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    高效液相色譜法測(cè)定飼料添加劑D-生物素的含量

    2018-11-09 05:40:06裘丞軍任玉琴
    中國(guó)飼料 2018年19期
    關(guān)鍵詞:氯酸鈉生物素滴定法

    裘丞軍,任玉琴

    (浙江省獸藥飼料監(jiān)察所,浙江杭州311199)

    D-生物素即生物素,又稱維生素H,輔酶R,屬于水溶性B族維生素,廣泛存在于動(dòng)植物組織內(nèi)。其主要作為體內(nèi)多種羧化酶的輔酶,參與二氧化碳的轉(zhuǎn)移固定和羧化反應(yīng),促進(jìn)糖類、脂肪和蛋白質(zhì)代謝。D-生物素已被收錄于中華人民共和國(guó)農(nóng)業(yè)部公告 第2045號(hào)《飼料添加劑品種目錄(2013)》,大量應(yīng)用于生物醫(yī)藥、食品化妝中,在畜禽養(yǎng)殖應(yīng)用中有促進(jìn)動(dòng)物正常生長(zhǎng),提高飼料轉(zhuǎn)化率等重要作用(陳宏等,2008)。目前食品和飼料中生物素含量的測(cè)定方法,有微生物測(cè)定法(國(guó)家標(biāo)準(zhǔn),GB 5413.19-2010)、熒光免疫層析法(劉海英,2016)、酶聯(lián)免疫法(徐幼平等,2000)、分光光度法 (國(guó)家標(biāo)準(zhǔn),GB/T 17778-2005)、高效液相色譜法(潘一斌等,2009;余林梁等,2003)、高效液相色譜-串聯(lián)質(zhì)譜法 (劉進(jìn)璽等,2010)。其中微生物法、熒光免疫層析法和酶聯(lián)免疫法操作繁瑣,試劑昂貴,對(duì)檢測(cè)技術(shù)要求比較高,主要是針對(duì)檢測(cè)D-生物素含量較低的樣本;分光光度法操作步驟多,時(shí)間長(zhǎng);液質(zhì)聯(lián)用法對(duì)儀器的要求比較高;而液相色譜法適用范圍大,應(yīng)用比較廣泛。目前,D-生物素原料的分析方法主要有酸堿滴定法(歐洲藥典8.0版,2014:1671-1672; 日本藥典 16 版,2011:458-459)、高效液相色譜法 (美國(guó)藥典 36版,2013:2664-2665),國(guó)內(nèi)飼料行業(yè)尚無國(guó)家標(biāo)準(zhǔn)。本研究為進(jìn)一步優(yōu)化相關(guān)條件建立高效液相色譜法,測(cè)定不同來源和批次的生物素原料含量,并與酸堿滴定法進(jìn)行了對(duì)比研究,結(jié)果確定該方法簡(jiǎn)便、快速、靈敏、準(zhǔn)確、專屬性好,可以作為生物素飼料原料的質(zhì)量控制方法。

    1 材料與方法

    1.1 試劑和儀器 生物素標(biāo)準(zhǔn)品 (中國(guó)食品藥品檢定研究院);一水合高氯酸鈉(分析純);磷酸(分析純);三氟乙酸(色譜純);乙腈(色譜純);水(超純水);酚酞指示劑;0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)滴定液。

    飼料添加劑D-生物素樣品由四家企業(yè)提供( 批 號(hào) :141102、VH20150328、CS1-1502019、KXVHUSP150901)。

    Agilent1260高效液相色譜儀,紫外檢測(cè)器(美國(guó)Agilent公司);KQ-500E超聲儀(昆山超聲儀器公司);ZP205電子天平(Mettler公司)。

    1.2 色譜條件 色譜柱:Agilent XDB-C18柱,柱長(zhǎng) 150 mm,內(nèi)徑 4.6 mm,粒徑 5μm;流動(dòng)相:乙腈+緩沖液(含0.1%高氯酸鈉和0.1%磷酸的水溶液)=8.5+91.5(體積比)。 流速:1.2 mL/min;進(jìn)樣量:20 μL;紫外檢測(cè)波長(zhǎng):210 nm。

    1.3 標(biāo)準(zhǔn)溶液配制 準(zhǔn)確稱取生物素標(biāo)準(zhǔn)品40 mg(精確至0.01 mg),置于200 mL容量瓶中,加入提取液(乙腈+水=1+4)約 150 mL,50℃水浴超聲波助溶5 min,冷卻至室溫,用提取液定容至刻度,混勻。

    1.4 飼料添加劑樣品前處理 準(zhǔn)確稱取飼料添加劑試樣 40 mg(精確至 0.01 mg),置于 200 mL容量瓶中,加入提取液(乙腈+水=1+4)約150 mL,50℃水浴超聲波助溶5 min,冷卻至室溫,用提取液定容至刻度,混勻。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 方法線性和檢測(cè)限試驗(yàn) 取適量標(biāo)準(zhǔn)品溶解稀釋成 25、50、100、200、400 μg/mL 系列濃度的溶液,取20μL注入液相色譜測(cè)定分析,記錄生物素峰面積,以濃度(x)為橫坐標(biāo),峰面積(y)為縱坐標(biāo),繪制線性回歸曲線。結(jié)果表明生物素在25~400μg/mL質(zhì)量濃度范圍內(nèi)線性關(guān)系良好,y=7.46044x+4.06379(r=1.00000),方法檢測(cè)限為1.5 mg/kg,滿足檢測(cè)要求。標(biāo)準(zhǔn)品色譜圖見圖1。

    2.2 精密度試驗(yàn) 取四批次樣品 (批號(hào)141102、VH20150328、CS1-1502019、KXVHUSP150901)各5份,按試驗(yàn)方法1.4處理,取20μL樣品溶液注入液相色譜測(cè)定分析,外標(biāo)法計(jì)算含量,結(jié)果如表2, 平均含量分別為 100.4%、99.3%、99.9%、95.9%,RSD(n=5)為 0.1%、0.2%、0.1%、0.2%,表明精密度良好。

    2.3 準(zhǔn)確度試驗(yàn) 取生物素標(biāo)準(zhǔn)品約30、40、50 mg各3份(精確至0.01 mg),按試驗(yàn)方法1.4處理,取20μL樣品溶液注入液相色譜測(cè)定分析,外標(biāo)法計(jì)算含量,并計(jì)算回收率,結(jié)果見表1。

    圖1 HPLC色譜圖

    2.4 與酸堿滴定法測(cè)定含量的比較 參照美國(guó)藥典36版 (2013:2664-2665) 測(cè)定生物素的方法,稱取四批次樣品(批號(hào)CS1-1502019、141102、VH20150328、KXVHUSP150901)各 5 份,每份約500 mg(精確到0.1 mg),置于 250 mL錐形瓶中,加水100 mL。加熱攪拌溶解,加酚酞指示劑2滴,用0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)滴定液緩慢滴定至粉紅色,且保持30秒不褪色,每毫升0.1 mol/L NaOH標(biāo)準(zhǔn)滴定液相當(dāng)于24.43 mg的生物素。計(jì)算樣品含量和RSD,結(jié)果如表2,試樣1與試樣2兩種方法含量測(cè)定結(jié)果基本一致,試樣3和試樣4用本方法測(cè)定的結(jié)果較酸堿滴定法低。進(jìn)一步分析試樣溶液色譜圖,發(fā)現(xiàn)試樣1和2色譜圖基線干凈無雜峰,而試樣3和4主峰后有雜質(zhì)峰出現(xiàn),并呈完全的基線分離,表明酸堿滴定法定量沒有專屬性,準(zhǔn)確度較低,而本方法分離效果好,準(zhǔn)確度高。另外RSD數(shù)據(jù)表明本方法的精密度比酸堿滴定法相對(duì)更高,所以確定本方法定量更加準(zhǔn)確合理。

    表1 回收率試驗(yàn)結(jié)果(n=9)

    表2 兩種含量測(cè)定方法結(jié)果比較

    2.5 溶液放置穩(wěn)定性 取樣品 (批號(hào)KXVHUSP150901)按試驗(yàn)方法1.4處理,在室溫分別放置 0、25、50、100、150、250 min 后測(cè)定,記錄峰面積,顯示峰面積分別為1472、1469、1472、1470、1473、1472 (單位 mAU*s);RSD=0.1%(n=6)。結(jié)果表明樣品溶液在考察的時(shí)間范圍內(nèi)有很好的穩(wěn)定性。

    2.6 專屬性 取樣品(批號(hào)CS1-1502019)約20 mg(共5份),其中三份分別加5 mL 1 mol/L鹽酸溶液、5 mL 1 mol/L氫氧化鈉溶液、5 mL 30%雙氧水,放置18 h,進(jìn)行酸破壞、堿破壞、氧化破壞,pH調(diào)至中性后用提取液稀釋至100 mL;另兩份直接用提取劑稀釋后,一份在254、365 nm紫外波長(zhǎng)光照24 h,一份不做任何處理作為對(duì)照。結(jié)果表明樣品對(duì)酸、堿和光照均較穩(wěn)定,對(duì)于氧化破壞較明顯,產(chǎn)生的氧化破壞產(chǎn)物在該色譜條件下完全分離無干擾。色譜圖見圖2。

    圖2 試樣破壞試驗(yàn)處理后色譜圖

    2.7 耐用性 取樣品(批號(hào)KXVHUSP150901)按試驗(yàn)方法處理,在該色譜條件下通過改變色譜柱型號(hào)規(guī)格、流動(dòng)相比例以及色譜儀器型號(hào)考察,結(jié)果表明色譜系統(tǒng)耐用性良好。

    3 討論

    3.1 色譜條件優(yōu)化

    3.1.1 波長(zhǎng)選擇 生物素在紫外波長(zhǎng)光區(qū)內(nèi)沒有特征吸收峰波長(zhǎng),在190~235 nm波長(zhǎng)處吸光度由高到低。試驗(yàn)中選取乙腈/0.05%三氟乙酸溶液=15/85、乙腈/水=1/4、乙腈/0.1%高氯酸鈉和 0.1%磷酸溶液=8.5/91.5三種溶媒,取4批次試樣,每批試樣3份用相應(yīng)的溶媒溶解稀釋成濃度約為40μg/mL的溶液,用200、210 nm兩個(gè)檢測(cè)波長(zhǎng),進(jìn)行5次重復(fù)檢測(cè),結(jié)果見表3。在乙腈/水作為溶媒時(shí),210 nm吸光度更穩(wěn)定。因此檢測(cè)波長(zhǎng)確定為210 nm。

    表3 兩種波長(zhǎng)和三種溶媒吸光度穩(wěn)定性比較(n=5)

    3.1.2 流動(dòng)相組成 生物素的化學(xué)結(jié)構(gòu)是咪唑酮環(huán)與噻吩環(huán)相結(jié)合的駢環(huán),帶有一個(gè)戊酸側(cè)鏈,呈弱酸性。在中性和堿性溶液環(huán)境中部分或全部以離子形態(tài)存在,有較強(qiáng)極性,在C18色譜柱上幾乎不保留,但是在弱酸環(huán)境中生物素以分子形態(tài)存在,極性減弱,在C18色譜柱上保留時(shí)間長(zhǎng)。因此選擇帶弱酸性的溶液作為流動(dòng)相,并且選用在短波長(zhǎng)處吸收小的乙腈體系作為流動(dòng)相。試驗(yàn)參考美國(guó)藥典 36版(2013:2664-2665)選取乙腈磷酸高氯酸鈉緩沖液體系 (乙腈/0.1%高氯酸鈉和0.1%磷酸溶液=8.5/91.5)、參考?xì)W洲藥典8.0版(2014:1671-1672)選取乙腈三氟乙酸溶液體系(乙腈/0.05%三氟乙酸溶液=15/85),用25%乙腈水溶解稀釋試樣至200μg/mL的溶液測(cè)試對(duì)比分析,并對(duì)試劑空白進(jìn)行色譜分析,結(jié)果見表4。生物素在乙腈磷酸高氯酸鈉緩沖液體系中理論塔板數(shù)高,對(duì)稱因子大,分離度高,保留時(shí)間合理,基線噪音?。ㄒ妶D1),更適合作為流動(dòng)相。

    表4 兩種流動(dòng)相體系比較

    3.2 溶解方法的確定 生物素在稀堿中溶解,在水中極微溶,在50℃水中微溶,在乙腈中幾乎不溶,而本方法色譜條件是弱酸性環(huán)境,不能用稀堿溶解。結(jié)合3.1.1波長(zhǎng)選擇試驗(yàn),生物素用乙腈水溶液作為溶媒時(shí),吸光度更穩(wěn)定,因此試驗(yàn)中精密稱取5份試樣(批號(hào)KXVHUSP150901),選取用乙腈/水=1/4作為提取劑,分別直接振搖5 min或者50℃水浴超聲助溶 5、10、20、30 min進(jìn)行考察分析,測(cè)得樣品濃度,結(jié)果表明水浴超聲5 min就能夠有效溶解試樣。

    4 結(jié)論

    本文對(duì)高效液相色譜法測(cè)定飼料添加劑生物素原料的含量進(jìn)行優(yōu)化研究,并進(jìn)一步和酸堿滴定法進(jìn)行比較,結(jié)果表明,酸堿滴定法需人為判斷滴定終點(diǎn),存在個(gè)體差異,專屬性也不強(qiáng),精密度和準(zhǔn)確度相對(duì)較差;而本方法選用較為穩(wěn)定的210 nm為檢測(cè)波長(zhǎng),乙腈高氯酸鈉磷酸緩沖液作為流動(dòng)相,保留時(shí)間合理,基線穩(wěn)定,噪音小,操作簡(jiǎn)單,樣品直接溶解后使用高效液相色譜儀外標(biāo)法定量,人為誤差減少,并且雜質(zhì)分離效果好,專屬性強(qiáng),相對(duì)酸堿滴定法有較好的精密度和準(zhǔn)確度,非常適用于生物素原料的質(zhì)量控制。

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