(yàn)設(shè)6 個(gè)培養(yǎng)液處理,分別為無菌水(CK)、NA 培養(yǎng)液、SZ5菌懸液、SZ5 發(fā)酵液、DLJ1 菌懸液和DLJ1 發(fā)酵液。每個(gè)培養(yǎng)皿中放入1 張濾紙,加入培養(yǎng)液5 mL 浸潤,于濾紙上放置飽滿的備用種子30 粒,每處理3 次重復(fù)。油菜于28℃(晝)/25℃(夜)、14h(光照)/10h(黑暗)條件下培養(yǎng);小麥于25 ℃條件下黑暗培養(yǎng)。每隔12 h觀察1 次。每天采用稱重法補(bǔ)充蒸發(fā)掉的水分,并記錄萌發(fā)種子數(shù)。在萌發(fā)終止(4 d) 時(shí),計(jì)算各處理的發(fā)芽率(發(fā)芽種子數(shù)∕供試種子數(shù)×100%)、發(fā)芽勢(發(fā)芽高峰期發(fā)芽的種子數(shù)/供試種子數(shù)×100%,本文中發(fā)芽高峰為第2 天) 和萌發(fā)指數(shù)〔∑(Gt/Dt),式中,Gt 為在時(shí)間t 的種子萌發(fā)數(shù),Dt 為相應(yīng)的萌發(fā)時(shí)間〕。測定萌發(fā)苗的發(fā)育情況[8]。

    1.2.3 幼苗生長試驗(yàn) 將備用種子置于無菌水培養(yǎng)皿中,黑暗培養(yǎng)至萌發(fā)后,備用。采用培養(yǎng)皿濾紙法進(jìn)行幼苗生長試驗(yàn)。試驗(yàn)設(shè)6 個(gè)培養(yǎng)液處理,分別為無菌水(CK)、NA 培養(yǎng)液、SZ5 菌懸液、SZ5 發(fā)酵液、DLJ1 菌懸液和DLJ1 發(fā)酵液。每個(gè)培養(yǎng)皿中放入1 張濾紙,加入培養(yǎng)液5 mL 浸潤,于濾紙上放置萌發(fā)狀態(tài)一致的萌發(fā)苗30 株,每處理3 次重復(fù)。在28 ℃(晝)/25 ℃(夜) 培養(yǎng)箱中,先黑暗培養(yǎng)4 d,然后再14 h(光照) /10 h(黑暗) 培養(yǎng)2 d 后,對幼苗生長狀況進(jìn)行測定。

    將幼苗經(jīng)掃描儀掃描后,利用根系分析儀Epson Perfection V700 Photo(J221A,日本) 和葉面積分析儀Epson Perfection V500 Photo(日本),分析計(jì)算各處理幼苗的根系長度、根系表面積、胚軸長度、葉長和不定根數(shù)。

    1.2.4 激素相關(guān)物質(zhì)檢測 生長素吲哚乙酸(indole acetic acid,IAA) 定性檢測參照Glickmann 等[9]的方法,采用Salkowski 比色液,在室溫下避光反應(yīng),比較反應(yīng)液是否變成粉紅色。赤霉素(gibberellin,GA)活性測定參照薛泉宏等[10]的熒光法。ACC 脫氨酶活性檢測則是將DLJ1 和SZ5 純培養(yǎng)菌體重懸于ADF 培養(yǎng)液中誘導(dǎo)培養(yǎng)24 h 后,參照Honma 等[11]和Saleh 等[12]的方法,以每毫克可溶性蛋白每小時(shí)產(chǎn)生的α-丁酮酸的量代表ACC 脫氨酶活性大小??扇苄缘鞍踪|(zhì)含量測定采用Bradford 法[13],以牛血清白蛋白作為標(biāo)準(zhǔn)蛋白進(jìn)行測定。

    1.2.5 Fe 載體的定性檢測 將2 個(gè)菌株接種于金葡菌甘露醇氯化鈉瓊脂(mannitol salt agar,MSA) 培養(yǎng)基中,于28 ℃、160 轉(zhuǎn)/min 條件下培養(yǎng)48 h 后,觀察培養(yǎng)液的顏色,并離心菌液獲得上清液;在紫外-可見光光度計(jì)下連續(xù)掃描上清液,觀察在405 nm 波長處是否存在吸收峰。培養(yǎng)液呈現(xiàn)藍(lán)綠色熒光、405 nm 處存在吸收峰,代表菌株可以產(chǎn)生Fe 載體[14]。

    1.3 數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)與分析

    利用Excel、Photoshop 和SPSS 18.0 軟件進(jìn)行相關(guān)數(shù)據(jù)的整理與分析,采用Duncan’s 新復(fù)極差法對數(shù)據(jù)進(jìn)行差異顯著性檢驗(yàn)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 萌發(fā)期菌劑處理對油菜和小麥種子萌發(fā)以及萌發(fā)苗生長的影響

    2.1.1 對種子萌發(fā)的影響

    2.1.1.1 油菜種子。與無菌水對照處理相比,萌發(fā)期NA 培養(yǎng)液處理對油菜種子的最終發(fā)芽率以及萌發(fā)速度(發(fā)芽勢) 和質(zhì)量(發(fā)芽指數(shù)) 均有顯著的抑制作用,且抑制作用均為最大;SZ5 和DLJ1 菌懸液處理對油菜種子的最終發(fā)芽率、萌發(fā)速度和質(zhì)量有一定的抑制作用,但均未達(dá)到顯著水平;SZ5 發(fā)酵液處理對油菜種子的最終發(fā)芽率、萌發(fā)速度和質(zhì)量均有顯著的抑制作用,DLJ1 發(fā)酵液處理僅對油菜種子的萌發(fā)速度有顯著的抑制作用(表1)??傮w來看,SZ5 處理對種子萌發(fā)的抑制程度高于DLJ1 處理。

    2.1.1.2 小麥種子。與無菌水對照處理相比,雖然各處理均對種子發(fā)芽率無顯著影響,但2 個(gè)菌劑的發(fā)酵液處理均導(dǎo)致小麥發(fā)芽勢和發(fā)芽指數(shù)降低,且除DLJ1 發(fā)酵液處理的小麥發(fā)芽指數(shù)外,其他指標(biāo)與CK 差異均達(dá)到了顯著水平;NA 培養(yǎng)液處理的抑制作用弱于發(fā)酵液處理,與CK 相比,指標(biāo)差異均不顯著;2 種菌劑菌懸液處理對小麥種子萌發(fā)速度和質(zhì)量的作用不同,其中SZ5 菌懸液處理表現(xiàn)為促進(jìn)作用、DLJ1 菌懸液處理表現(xiàn)為抑制作用,但均未達(dá)到顯著水平。

    表1 萌發(fā)期SZ5 和DLJ1 菌劑處理對油菜和小麥種子萌發(fā)的影響Table 1 Effects of inoculation of SZ5 and DLJ1 at germination stage on seed germination of rape and wheat

    可以看出,萌發(fā)期分別用2 個(gè)菌劑的不同培養(yǎng)液處理油菜和小麥種子,雖然對最終發(fā)芽率影響較小,但2 個(gè)菌劑的發(fā)酵液處理均顯著延緩了種子萌發(fā)。NA培養(yǎng)液處理對油菜種子萌發(fā)抑制作用明顯,說明NA培養(yǎng)液或發(fā)酵液中可能存在抑制種子萌發(fā)的物質(zhì)。

    2.1.2 對萌發(fā)苗生長的影響 伴隨著種子生長,不同培養(yǎng)液處理對油菜和小麥種子萌發(fā)苗生長的影響程度不同(表2)。NA 培養(yǎng)液處理顯著降低了油菜萌發(fā)苗的主根長度,明顯提高了其子葉面積;而對小麥苗的生長無顯著影響。2 個(gè)菌劑菌懸液處理中,除SZ5 菌懸液處理顯著降低油菜萌發(fā)苗的主根長度外,其他處理對油菜苗的生長均無顯著影響;但可顯著促進(jìn)小麥胚根生長,其中DLJ1 菌懸液的促生效應(yīng)更為顯著。SZ5 發(fā)酵液處理雖然可顯著促進(jìn)油菜萌發(fā)苗子葉擴(kuò)大,但顯著抑制了其主根的生長;而對小麥萌發(fā)苗的生長存在不明顯的抑制作用;DLJ1 發(fā)酵液處理則對油菜萌發(fā)苗的下胚軸、根系和子葉生長以及小麥胚根生長均有顯著的促進(jìn)作用。

    表2 萌發(fā)期SZ5 和DLJ1 菌劑處理對油菜和小麥萌發(fā)苗生長的影響Table 2 Effects of inoculation of SZ5 and DLJ1 at germination stage on the growth of rape and wheat seedlings

    綜合來看,雖然萌發(fā)期2 個(gè)菌劑的發(fā)酵液處理延緩了油菜和小麥種子萌發(fā),但DLJ1 發(fā)酵液可顯著促進(jìn)油菜萌發(fā)苗生長,DLJ1 發(fā)酵液、菌懸液以及SZ5菌懸液可顯著促進(jìn)小麥萌發(fā)苗生長,且DLJ1 處理萌發(fā)苗的長勢優(yōu)于SZ5 處理。

    2.2 萌發(fā)后菌劑處理對油菜和小麥幼苗生長的影響

    與無菌水對照相比,NA 培養(yǎng)液處理僅對油菜根伸長有明顯的抑制作用;SZ5 發(fā)酵液和DLJ1 發(fā)酵液處理雖然也對油菜根系伸長有一定抑制作用,但抑制幅度小于NA 培養(yǎng)液;2 個(gè)菌劑的菌懸液處理均對油菜幼苗生長無顯著影響(表3)。

    在小麥的各處理中,只有DLJ1 菌懸液可顯著促進(jìn)小麥幼苗根系伸長,SZ5 發(fā)酵液可顯著降低小麥幼苗根系表面積,其他處理均對小麥幼苗生長無顯著影響。

    表3 萌發(fā)后SZ5 和DLJ1 菌劑處理對油菜和小麥幼苗生長的影響Table 3 Effects of inoculation of SZ5 and DLJ1 after germination on the growth of rape and wheat seedlings

    綜合來看,在油菜和小麥種子萌發(fā)后再進(jìn)行菌劑處理,短時(shí)間(6 d) 內(nèi)對幼苗生長的促進(jìn)效應(yīng)較弱。

    2.3 菌劑的作用機(jī)制

    微生物菌劑對植物的作用機(jī)制集中在產(chǎn)植物激素及與植物激素相關(guān)的物質(zhì)、為植物生長提供必需的營養(yǎng)元素、抑制病原微生物生長、提高植物免疫能力等方面[1~4]。本研究結(jié)果顯示,萌發(fā)期SZ5 和DLJ1 菌劑的發(fā)酵液處理均對油菜和小麥種子萌發(fā)具有明顯的延緩作用;但在種子萌發(fā)后,DLJ1 發(fā)酵液處理對萌發(fā)苗生長有明顯的促進(jìn)作用,且2 個(gè)菌株發(fā)酵液的作用效果均大于其菌懸液。由此推測,可能是發(fā)酵液中存在某種物質(zhì)對種子萌發(fā)和生長產(chǎn)生了影響。

    2.3.1 菌劑發(fā)酵液中植物激素等相關(guān)物質(zhì) 在SZ5 和DLJ1 的發(fā)酵液中均未檢測出IAA 或GA 等促進(jìn)種子萌發(fā)的激素,但檢測到了降解乙烯合成前體ACC 的ACC 脫氨酶(表4)。DLJ1 發(fā)酵液中ACC 脫氨酶活性高達(dá)54.657 6 μmol/(mg·h),是SZ5 的4 倍。在已報(bào)道的可分泌ACC 脫氨酶的微生物中,DLJ1 分泌的ACC脫氨酶活性相對較高[5,6,15~18]。

    伴隨著植物種子萌發(fā),會(huì)出現(xiàn)乙烯釋放高峰[18,19]。ACC 為乙烯合成前體,ACC 脫氨酶可以通過降解乙烯合成前體ACC,從而減少種子萌發(fā)過程中乙烯的產(chǎn)生[17~20]。雖然DLJ1 發(fā)酵液中ACC 脫氨酶活性高于SZ5 發(fā)酵液,但其對油菜和小麥種子萌發(fā)的抑制作用卻弱于SZ5 發(fā)酵液。由于發(fā)酵液中混有NA 培養(yǎng)液,且NA 培養(yǎng)液對油菜和小麥種子萌發(fā)亦有明顯的抑制作用,推測發(fā)酵液對種子萌發(fā)的抑制可能更多與NA培養(yǎng)液中的成分有關(guān)。

    表4 SZ5 和DLJ1 菌劑發(fā)酵液中植物激素相關(guān)檢測結(jié)果Table 4 Plant hormone related detection results of SZ5 and DLJ1 fermentation broth

    萌發(fā)期乙烯的主要作用并不是促進(jìn)種子萌發(fā),而是通過三重反應(yīng)提高幼苗的頂土能力[19]。在幼苗出土后如果仍有大量乙烯產(chǎn)生,這些過量乙烯將會(huì)抑制幼苗生長[18]。此時(shí)微生物產(chǎn)生的ACC 脫氨酶就可以通過降解ACC 來降低乙烯產(chǎn)生量,減少乙烯對幼苗生長的抑制,促進(jìn)幼苗生長[18]。ACC 脫氨酶活性越強(qiáng),其促生能力也將越強(qiáng)[16]。這可能是產(chǎn)ACC 脫氨酶微生物的促生機(jī)制[16],也是本試驗(yàn)中萌發(fā)期DLJ1處理對油菜和小麥萌發(fā)苗生長的促生作用強(qiáng)于SZ5 處理的主要原因。

    伴隨著種子萌發(fā),植物根際有一短暫的ACC 分泌峰出現(xiàn)[19]。產(chǎn)ACC 脫氨酶的微生物可以利用ACC 作為唯一N 源生長。在萌發(fā)期接種菌劑,由于種子萌發(fā)期ACC 分泌峰的出現(xiàn),使得產(chǎn)ACC 脫氨酶活性越強(qiáng)的微生物可以獲得更多的營養(yǎng),可能會(huì)使得內(nèi)生菌在植物根際生長繁殖能力更強(qiáng),進(jìn)而對植物生長產(chǎn)生更大影響;在種子萌發(fā)后接種菌劑,此時(shí)根際ACC 分泌峰已經(jīng)過去,產(chǎn)ACC 脫氨酶的微生物可利用的ACC 量減少,可能導(dǎo)致這類微生物在植物根際的定殖能力減弱,進(jìn)而影響其促生功能的發(fā)揮。這可能是種子萌發(fā)后接種內(nèi)生菌促生效應(yīng)較低的原因。

    2.3.2 菌劑產(chǎn)Fe 載體能力 DLJ1 的MSA 發(fā)酵液發(fā)出藍(lán)綠色熒光,在415 nm 處具有明顯的吸收峰;SZ5 的MSA 發(fā)酵液既不產(chǎn)生熒光,在415 nm 處也無光吸收(表5)。表明DLJ1 具有產(chǎn)生Fe 載體的能力,而SZ5無此能力。一方面,F(xiàn)e 載體有利于微生物從周圍環(huán)境吸收Fe,造成周圍Fe 缺乏,從而抑制病原微生物生長,間接促進(jìn)植物生長[20];另一方面,F(xiàn)e 載體還可為植物提供Fe 營養(yǎng),直接促進(jìn)植物生長[20]。雖然DLJ1 處理對油菜和小麥的促生作用大于SZ5 處理,但是否與其具有產(chǎn)Fe 載體能力有關(guān)還有待進(jìn)一步研究。但可以預(yù)測,DLJ1 在抑制需Fe 量較高的病原微生物上可能具有一定作用。

    表5 SZ5 和DLJ1 菌劑產(chǎn)Fe 載體能力檢測Table 5 Detection of siderophore production ability of SZ5 and DLJ1

    3 結(jié)論與討論

    在種子萌發(fā)試驗(yàn)中,SZ5 和DLJ1 菌劑的各培養(yǎng)液處理不僅無法促進(jìn)油菜和小麥種子萌發(fā),而且NA 培養(yǎng)液和2 個(gè)菌劑發(fā)酵液處理還顯著延緩了種子的萌發(fā)速度。隨著種子萌發(fā)與生長,DLJ1 發(fā)酵液處理顯著促進(jìn)了油菜萌發(fā)苗根、莖、葉的生長以及小麥萌發(fā)苗根系的伸長,其促生效果優(yōu)于其菌懸液處理和SZ5 發(fā)酵液處理;SZ5 各處理中僅菌懸液處理對小麥萌發(fā)苗有一定的促生作用。在幼苗生長試驗(yàn)中,種子萌發(fā)后再進(jìn)行內(nèi)生菌接種處理,培養(yǎng)6 d 后發(fā)現(xiàn)其對幼苗生長的促進(jìn)作用較小。通過對2 個(gè)菌劑發(fā)酵液成分以及產(chǎn)Fe 載體能力進(jìn)行檢測,推測DLJ1 處理促生作用優(yōu)于SZ5 處理可能與其分泌的ACC 脫氨酶活性高以及具有產(chǎn)Fe 載體能力有關(guān)。

    本研究結(jié)果表明,DLJ1 菌劑在油菜生產(chǎn)上可能有一定的應(yīng)用前景,同時(shí)建議在萌發(fā)期進(jìn)行DLJ1 菌劑處理可能效果更好。

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