楊真禎, 朱文思, 肖 珍, 朱杰寧, 符永恒, 林秋雄, 譚虹虹, 單志新, 吳書(shū)林△
[1華南理工大學(xué)醫(yī)學(xué)院, 廣東 廣州 510632; 2廣東省心血管病研究所, 廣東省人民醫(yī)院(廣東省醫(yī)學(xué)科學(xué)院), 廣東 廣州 510080; 3廣東省婦幼保健院, 廣東 廣州 511400]
心房顫動(dòng)(atrial fibrillation, AF)又稱(chēng)房顫,是臨床常見(jiàn)的心律失常之一?,F(xiàn)有的房顫治療策略還存在局限,不良反應(yīng)風(fēng)險(xiǎn)發(fā)生率較高,療效不確切,遠(yuǎn)期復(fù)發(fā)率較高[1-2]。持續(xù)的房顫可導(dǎo)致電重構(gòu)和結(jié)構(gòu)重構(gòu),而心肌纖維化是結(jié)構(gòu)重構(gòu)的重要特征,現(xiàn)有的實(shí)驗(yàn)及臨床數(shù)據(jù)表明,多種因素參與心肌纖維化及房顫的發(fā)生過(guò)程,包括氧化應(yīng)激、鈣超載、炎癥以及肌成纖維細(xì)胞的激活等[3]。心房纖維化對(duì)心律失常的維持起到關(guān)鍵作用[2, 4]。房顫患者心臟纖維化組織的含量及分布與房顫發(fā)生的機(jī)制、并發(fā)癥風(fēng)險(xiǎn)及治療效果相關(guān)[4-5]。心肌纖維化是房顫重要的病理特征,導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的過(guò)度沉積,引起心肌重構(gòu)甚至心力衰竭[6]。目前對(duì)于房顫及心肌纖維化的研究尚不深入,相關(guān)的病理生理機(jī)制仍不清楚。
微小RNA(microRNA,miRNA, miR)是在植物、動(dòng)物和一些病毒中發(fā)現(xiàn)的非編碼RNA,含有約22個(gè)核苷酸,通過(guò)影響靶基因mRNA穩(wěn)定性和翻譯來(lái)參與多細(xì)胞生物體中基因表達(dá)的轉(zhuǎn)錄后調(diào)控[7-8]。miRNA在多種基因調(diào)控途徑中發(fā)揮關(guān)鍵作用,包括機(jī)體發(fā)育,造血干細(xì)胞分化,細(xì)胞凋亡,細(xì)胞增殖及器官發(fā)育等[9]。miRNA參與調(diào)控多種心血管疾病,包括冠狀動(dòng)脈粥樣硬化、心肌纖維化、心力衰竭及心律失常等。例如,miR-21通過(guò)激活ERK信號(hào)通路從而促進(jìn)纖維化的進(jìn)展以及房顫的易感性[10];miR-29在犬房顫心房組織以及血漿中表達(dá)降低,而膠原基質(zhì)同步增加,纖維化水平增高,而其機(jī)制主要是miR-29能阻斷轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子β1(transforming growth factor β1,TGF-β1)對(duì)膠原纖維以及細(xì)胞外基質(zhì)蛋白分泌的促進(jìn)作用;此外,miR-30和miR-590均能通過(guò)纖維化參與房顫的發(fā)展[11-12]。
我們前期miRNA表達(dá)譜芯片檢測(cè)發(fā)現(xiàn),miR-23b-3p在風(fēng)濕性心臟病伴房顫患者心耳組織中表達(dá)顯著增強(qiáng),但其對(duì)心肌纖維化的作用尚不明確。本文將初步研究miR-23b-3p在人心肌成纖維細(xì)胞中對(duì)纖維化相關(guān)基因表達(dá)的調(diào)控作用,明確miR-23b-3p的作用靶基因。
限制性?xún)?nèi)切酶XhoI和EcoR I、轉(zhuǎn)染試劑Lipofectamine 2000、TRIzol、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、4×SDS protein loading buffer、2×SYBR Green Mix和RNAase-free water(TaKaRa);miR-23b-3p mimic和TGFBR3 siRNA(廣州銳博);BCA蛋白定量試劑盒和蛋白Marker(Thermo);SDS-PAGE凝膠配制試劑盒(Bio-Rad);抗GAPDH和COL3A1抗體(Protein Technology);抗COL1A1抗體(Thermo);抗ACTA2抗體(Abcam);抗TGFBR3 抗體(Affinity);PVDF膜和ECL發(fā)光液(Millipore);DMEM/F12細(xì)胞培養(yǎng)液、特級(jí)澳洲胎牛血清和0.25% EDTA-胰蛋白酶(Gibco);其它生化試劑均為進(jìn)口分裝或國(guó)產(chǎn)分析純。
2.1人心房肌成纖維細(xì)胞(human atrial fibroblasts,HAFs)原代分離培養(yǎng)和處理 將經(jīng)患者知情同意的廢棄的手術(shù)切除的新鮮心耳組織(本研究經(jīng)廣東省人民醫(yī)院倫理委員會(huì)批準(zhǔn),手術(shù)標(biāo)本來(lái)源:廣東省心血管病研究所)置于預(yù)冷的PBS緩沖液中,只剪取近心房組織,去除淤血。用0.25% EDTA-胰蛋白酶消化法分離心房肌成纖維細(xì)胞。離心棄上清,沉淀用完全培養(yǎng)液(含10 %胎牛血清、1×105U/L 青霉素和100 mg/L 鏈霉素的DMEM/F12培養(yǎng)液)重懸,接種于25 cm2細(xì)胞培養(yǎng)瓶中,再置于37 ℃、5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)。培養(yǎng)24 h后,更換一次完全培養(yǎng)液。待細(xì)胞密度達(dá)90%時(shí),消化傳代。取第3~7代細(xì)胞消化后鋪于孔板內(nèi),分別將100 nmol/L scrambled對(duì)照、 miR-23b-3p mimic和TGFBR3 siRNA轉(zhuǎn)染到HAFs中,24 h后結(jié)束實(shí)驗(yàn)。
2.2細(xì)胞免疫熒光鑒定HAFs中ACTA2表達(dá) 第3代的HAFs穩(wěn)定生長(zhǎng)后,用預(yù)熱的PBS清洗3遍后,4%多聚甲醛室溫固定30 min,用0.2% Triton X-100透化5 min,5% BSA室溫封閉2 h,加ACTA2 Ⅰ抗(1∶500),4 ℃孵育過(guò)夜,加熒光Ⅱ抗室溫避光孵育1 h,加入含核染料DAPI的封片劑覆蓋細(xì)胞,室溫孵育5 min后激光共聚焦顯微鏡下觀(guān)察拍照。
2.3CCK-8、EdU和Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)HAFs活力、增殖和遷移能力 在96孔板中接種密度合適的HAFs,穩(wěn)定生長(zhǎng)24 h后,分別轉(zhuǎn)染scrambled對(duì)照和miR-23b-3p mimic。24 h后每孔加入培養(yǎng)液總體積10%的CCK solution,混勻培養(yǎng)4 h后檢測(cè)450 nm處的吸光度(A)值。接種合適密度的HAFs于confocal皿中,穩(wěn)定生長(zhǎng)后按上述分組轉(zhuǎn)染細(xì)胞,24 h后加入EdU工作液,使其終濃度為50 μmol/L,繼續(xù)培養(yǎng)12 h,PBS清洗并用4%多聚甲醛固定后按說(shuō)明書(shū)方法染色(Apollo?567染增殖細(xì)胞核),在激光共聚焦顯微鏡下觀(guān)察并拍照。在Transwell小室內(nèi)接種合適密度的HAFs,穩(wěn)定生長(zhǎng)后按上述分組轉(zhuǎn)染細(xì)胞,24 h后更換不同濃度血清的培養(yǎng)液,小室外面血清濃度高于小室內(nèi),過(guò)夜后用PBS清洗細(xì)胞并用4%多聚甲醛室溫固定30 min,用棉簽擦除小室內(nèi)底部細(xì)胞,結(jié)晶紫染色液染小室外底部細(xì)胞20 min,顯微鏡下觀(guān)察并拍照。
2.4RT-qPCR檢測(cè)TGFBR3和纖維化標(biāo)志物mRNA及miR-23b-3p的表達(dá)情況 用TRIzol法提取HAFs中總RNA。取1 μg總RNA,加入5×逆轉(zhuǎn)錄試劑4 μL(逆轉(zhuǎn)錄試劑盒),用Oligo (dT)15和random primers逆轉(zhuǎn)錄出cDNA用于檢測(cè)TGFBR3及纖維化標(biāo)志物的 mRNA水平,以GAPDH為內(nèi)參照。取1.0 μg總RNA,用miR-23b-3p特異的RT引物逆轉(zhuǎn)錄出cDNA用于檢測(cè)miR-23b-3p水平,以U6為內(nèi)參照。在ViiA 7 Quantitative PCR System(Applied Biosystems)進(jìn)行PCR和結(jié)果分析。以2-ΔΔCt法計(jì)算TGFBR3、纖維化標(biāo)志物和miR-23b-3p的相對(duì)表達(dá)水平。引物序列見(jiàn)表1。
表1 RT-qPCR引物序列
2.5Western blot法檢測(cè)蛋白水平 處理后的HAFs中加入RIPA蛋白裂解液,冰上裂解,收集裂解液于4 ℃、12 000 r/min離心10 min,取上清,蛋白質(zhì)定量后分裝,加入4×上樣緩沖液,99 ℃加熱10 min使蛋白質(zhì)變性,然后進(jìn)行SDS-PAGE。用PVDF膜轉(zhuǎn)膜,5%脫脂奶粉封閉1 h,分別用相應(yīng)的抗體[anti-COL1A1(1∶2 000)、anti-COL3A1(1∶2 000)、anti-ACTA2(1∶2 000)和anti-TGFBR3(1∶1 000)]4 ℃孵育過(guò)夜。TBST洗膜后,加入Ⅱ抗(1∶5 000)室溫孵育1 h。ECL發(fā)光試劑盒顯影,以GAPDH(1∶5 000)為內(nèi)參照,掃描灰度值并分析蛋白表達(dá)相對(duì)含量。
2.6雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證 miR-23b-3p與TGFBR3 3’-UTR的結(jié)合作用 參照我們已報(bào)道方法[13]分別構(gòu)建包含miR-23b-3p潛在結(jié)合序列的TGFBR3 3’UTR重組螢光素酶報(bào)告質(zhì)粒pGL3-TGFBR3-285-292。將HEK293細(xì)胞(細(xì)胞密度約為每孔1×105)轉(zhuǎn)染1 μg重組螢光素酶報(bào)告質(zhì)粒、100 nmol/L miR-23b-3p mimic或miR-23b-3p-Mut以及20 ng pRL-TK(表達(dá)海腎螢光素酶的內(nèi)參照質(zhì)粒)。轉(zhuǎn)染后24 h,測(cè)定螢火蟲(chóng)螢光素酶(firefly luciferase, FL)及海腎螢光素酶(Renillaluciferase, RL)催化底物的發(fā)光強(qiáng)度。FL/RL的變化可反映miR-23b-3p與TGFBR3 3’UTR結(jié)合的能力。
用SPSS 21.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)誤(mean±SEM)表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn);多組間比較采用單因素方差分析(one-way ANOVA),并用Bonferroni校正的t檢驗(yàn)進(jìn)行組間兩兩比較。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
原代分離的HAFs第2天觀(guān)察細(xì)胞因雜質(zhì)較多,只可見(jiàn)少量細(xì)胞,呈圓形,單個(gè)存在。3天后觀(guān)察,細(xì)胞伸展,細(xì)胞呈長(zhǎng)梭形,胞核明顯。約1周后,細(xì)胞融合度達(dá)到90%,按1∶2比例傳代培養(yǎng)。本研究所用HAFs為第3~7代細(xì)胞,其成纖維細(xì)胞表型在細(xì)胞因子刺激下逐步向肌成纖維細(xì)胞表型轉(zhuǎn)化,大量分泌細(xì)胞外基質(zhì),ACTA2表達(dá)增多,利用細(xì)胞免疫熒光染色實(shí)驗(yàn)對(duì)HAFs表達(dá)的ACTA2進(jìn)行鑒定,見(jiàn)圖1。
我們將100 nmol/L miR-23b-3p mimic轉(zhuǎn)染入HAFs中,RT-qPCR結(jié)果顯示,轉(zhuǎn)染miR-23b-3p mi-mic的HAFs中miR-23b-3p水平顯著升高(P<0.01),見(jiàn)圖2A。CCK-8及EdU檢測(cè)顯示,與對(duì)照組相比,HAFs過(guò)表達(dá)miR-23b-3p后,細(xì)胞活力和增殖能力無(wú)顯著差異,見(jiàn)圖2B、C。同樣地,Transwell檢測(cè)顯示,過(guò)表達(dá)miR-23b-3p對(duì)細(xì)胞遷移能力無(wú)明顯影響,見(jiàn)圖2D。
Figure 1.The morphology and identification of HAFs. A: cultured HAFs under light microscope (the scale bar=100 μm); B: expression of ACTA2 in HAFs detected by immunofluorescence staining assay (the scale bar=50 μm).
圖1人心房肌成纖維細(xì)胞的分離及ACTA2表達(dá)鑒定
Figure 2.miR-23b-3p had no significant effect on the viability, proliferation and migration of HAFs. A: the expression level of miR-23b-3p in HAFs transfected with miR-23b-3p mimic was detected by RT-qPCR; B~D: the effects of miR-23b-3p on the viability, proliferation and migration of HAFs were detected by CCK-8, EdU and Transwell assays. Scale bar=100 μm. Mean±SEM.n=3.**P<0.01vsscrambled group.
圖2miR-23b-3p對(duì)人心房肌成纖維細(xì)胞活力、增殖及遷移能力的影響
RT-qPCR和Western blot檢測(cè)結(jié)果顯示,HAFs過(guò)表達(dá)miR-23b-3p后,纖維化相關(guān)基因COL1A1、COL3A1和ACTA2的mRNA和蛋白表達(dá)均顯著升高(P<0.05,P<0.01),提示miR-23b-3p可在轉(zhuǎn)錄水平促進(jìn)纖維化相關(guān)基因的表達(dá),見(jiàn)圖3。
利用miRDB(www.mirdb.org)和TargetScan (www.targetscan.org)數(shù)據(jù)庫(kù)對(duì)TGFBR3及miR-23b-3p進(jìn)行序列分析顯示,TGFBR3 3’UTR的285~292堿基可能是miR-23b-3p的結(jié)合位點(diǎn)。雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)證實(shí),miR-23b-3p可與TGFBR3 3’UTR的285~292位點(diǎn)特異性結(jié)合,而將miR-23b-3p序列突變后,miR-23b-3p-Mut不能與TGFBR3 3’UTR結(jié)合,見(jiàn)圖4A。RT-qPCR和Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn),過(guò)表達(dá)miR-23b-3p的HAFs中,TGFBR3的mRNA和蛋白表達(dá)水平均顯著降低,提示miR-23b-3p可在轉(zhuǎn)錄水平調(diào)控TGFBR3的表達(dá)(P<0.05或P<0.01),見(jiàn)圖4B。在HAFs中,利用TGFBR3 siRNA沉默靶基因TGFBR3的表達(dá)以及過(guò)表達(dá)miR-23b-3p后,Western blot檢測(cè)顯示,TGFBR3 的表達(dá)均顯著降低,同時(shí)p-Smad3水平以及纖維化相關(guān)蛋白COL1A1、COL3A1和ACTA2的表達(dá)水平均一致性升高(P<0.05或P<0.01),見(jiàn)圖4C。
近期研究表明,miR-23b在膿毒癥引起的心功能障礙中表達(dá)上調(diào),miR-23b靶向抑制TGIF1,激活TGF-β1/Smad2/3信號(hào)通路,進(jìn)而促進(jìn)心肌成纖維細(xì)胞的分化,miR-23b還可靶向抑制PTEN,激活A(yù)KT/N-cadherin信號(hào)通路,從而導(dǎo)致細(xì)胞外基質(zhì)的沉積[14]。另有研究表明,miR-23b-3p在充血性心力衰竭患者外周血中表達(dá)上調(diào),提示miRNA可能在心力衰竭的病理過(guò)程中起作用,因?yàn)樗鼈兛赡苌婕芭c疾病進(jìn)展有關(guān)的途徑,包括纖維化[15]。miR-23b-3p在心臟疾病中的發(fā)揮重要作用,但其心肌纖維中的作用機(jī)制尚未完全闡明。
在本文中,我們成功從房顫患者心耳組織中分離并培養(yǎng)HAFs,通過(guò)ACTA2免疫熒光染色證實(shí),分離得到的細(xì)胞為表達(dá)ACTA2表型的肌成纖維細(xì)胞,適合用于纖維化表型相關(guān)的研究。鑒于心肌成纖維細(xì)胞的增殖和遷移也是心肌纖維化的重要特征[16]。我們分別通過(guò)CCK-8、EdU染色和Transwell實(shí)驗(yàn)檢測(cè)HAFs的活力、增殖和遷移能力,結(jié)果顯示miR-23b-3p對(duì)HAFs的活力、增殖及遷移能力無(wú)明顯影響。進(jìn)一步,通過(guò)將miR-23b-3p mimic轉(zhuǎn)染入HAFs,證實(shí)miR-23b-3p可顯著增強(qiáng)纖維化相關(guān)基因COL1A1、COL3A1和ACTA2表達(dá),從而明確miR-23b-3p主要通過(guò)增強(qiáng)纖維化相關(guān)基因表達(dá)來(lái)發(fā)揮促進(jìn)心肌纖維化的作用。
Figure 3.miR-23b-3p enhanced the expression of fibrosis-related genes in HAFs. A: the mRNA expression of COL1A1, COL3A1 and ACTA2 was determined by RT-qPCR assay; B: the fibrosis-related protein expression was determined by Western blot. Mean±SEM.n=3.*P<0.05,**P<0.01 scrambled group.
圖3miR-23b-3p促進(jìn)人心房肌成纖維細(xì)胞中纖維化相關(guān)基因表達(dá)
已有的研究報(bào)道,多種microRNA參與調(diào)控心肌纖維化過(guò)程,如miR-29a可靶向VEGF-A/MAPK信號(hào)通路,抑制心肌成纖維細(xì)胞纖維化水平及增殖[17];miR-199a-5p靶向Sirt1促進(jìn)心肌成纖維細(xì)胞中心肌纖維化相關(guān)基因表達(dá)[18];miR-24可抑制心肌成纖維細(xì)胞中纖維化相關(guān)基因表達(dá),并且降低心肌成纖維細(xì)胞的增殖及遷移能力[19];我們通過(guò)序列分析提示TGFBR3可能是miR-23b-3p的靶基因,通過(guò)雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)證實(shí)miR-23b-3p與TGFBR3 3’UTR有特異性結(jié)合作用;進(jìn)一步,我們證實(shí)miR-23b-3p可在mRNA和蛋白水平抑制HAFs中TGFBR3的表達(dá),說(shuō)明miR-23b-3p在轉(zhuǎn)錄水平抑制TGFBR3表達(dá)。功能實(shí)驗(yàn)結(jié)果表明,miR-23b-3p和TGFBR3 siRNA可一致性地促進(jìn)HAFs中纖維化相關(guān)基因表達(dá)。因此,上述結(jié)果證實(shí)TGFBR3是miR-23b-3p的靶基因,并介導(dǎo)了miR-23b-3p發(fā)揮促進(jìn)HAFs中纖維化相關(guān)基因表達(dá)的作用。
TGFBR3是TGF-β超家族的共受體,介導(dǎo)TGF-β信號(hào)轉(zhuǎn)導(dǎo),但抑制TGF-β與TGFBR1及TGFBR2的結(jié)合作用,發(fā)揮抑制TGF-β/Smad3信號(hào)通路的作用[20],并已被證實(shí)與多種疾病的發(fā)生相關(guān)[21-22]。研究顯示,miR-21可靶向抑制TGFBR3的表達(dá),從而促進(jìn)心肌纖維化,而過(guò)表達(dá)TGFBR3后可抑制miR-21和心肌纖維化水平[23]。在小鼠肺成纖維細(xì)胞中抑制TGFBR3的表達(dá)可加劇肺纖維化的過(guò)程[24]。本文結(jié)果表明,miR-23b-3p可抑制HAFs中TGFBR3的表達(dá),激活Smad3信號(hào)并增強(qiáng)纖維化相關(guān)基因表達(dá)。本文結(jié)果與以往關(guān)于TGFBR3具有抑制心肌纖維化作用的報(bào)道一致[23, 25-26]。
Figure 4.TGFBR3 mediated the effect of miR-23b-3p on upregulation of fibrosis-related genes in HAFs. A: dual-luciferase reporter assay; B: the mRNA and protein expression of TGFBR3 in HAFs transfected with miR-23b-3p mimic; C: the protein expression of COL1A1, COL3A1, ACTA2, TGFBR3, p-Smad3 and Smad3 in HAFs after transfection with miR-23b-3p mimic orTGFBR3 siRNA (si-TGFBR3). Mean±SEM.n=3.##P<0.01vspGL3-promoter+scrambled group;*P<0.05,**P<0.01vsscrambled group.
圖4TGFBR3介導(dǎo)miR-23b-3p促進(jìn)人心房肌成纖維細(xì)胞中纖維化相關(guān)基因表達(dá)
綜上所述,本文證實(shí)TGFBR3是miR-23b-3p的作用靶基因,介導(dǎo)miR-23b-3p激活HAFs中Smad3信號(hào),發(fā)揮促進(jìn)纖維化相關(guān)基因表達(dá)的作用。在后續(xù)研究中,我們將在整體動(dòng)物水平進(jìn)一步明確miR-23b-3p對(duì)TGFBR3表達(dá)和心肌纖維化的調(diào)控作用。