劉明強(qiáng), FRANKO Mladen
(1.西南科技大學(xué)理學(xué)院,四川綿陽 621010; 2.新戈里察大學(xué)環(huán)境與生命科學(xué)實(shí)驗(yàn)室,斯洛文尼亞新戈里察 SI-5000)
水體中藻類大量繁殖產(chǎn)生的藍(lán)藻類毒素嚴(yán)重威脅人類健康[1]。LR亞型微囊藻毒素,化學(xué)穩(wěn)定且易溶于水,能抑制蛋白磷酸酶PP1和PP2A活性,導(dǎo)致肝損傷[2]。世界衛(wèi)生組織規(guī)定,飲用水中微囊藻毒素LR限量為1 μg/L。因此,監(jiān)控水體中的微囊藻毒素含量是漁業(yè)和飲用水公司保證食品和飲水安全的前提。
國際標(biāo)準(zhǔn)化組織規(guī)定的微囊藻毒素檢測標(biāo)準(zhǔn)是高效液相色譜法(HPLC)[3 - 5]。HPLC法靈敏度高、特異性好,但其費(fèi)用高、效率較低,不適于實(shí)時在線現(xiàn)場分析。此外,基于光學(xué)[6 - 11,16 - 19]或電化學(xué)傳感器[12 - 15,20]生化分析法,諸如分子印跡技術(shù)[6]、免疫法[7 - 15]和蛋白質(zhì)磷酸酶抑制法(PPIA)[16 - 20]也被用于微囊藻毒素檢測。一種分子印跡膜修飾表面等離子體共振傳感器,具有較寬檢測范圍(2.1×10-9~1.0×10-6mol/L)和良好特異性,但其單次分析時間約30 min以上[6]。免疫分析法和PPIA法一般不能區(qū)分特異的毒素同系物,給出的是總毒素含量。從健康風(fēng)險的評價角度,總毒素含量是比單一毒素更重要的指標(biāo)。目前,基于PPIA或ELISA的商用試劑盒已可用于毒素檢測。但其分析通常在微量滴定板反應(yīng)阱中進(jìn)行,每個阱所需試劑量大(~100 微升/阱)且分析時間較長(≥30 min)。為減少試劑用量,Zhang等人[21]發(fā)展了微流體免疫分析法,具有0~5.0 μg/L的線性響應(yīng)范圍和20 ng/L的檢出限。但其分析程序較復(fù)雜,且分析時間超過20 min。
最近,我們發(fā)展了一種微流體注入-熱透鏡顯微技術(shù),用于微空間目標(biāo)物快速檢測,如水體中的Cr(Ⅵ),或腎損傷標(biāo)記物NGAL等[22 - 23],與傳統(tǒng)方法相比,該方法可減少分析時間和試劑用量。因此,本文擬采用微流體注入-熱透鏡顯微系統(tǒng)(μFIA-TLM)快速檢測微囊藻毒素。該系統(tǒng)結(jié)合微空間PPIA和熱透鏡技術(shù)[24],具有程序簡單、靈敏度高等特點(diǎn)。我們研究了不同因素對微囊藻毒素的影響;給出了最優(yōu)的反應(yīng)參數(shù)和該方法的檢出限,并利用所建立方法評價了某漁場水體中的毒素水平。
圖1給出了微流體注入-熱透鏡顯微系統(tǒng)示意圖。
圖1 微流體注入-熱透鏡顯微系統(tǒng)探測微囊藻毒素示意圖(未按比例)Fig.1 Schematic of μFIA-TLM for detection of microcystin(not to scale)
1.1.1微流體注入部分及原理在微流體注入部分,配置有250 μL注射器的兩個微注射泵(NE-1000,New Era Pump Systems公司,美國)分別用于驅(qū)動樣品和PP2A流動。樣品和PP2A兩支路被一Y型連接頭連接,另一端接一微抑制池(內(nèi)徑500 μm,長度2 cm,容積4 μL)。如果樣品中含有微囊藻毒素,在微抑制池里PP2A的活性將被抑制。為獲得良好混合,酶和樣品以同速率(15 μL/min)被注射入抑制池,持續(xù)30 s。在每次推送后酶支路的電子閥門將關(guān)閉。經(jīng)一定時間的抑制反應(yīng)后,抑制池中的酶(0.5 μL)以脈沖模式被迅速(80 μL/min)注射入微流控芯片中。微流控芯片為一個微反應(yīng)芯片(材料:硼玻璃;Micronit Microfluidics公司,荷蘭),其芯片內(nèi)微通道截面寬220 μm,深50 μm。與傳統(tǒng)反應(yīng)池(~1 cm)相比,此微通道所具有的高比表面積(100 cm-1)及短(分子或離子)擴(kuò)散時間(在截面內(nèi)約10 s),可以提高反應(yīng)效率,縮短反應(yīng)時間;其微小的通道體積(~10 μL)可有效減少分析試劑和樣品用量[22]。第三個微注射泵(配置5 mL注射器)將驅(qū)動反應(yīng)試劑(p-NPP)以連續(xù)模式流經(jīng)微通道(速率5 μL/min)。這種將一定量的酶以脈沖方式注射入微通道中反應(yīng)試劑連續(xù)流的方式,即為微流體流動注入。
1.1.2熱透鏡顯微檢測方法在熱透鏡顯微檢測部分[23],一束強(qiáng)度被調(diào)制(調(diào)制頻率1.03 kHz)的泵浦光(Argon激光,413 nm,100 mW,Innova 90,Coherent公司,美國)經(jīng)顯微物鏡(20倍,數(shù)值孔徑0.45,Olympus公司,日本)聚焦于微通道中,用于激勵微通道中酶與底物所生成的黃色產(chǎn)物對硝基苯酚(p-NP)。p-NP吸收光能量后在微通道激勵中心周圍引起溫度變化,從而產(chǎn)生折射率梯度(即熱透鏡效應(yīng),尺寸約10 μm)。另用一He-Ne光束(632.8 nm,25-LHP-151-230,Melles Groit公司,美國)經(jīng)同一物鏡后檢測熱透鏡效應(yīng),經(jīng)該效應(yīng)衍射后檢測光在遠(yuǎn)場(芯片后2~3 cm處)的光強(qiáng)將發(fā)生變化,用光電檢測器(PDA36A,Thorlabs公司,美國)接收光束中心的光強(qiáng)變化,即可獲得熱透鏡信號。該信號經(jīng)鎖相放大器(SR830,時間常數(shù)0.3 s,Stanford Research Systems公司,美國)提取后,由計(jì)算機(jī)記錄并存儲。
實(shí)驗(yàn)中蛋白磷酸酶PP2A(2.56 mU/μL)來自美國Cayman Chemical公司。反應(yīng)底物對硝基苯磷酸鹽(p-NPP)來自美國Thermo Scientific公司。微囊藻毒素LR(10 μg/mL)來自德國Cyanobiotech公司。牛血清白蛋白(BSA)來自美國Sigma-Aldrich公司。所用試劑均為分析純,水為去離子水。
待測實(shí)際水樣取自于Fonda漁場(SI-6320 Portoro?,斯洛文尼亞)。
不同濃度的PP2A(0.5~8 μU/μL)由pH=7.5的緩沖溶液(20 mmol/L Tris-HCl,100 mmol/L NaCl,1 mmol/L EDTA,1 mmol/L二硫蘇糖醇(DTT),5 mmol/L MgCl2和25%丙三醇)稀釋2.56 mU/μL PP2A制得。不同濃度的反應(yīng)底物(0.1~10 mmol/L)由pH=8.4的緩沖溶液(40 mmol/L Tris-HCl,34 mmol/L MgCl2,4 mmol/L EDTA,0.05 mg/mL BSA和2 mmol/L DTT)稀釋原p-NPP制得。0 ng/L~10 μg/L的微囊藻毒素LR標(biāo)準(zhǔn)液,用去離子水稀釋10 μg/mL毒素溶液獲得。
酶活力是決定反應(yīng)速率及可檢測低濃度毒素的關(guān)鍵因素。為獲得高反應(yīng)速率需要高酶活力單位,但實(shí)現(xiàn)較高的酶抑制率(以獲到更低的毒素檢出限)又需低的酶活力單位。實(shí)驗(yàn)研究了無毒素時不同活力單位的酶PP2A與反應(yīng)底物p-NPP的反應(yīng)產(chǎn)物(其濃度由熱透鏡信號的大小反映)隨時間的變化。不同的反應(yīng)時間可通過改變微通道中的流速或熱透鏡顯微探測相對于微通道Y節(jié)點(diǎn)的位置實(shí)現(xiàn)。圖2(a)顯示當(dāng)酶和底物的反應(yīng)時間(tR)為4 min時,在較大的酶活力單位(如8 μU/μL)下熱透鏡信號為其穩(wěn)態(tài)時(在8 μU/μL時大于6 min)信號的90%(即90%的反應(yīng)已完成);而在較小的活力單位(如2 μU/μL)下,4 min 時的熱透鏡信號約為其穩(wěn)態(tài)信號的70%(即70%的反應(yīng)已完成)。因此,在后續(xù)實(shí)驗(yàn)中我們固定反應(yīng)時間為4 min。
底物p-NPP溶液呈淡黃色,吸收激勵光(413 nm)后產(chǎn)生的背景信號將對目標(biāo)產(chǎn)物檢測帶來干擾。我們研究了底物濃度對檢測信噪比(S/N)的影響。S為酶活力單位不為零(如2 μU/μL)時產(chǎn)物的熱透鏡信號,N為無酶時底物的熱透鏡信號的標(biāo)準(zhǔn)差。從圖2(b)可以看出當(dāng)S/N達(dá)到最大時,對應(yīng)最優(yōu)p-NPP濃度是2 mmol/L。
圖2(c)展示了PP2A和樣品間的抑制反應(yīng)時間(tI)對熱透鏡信號的影響。定義無毒素作用時產(chǎn)物p-NPP 的熱透鏡信號為S0,毒素作用下p-NPP的信號為S1,則酶抑制率為(S0-S1)/S0。在4 μL的抑制反應(yīng)池里,約80%的酶抑制在2 min內(nèi)完成。因此選擇2 min作為后續(xù)實(shí)驗(yàn)中的抑制時間。加上酶和底物的反應(yīng)時間4 min,可得出每次分析時間約6 min,僅為傳統(tǒng)微量滴定板反應(yīng)阱中的分析時間的1/5。
圖2 (a)不同酶活力單位下PP2A-p -NPP反應(yīng)生成物的熱透鏡信號隨時間變化;(b)不同底物p -NPP濃度下的探測信噪比S/N;(c)抑制反應(yīng)時間對酶抑制度的影響;(d)不同濃度毒素對四個酶活力單位的酶抑制效率(圖中誤差棒代表3次實(shí)驗(yàn)結(jié)果的標(biāo)準(zhǔn)偏差)Fig.2 (a) Progress curve for PP2A-p -NPP reaction at different enzymatic units;(b) signal-to-noise ratio(S/N) at different p -NPP concentrations;(c) impact of inhibition time on the level of enzyme inhibition;(d) inhibition rate by different toxin concentrations at four enzymatic units(Error bars denote the standard deviation of three measurement results)
在優(yōu)化的反應(yīng)條件下,研究了PP2A被不同濃度毒素抑制后的產(chǎn)物p-NPP的熱透鏡信號的減小。圖2(d)給出了不同毒素濃度時的酶抑制率,其結(jié)果整理于表1。從圖2(d)和表1可看出,隨著酶活力單位的減小(直至0.5 μU/μL),抑制酶的毒素范圍變窄,可檢測的毒素濃度相應(yīng)變小。檢出限定義為S0-S1=3σ時對應(yīng)的毒素濃度(σ為S0的標(biāo)準(zhǔn)偏差)。在酶活力單位0.5 μU/μL時測量誤差較大,其檢出限與1 μU/μL時相當(dāng)。在1 μU/μL的酶活力單位下,抑制酶的毒素范圍為10~1 000 ng/L,檢出限約為20 ng/L。該檢出限是世衛(wèi)組織規(guī)定的水中毒素濃度上限的1/50,以及商用微量滴定板PPIA分析盒(Abraxis公司)的標(biāo)稱檢出限的1/5。
表1 不同酶活力單位下基于PPIA的微流體注入-光熱顯微系統(tǒng)檢測微囊藻毒素的性能
圖3 樣品標(biāo)準(zhǔn)加入回收率(n=3)Fig.3 Recovery rate of spiked samples(n=3)
另外,我們評估了來自Fonda漁場的水樣中的毒素水平。該水樣分成三組(每組5個樣品)進(jìn)行測試:第一組和第二組加入了100 ng/L的標(biāo)準(zhǔn)微囊藻毒素樣品;第三組是未經(jīng)處理的水樣。其中第二組在加入標(biāo)準(zhǔn)樣品前用0.45 μm孔徑的濾膜進(jìn)行了過濾。經(jīng)該微流體注入-光熱顯微系統(tǒng)檢測后,發(fā)現(xiàn)第三組樣品沒有引起明顯的酶抑制反應(yīng)。圖3顯示第一組和第二組中毒素的回收率分別是89.6±13.5%和93.2±11.7%。這意味著在原水樣中雜質(zhì)對PPIA幾乎沒有影響。可以認(rèn)為實(shí)際水樣中的毒素濃度低于該檢測系統(tǒng)的檢出限20 ng/L。
建立了基于蛋白磷酸酶抑制的微流體注入-熱透鏡顯微檢測系統(tǒng)。該系統(tǒng)被證實(shí)適用于高靈敏的快速檢測微囊藻毒素。優(yōu)化了反應(yīng)和檢測條件,獲得了約為20 ng/L的毒素檢出限。受益于微通道內(nèi)高反應(yīng)速率,分析時間從微量滴定板反應(yīng)阱中的30 min縮短到微流控芯片內(nèi)的約6 min,以及微空間的小尺寸,單次分析酶的用量(~1 μL) 相比微量滴定板中酶的用量減少了一個數(shù)量級(~50 μL)。檢測來自于Fonda漁場的水樣發(fā)現(xiàn),水樣中微囊藻毒素含量低于儀器檢出限,水體適于魚類的安全養(yǎng)殖。該分析平臺可用于微囊藻毒素的實(shí)時現(xiàn)場監(jiān)控,為可能的微囊藻毒素污染提供預(yù)警。