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    犬副流感病毒D121004株的分離鑒定及其F基因遺傳進化分析

    2019-02-22 03:20:32徐守振
    中國動物檢疫 2019年2期
    關(guān)鍵詞:登錄號病料細胞培養(yǎng)

    李 超,馬 帥,徐守振

    (1. 中國動物衛(wèi)生與流行病學(xué)中心,山東青島 266032;2. 青島市動物疫病預(yù)防控制中心,山東青島 266100;3. 青島農(nóng)業(yè)大學(xué)動物醫(yī)學(xué)院,山東青島 266109)

    犬副流感病毒感染(Canine parainfluenza virus infection)是由犬副流感病毒(Canine parainfluenza virus,CPIV)引起的,以卡他性鼻炎和急性支氣管炎為病理特征的一種犬接觸性病毒性傳染病,主要表現(xiàn)為噴嚏、咳嗽以及流黏液性鼻涕等急性呼吸道炎癥[1]。根據(jù)國際病毒分類委員會最新分類標準,CPIV為副黏病毒亞科茹布拉病毒屬成員[2]。CPIV首先由Binn從患呼吸道病的犬中分離獲得。目前,CPIV感染在世界各國普遍存在,是危害犬業(yè)的重要傳染病之一[3]。

    CPIV基因組主要編碼6種蛋白:大蛋白( L)、血凝素神經(jīng)氨酸酶(HN)、核衣殼蛋白(NP)、融合蛋白(F)、磷蛋白(P) 和基質(zhì)蛋白(M),其中HN和F 蛋白突出于囊膜形成纖突,分別介導(dǎo)病毒吸附和穿入細胞[4],而F蛋白是產(chǎn)生中和抗體的主要保護性抗原,在病毒免疫中占有重要地位,由其誘導(dǎo)的免疫反應(yīng)能夠阻止病毒感染[5],故分離鑒定CPIV流行毒株,分析F蛋白基因序列的遺傳變異情況,對于CPIV感染的綜合防控具有重要意義。

    1 材料與方法

    1.1 試驗材料

    1.1.1 病料樣品 樣品來自2015年江蘇省射陽縣某規(guī)?;雀袢B(yǎng)殖場送檢的,臨床表現(xiàn)呼吸道癥狀的病死比格犬,經(jīng)膠體金試紙檢測鼻腔拭子為CPIV陽性。無菌采集病死犬腦、肺臟等組織樣品,保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.1.2 試劑 瓊脂糖、氯仿、無水乙醇、EDTA、溴酚蘭:購自天津化學(xué)試劑三廠;RNA酶抑制劑、Taq DNA聚合酶、dNTP、2 000 bp DNA Marker、PMD19-T載體試劑盒:購自大連寶生物工程有限公司;DMEM、胎牛血清:購自GIBCO公司;反轉(zhuǎn)錄酶、EasyPure Viral DNA/RNA提取試劑盒:購自北京全式金生物技術(shù)有限公司公司;瓊脂糖凝膠回收試劑盒:購自O(shè)MEGA公司。

    1.1.3 細胞 0.5%雞紅細胞懸液、Marc-145細胞:本實驗室制備和保存。

    1.1.4 儀器 CO2細胞培養(yǎng)箱、紫外凝膠成像系統(tǒng)、組織勻漿機、B2型生物安全柜、高速冷凍離心機、PCR擴增儀、低速離心機、掌上離心機、37 ℃恒溫水浴鍋、微波爐、冰箱、超低溫冰柜(-80 ℃)、萬分位分析天平、核酸電泳擴增儀。

    1.2 試驗方法

    1.2.1 病料處理準備 將無菌采集的病死犬腦和肺臟樣品,加入DMEM溶液后充分研磨,再加入1%雙抗,制成10%的懸液;將病料研磨液反復(fù)凍融3次,5 000 r/min 4 ℃離心20 min,取上清液,過濾除菌后-80 ℃保存?zhèn)溆谩?/p>

    1.2.2 病毒分離 將Marc-145細胞復(fù)蘇、傳代,在細胞傳代后約22 h進行病毒分離。分離方式:采用5%比例吸附接種,置37 ℃ 5% CO2培養(yǎng)箱中吸附2 h,棄掉病料上清液,換含2%胎牛血清的維持液,繼續(xù)培養(yǎng)24 h,觀察細胞病變情況,盲傳3代;將每代的細胞培養(yǎng)液均保存于-80 ℃。設(shè)未接種病料組織研磨液上清的Marc-145細胞作為對照,采用第3代盲傳的細胞培養(yǎng)液上清進行病毒鑒定。

    1.2.3 雞紅細胞凝集特性試驗鑒定 取SPF雞血液,制備0.5%的新鮮雞紅細胞懸液;將細胞培養(yǎng)物(F3)反復(fù)凍融3次后,離心取上清液,參考文獻[6],采用微量法,4 ℃條件下,在96孔V型板上對細胞培養(yǎng)物上清進行紅細胞凝集試驗(HA),測定細胞培養(yǎng)上清對雞紅細胞的血凝特性及病毒血凝效價,同時以正常細胞液作對照。

    1.2.4 細胞培養(yǎng)物RT-PCR鑒定 參照文獻[3-8]建立的CPIV RT-PCR鑒定方法,由北京六合華大基因科技股份有限公司合成可擴增NP蛋白的基因引物CPIV-1/CPIV-2;取細胞培養(yǎng)上清液,采用EasyPure Viral DNA/RNA提取試劑盒提取病毒RNA,并進行RT-PCR鑒定。同時設(shè)陽性對照組(梅里亞犬副流感病毒活疫苗株)及陰性對照組。

    1.2.5 F蛋白全基因RT-PCR擴增及測序 參照文獻[5]合成CPIV F蛋白全基因擴增引物CPIV-P/CPIV-F(表1),采用RT-PCR方法進行F蛋白全基因擴增,擴增產(chǎn)物連接載體后送至北京六合華大基因科技股份有限公司進行序列測定。

    表1 本試驗應(yīng)用的引物序列

    1.2.6 F蛋白全基因核苷酸同源性分析 從GeneBank下載CPIV參比序列(表2),采用MegAlign軟件,將參比毒株與分離株的F蛋白全基因序列進行核苷酸的同源性分析。

    表2 CPIV參比毒株詳情

    1.2.7 F蛋白全基因遺傳進化分析 將參比序列與分離株序列導(dǎo)入MEGA5.1軟件,采用最大擬然法繪制遺傳發(fā)育進化樹,進行F蛋白全基因遺傳進化分析。

    2 結(jié)果

    2.1 細胞病變觀察

    病料上清采用單層吸附接種于猴腎Marc-145細胞后,在盲傳至第3代時,出現(xiàn)較為明顯的細胞病變(CPE),具體表現(xiàn)為細胞邊緣不清晰、拉網(wǎng)、聚堆等,而未接種病料上清的Marc-145細胞,培養(yǎng)96 h后仍生長良好,邊緣清晰,形狀統(tǒng)一(圖1)。將第3代細胞培養(yǎng)物上清置于-80 ℃冰箱凍存,做病毒鑒定。

    圖1 Marc-145細胞的細胞病變效應(yīng)

    2.2 雞紅細胞凝集試驗鑒定

    雞紅細胞凝集鑒定結(jié)果顯示:4 ℃條件下,Marc-145細胞培養(yǎng)物液上清可對0.5%的新鮮雞紅細胞懸液產(chǎn)生顯著的凝集作用,病毒血凝(HA)效價為26,未接種病料上清液的正常細胞液不產(chǎn)生雞紅細胞凝集現(xiàn)象。

    2.3 RT-PCR鑒定

    細胞培養(yǎng)物上清液經(jīng)RT-PCR擴增,取 PCR產(chǎn)物進行凝膠電泳分析,可見細胞培養(yǎng)上清液與陽性對照在約667 bp處出現(xiàn)明亮條帶,而陰性對照無明顯條帶(圖2),表明成功分離到1株CPIV,將其命名為CPIV-D121004。

    圖2 細胞培養(yǎng)上清液RT-PCR鑒定

    2.4 F蛋白全基因擴增

    對CPIV F蛋白全基因測序引物進行RTPCR擴增,取擴增產(chǎn)物進行凝膠電泳分析,可見在約1 825 bp處出現(xiàn)明亮單一條帶(圖3),顯示成功擴增出CPIV-D121004 株的 F蛋白全基因。

    2.5 F基因核苷酸同源性分析

    圖3 F蛋白全基因PCR擴增結(jié)果

    圖4 CPIV-D121004與參比毒株的F基因核苷酸同源性分析結(jié)果

    F基因同源性分析結(jié)果顯示,分離株CPIV-D121004F基 因 與FC毒 株(2007年,登錄號EF546392.1)核苷酸同源性最高,為99.5%,與我國的FA毒株(2007年,登錄號EF487542.1)核苷酸同源性為99.3%,與韓國的毒(CDV)、犬細小病毒(CPV)、CPIV的多重PCR方法。這些方法的特異性、靈敏性和重復(fù)性均較好,為CPIV的分離鑒定及流行病學(xué)調(diào)查奠定了基礎(chǔ)。CPIV具有凝集雞紅細胞的能力,與其他具有血凝性的病毒不同,它需要在4 ℃條件下進行。閆喜軍等[10]采用HA/HI試驗進行CPIV血清抗體流行病學(xué)調(diào)查,證明4 ℃條件下可以進行CPIV的快速鑒定試驗。CPIV可在Vero、Marc-145等細胞中良好生長,相對于CDV而言,CPIV較容易通過細胞接種分離獲得,方便進一步研究。

    F蛋白是CPIV的主要保護性抗原,其基因的遺傳變異對于CPIV 預(yù)防有著重要影響,特別是重要抗原位點的變化可能會導(dǎo)致疫苗免疫保護1168-1毒株(2009年,登錄號AF014953)核苷酸同源性為99.0%;與韓國的D277毒株(2008年,登錄號KC237065.1)同源性最低,為96.0%。總體來說,該分離毒株的F基因相對保守,與其他參考毒株的核苷酸同源性普遍較高。詳細分析結(jié)果見圖4。

    2.6 F基因遺傳進化分析

    遺傳進化分析顯示,CPIV-D121004與2007年的FC毒株(登錄號EF546392.1)遺傳關(guān)系最近。兩毒株與2007年分離自我國的FA毒株(登錄號EF487542.1),與1980年分離自美國的CPIV+(登錄號JQ743320.1)、CPIV-(登錄號JQ743320.1)毒株,以及與2009年分離自韓國的1168-1毒株(登錄號AF014953)共同組成一小分支,在進化樹上形成一簇(圖5)。

    3 討論

    圖5 分離毒株與參比毒株F基因序列系統(tǒng)發(fā)育進化樹

    劉騰飛[3]、趙國清等[6]、王鳳雪等[7]、康泰等[8]、簡子健等[9]先后建立了針對CPIV的特異性RT-PCR檢測方法,以及針對犬瘟熱病不全面[4]。本試驗對CPIV-D121004株F基因與參考毒株進行了同源性分析,并基于F基因繪制了遺傳進化樹,發(fā)現(xiàn)CPIV-D121004的F基因相對保守,與其他參考毒株的核苷酸同源性普遍較高,這與孫明等[4]、閆喜軍[5]等研究結(jié)果一致。遺傳進化分析顯示,CPIV-D121004與分離自我國的CPIV-FA毒株(2007年,登錄號為EF487542.1)和疫苗毒株CPIV-FC(2007年,登錄號為EF546392.1)處于同一個進化分支,說明該分離株未出現(xiàn)大的遺傳變異。下一步需要對分離株的免疫原性進行研究,探究其是否具有作為候選疫苗株的潛力。

    近年來,隨著生物醫(yī)藥的蓬勃發(fā)展,比格犬作為實驗動物在醫(yī)藥評價中的作用日益顯著。CPIV對比格犬的危害程度雖不如CDV和CPV嚴重,但是該病毒感染犬后,可使機體抵抗力顯著降低,出現(xiàn)發(fā)熱、咳嗽、流涕等臨床癥狀,繼而容易導(dǎo)致巴氏桿菌、大腸桿菌等其他病原菌侵入而發(fā)生感染[11]。CPIV是秋冬季節(jié)誘發(fā)比格犬呼吸道癥狀的主要病原體,但抵抗力不強,在酸堿環(huán)境中易被破壞而失活,一般的常見消毒藥均可將其殺死,因此當(dāng)暴發(fā)CPIV誘發(fā)的犬呼吸道傳染病時,應(yīng)及時做好環(huán)境消毒工作,防止細菌繼發(fā)感染。

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