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    基于UPLC-Q-TOF-MS法分析百合珠芽化學成分及其薯蕷皂苷元抗腫瘤活性研究

    2019-05-30 02:35:06袁志鷹羅林明陳乃宏周小江黃惠勇陳妍羽
    關鍵詞:珠芽皂苷元薯蕷

    袁志鷹,羅林明,陳乃宏, , 梁 晟,周小江*,黃惠勇*,陳妍羽

    1湖南中醫(yī)藥大學;2湖南省中藥飲片標準化與功能工程技術中心,長沙 410208;3中國醫(yī)學科學院北京協(xié)和醫(yī)學院藥物研究所,北京100050;4湖南省藥品檢驗研究院,長沙 410001

    百合(Liliibulbus)為多年生草本植物,始載于漢朝《神農(nóng)本草經(jīng)》,2015版《中國藥典》收錄為卷丹(LiliumlancifoliumThunb.)、百合(LiliumbroumiiF.E.Brown var.viridulumBaker)、細葉百合(LiliumpumilumDC.)3個品種[1~2]。百合藥用部位主要為鱗莖及其珠芽(百合子),百合鱗莖研究報道較多,而百合珠芽由于研究較少,資源浪費嚴重?,F(xiàn)代研究顯示,百合珠芽中含有黃酮類、多酚類和生物堿等多種活性成分,具有抗氧化的生物活性[3]。

    目前分析百合鱗莖、珠芽中化學成分的方法主要有高效液相色譜法(HPLC)[4,5]、氣相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(GC-MS)[6]、液相色譜-質(zhì)譜聯(lián)用法(LC-MS)等方法[7],其中HPLC法操作簡便,目前主要用來測定百合鱗莖中酚酸甘油酯、沒食子酸等成分。GC-MS法主要用于分析百合鱗莖中揮發(fā)性成分,具有一定的局限性。HPLC-Q-TOF-MS法靈敏度高,并且可以用來鑒定復雜基質(zhì)中的化學成分[8,9],但分析速度一般。UPLC-Q-TOF-MS法具有快速、準確和靈敏度高的特點,成為中藥分析領域重要技術手段[10-12]。目前,采用UPLC-Q-TOF-MS法快速分析百合珠芽中化學成分尚未見于報道。近年來,腫瘤已成為中國死亡率最高的疾病之一[13],而薯蕷皂苷屬于甾體皂苷,可顯著抑制肺癌A549、NCI-H460和NCI-H446細胞增殖,在體外具有較強的抗肺癌作用[14],同時還能明顯抑制人胃癌細胞MGC-803、SGC-7901的增殖并誘導其凋亡[15,16]。薯蕷皂苷水解即可得到薯蕷皂苷元,而目前采用CCK8法研究薯蕷皂苷元抗肺腫瘤A549細胞、胃腫瘤HGC-27細胞的藥效篩選以及百合珠芽中是否含有薯蕷皂苷尚未見報道,值得我們?nèi)ヌ接憽?/p>

    本試驗在前期對百合鱗莖研究的基礎上,采用UPLC-Q-TOF-MS聯(lián)用技術可快速分析鑒定百合珠芽中主要化學成分,并采用CCK-8法進行薯蕷皂苷元腫瘤細胞增殖分析研究,對百合珠芽產(chǎn)品生產(chǎn)、加工和利用具有深層次指導意義。

    1 儀器與試藥

    1.1 儀器

    202型電熱恒溫干燥箱(北京中興偉業(yè)儀器有限公司);Waters ACQUITY UPLC/Xevo G2 QTof/MS(美國Waters 公司);Agilent UPLC 2010(安捷倫科技公司);METTLER TOLEDO ML204電子分析天平(瑞士METTLER TOLEDO公司),KM-250DE臺式超聲波清洗儀(昆山美美超聲儀器有限公司),80-1型電動離心機(城西曉陽電子儀器廠);96孔板(美國corning公司)、CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo Fisher Scientific公司)、超凈臺(蘇州安泰空氣技術有限公司)、ELx 800酶標儀(美國Bio Tek 公司)。

    1.2 藥品與試劑

    百合珠芽采于湖南龍山和順百合種植基地,經(jīng)湖南中醫(yī)藥大學周小江教授鑒定為百合科植物卷丹(LiliumlancifoliumThunb.)的珠芽部分。薯蕷皂苷元(B2117,上海源葉生物科技有限公司);甲醇(色譜純,德國默克公司);乙腈(色譜純,德國默克公司),王百合苷A(0252-DT01,上海standard 科技公司)。人胃癌細胞SGC-7901、人胃癌細胞HGC-27、人肺癌細胞A549(中科院上海細胞庫);高糖DMEM培養(yǎng)基、FBS、PBS、0.25%胰蛋白酶-EDTA消化液(美國Gibco 公司);順鉑(CDDP,美國Sigma公司);CCK-8試劑盒(上海七海復泰生物科技有限公司);青霉素鏈霉素(美國HyCLone公司)。

    2 方法與結(jié)果

    2.1 UPLC-Q-TOF-MS分析百合珠芽中化學成分

    2.1.1 色譜條件

    色譜柱為Thermo Hypersil Gold C18柱(100 mm×2.1 mm,1.9 μm);流動相:乙腈-0.5%乙酸,梯度洗脫,流速:0.2 mL/min,柱溫30 ℃,波長:309 nm,進樣體積:2.00 μL。采用UPLC-MS/MS(正離子、負離子模式),離子化方式:電噴霧離子化(ESI),ESI-毛細管電壓 2.8 kV,錐孔電壓28 V,錐孔氣流50 L/h;ESI+毛細管電壓 3.0 kV,錐孔電壓30 V,錐孔氣流50 L/h。ESI+,ESI-離子化干燥氣溫度均為:T=350 ℃,V=600 L/h。流動性梯度洗脫程序見表1。

    2.1.2 供試品溶液的制備

    將采集的百合新鮮珠芽,洗凈,再放入60 ℃鼓風干燥箱中60 min,得干百合珠芽,粉碎過100目,精密稱定過篩的樣品1.0 g至量瓶中,加入50 mL 80%乙醇,用超聲儀提取40 min。冷卻至室溫,精密稱定,補足80% 乙醇,濾過,濾液旋蒸至干,加入10 mL 80% 乙醇溶解過0.45 μm微孔濾膜,取續(xù)濾液,既得。

    以國家土壤環(huán)境質(zhì)量標準為評價標準,單因子污染指數(shù)評價法可用于評價土壤重金屬污染程度,分析土壤環(huán)境質(zhì)量對農(nóng)業(yè)生產(chǎn)的影響程度。具體分級指標為:P綜≤0.7,土壤環(huán)境質(zhì)量處于清潔安全狀態(tài);P綜 1時,表明土壤重金屬含量超標污染,對作物生長發(fā)育有影響,進而會通過食物鏈影響人體的健康;1 3為重度污染。

    表1 梯度洗脫程序表

    2.1.3 對照品溶液的制備

    精密平行稱取2份王百合苷A標準品適量,用80%乙醇溶解,稀釋配制成0.556、0.68 mg/mL的王百合苷A對照品溶液。

    2.1.4 超聲提取優(yōu)化試驗

    按2.1.2項下方法得到干百合珠芽,精密稱定1.0 g干百合珠芽粉至量瓶中, 加入50 mL 80%乙醇,用超聲儀在不同提取時間條件下(10、20、30、40、50 min)處理后,冷卻至室溫,精密稱定,補足80% 乙醇,搖勻過0.45 μm微孔濾膜,取續(xù)濾液,既得待測液。在前期研究中,課題組發(fā)現(xiàn)與其他成分比較,百合珠芽中王百合苷A含量較高,因此選用王百合苷A的提取率作為百合珠芽藥材的化學成分提取考核指標。將待測液注入Agilent UPLC 2010,測定王百合苷A的含量。王百合苷提取率計算方法:提取率(%)= 提取液濃度 ×體積 /原料質(zhì)量 × 100%。

    2.2 薯蕷皂苷元抗腫瘤實驗

    2.2.1 細胞培養(yǎng)

    從-80 ℃冰箱內(nèi)取出需要復蘇的肺癌A549細胞,置于恒溫水浴鍋內(nèi)37 ℃快速解凍,用移液槍迅速將凍存管內(nèi)的解凍后的細胞液移至含4 mL 的10% FBS、1%雙抗(青霉素、鏈霉素)DMEM完全培養(yǎng)液的15 mL離心管中,以800 rpm速率離心5 min,上清液棄去,加入6 mL DMEM完全培養(yǎng)液,混勻,將細胞液移至100 mm培養(yǎng)皿中,晃動培養(yǎng)皿使細胞液均勻分散,置于含5% CO2,37 ℃的培養(yǎng)箱內(nèi)培養(yǎng)。細胞培養(yǎng)3~4天傳代1次。

    2.2.2 細胞增殖抑制試驗

    待培養(yǎng)細胞生長到對數(shù)生長期后,將細胞消化制成細胞懸液,計數(shù),然后在96孔板中按100 μL/孔的比例接種細胞懸液(8.0×104~1.0×105個/mL),將培養(yǎng)板放在37 ℃,5% CO2培養(yǎng)箱中培養(yǎng)24 h。

    2.2.2.2 加藥干預

    從培養(yǎng)箱中取出培養(yǎng)板,吸出舊培養(yǎng)液,每孔加入100 μL 無血清含雙抗DMEM培養(yǎng)液,饑餓12 h后去掉培養(yǎng)液,5個實驗組分別加入事先配置好的含不同濃度待測藥物的DMEM完全培養(yǎng)液,溶劑對照組加入完全培養(yǎng)液,陽性對照組加入含4 μg/mL CDDP的完全培養(yǎng)液,每孔100 μL,每組設置5個副孔。置于培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)24 h。

    2.2.2.3 加入CCK-8顯色

    取出培養(yǎng)板,吸棄每孔中的細胞培養(yǎng)液,避光加入CCK-8溶液與含雙抗DMEM培養(yǎng)液,以10∶100比例新鮮配置的顯色液,每孔100 μL,置于培養(yǎng)箱中孵育0.5~1.0 h。

    2.2.2.4 檢測吸光值

    將處理好的培養(yǎng)板置于酶聯(lián)免疫檢測儀中,在波長為450 nm處的檢測其OD值。

    2.2.2.5 計算細胞增殖抑制率

    根據(jù)每組測得的OD值,計算出藥物對受試細胞的增殖抑制率。計算方法如下:

    增殖抑制率(%)=(1-實驗組OD值/對照組OD值)×100%

    3 結(jié)果與討論

    3.1 超聲提取條件的選擇

    進行了超聲提取10、20、30、40、50 min的比較試驗,發(fā)現(xiàn)40、50 min效果最佳,二者提取效率相當,故將超聲提取時間設定為40 min。具體見表2。

    3.2 液相色譜條件優(yōu)化

    對樣品超聲提取液進行UPLC-DAD測定,結(jié)果為309 nm時百合珠芽中多種有效成分有較大吸收峰,故選擇百合珠芽定性分析檢測波長為309 nm,(見圖1)。同時考察了thermo C18(100 mm×2.1mm,1.5 μm),Agilent C18(2.1 mm×50 mm,1.8 μm),waters acquity UPLC BEH-C18(100 mm×2.1 mm,1.7 μm), 3 種色譜柱的峰形、柱效和分離度,結(jié)果顯示,以thermo C18為最佳,這有利于質(zhì)譜定性分析。

    表2 不同超聲提取時間下的王百合苷A提取效率

    圖1 百合珠芽液相色譜圖(309 nm)Fig.1 Chromatography of lily bulbil(309 nm)

    3.3 質(zhì)譜條件優(yōu)化

    在實驗中發(fā)現(xiàn),單獨用UPLC圖無法很好地分離鑒定百合珠芽中復雜的化學成分。但是采用二級質(zhì)譜離子流圖可以較好地分離百合珠芽中主要化學成分。質(zhì)譜條件的選擇:ESI+模式下,毛細管電壓從2.5 kV~3.5 kV,錐孔電壓從20 V~40 V;ESI-模式下,毛細管電壓從2.0 kV~3.2 kV,錐孔電壓從20 V-35 V進行選擇。最后發(fā)現(xiàn),在ESI-模式下,毛細管電壓 2.8 kV,錐孔電壓28 V;ESI+模式下,毛細管電壓 3.0 kV,錐孔電壓30 V,TIC圖得到的有效信息較多。

    實驗采用正、負離子模式同時掃描樣品,其中在負離子模式條件下,王百合苷A、王百合苷B、王百合苷C、王百合苷E、王百合苷F、1-O-p-香豆酰甘油、1-O-阿魏酰香-3-O-p-豆酰甘油色譜峰響應值較高,而在正離子模式條件下,對香豆酸、槲皮素、薯蕷皂苷色譜峰響應值較高,為增大物質(zhì)推測的可靠性,實驗選用正、負離子模式同時測定樣品,最大程度地獲取質(zhì)譜信息,見圖2~3。

    3.4 化學成分的UPLC-Q-TOF-MS鑒定

    在擬定分析條件下,電噴霧電離源正離子模式和負離子模式對色譜流出物進行檢測,四級桿飛行時間串聯(lián)質(zhì)譜法對各主要色譜峰進行歸屬,通過一、二級質(zhì)譜圖進行分析,根據(jù)其反相色譜保留行為、紫外檢測和質(zhì)譜特征,結(jié)合文獻報道,進行結(jié)構(gòu)鑒定。在負離子模式下,共推測鑒定出7個化學成分;在正離子模式下,共推測鑒定出3個化學成分。具體質(zhì)荷比和碎片離子信息見表3。

    圖2 二級質(zhì)譜離子流圖(正離子模式)Fig.2 Daughter ion flow graph of the MS-MS spectrogram in positive ion modes注:t=21.18 min,對香豆酸;t=24.21 min,槲皮素;t=27.39 min,薯蕷皂苷。Note:t = 21.18 min,p-coumaric acid;t = 24.21 min,quercetin;t = 27.39 min,dioscin.

    圖3 二級質(zhì)譜離子流圖(負離子模式) Fig.3 Daughter ion flow graph of the MS-MS spectrogram in negative ion modes 注:t=20.67 min,王百合苷C;t=21.52 min,王百合苷A;t=21.79 min,1-O-p-香豆酰甘油;t=21.82 min,王百合苷F;t=22.2 min,王百合苷E;t=22.85 min,王百合苷B;t=25.08 min,1-O-阿魏酰香-3-O-p-豆酰甘油。Note:t = 20.67 min,regaloside C;t = 21.52 min,regaloside A;t = 21.79 min,1-O-p-coumaroylglycerol;t = 21.82 min,regaloside F;t = 22.2 min,Regaloside E;t = 22.85 min,regaloside B;t = 25.08 min,1-O-feruloyl-3-O-p-coumaroylglycerol.

    3.5 薯蕷皂苷元(Dio)對腫瘤細胞增殖的影響

    3.5.1 Dio對肺癌細胞增殖的影響

    Dio在濃度范圍5~100 μM對肺腺癌A549細胞增殖具有弱抑制作用,其抑制率在8.11~15.03 %范圍內(nèi)。具體結(jié)果見表3。

    3.5.2 Dio對胃癌細胞增殖的影響

    5~100 μM Dio對胃癌HGC-27細胞增殖具有抑制作用,其抑制率在11.04~30.59%范圍內(nèi),其中25~100 μM濃度組與對照組相比具有顯著性差異(P<0.05,P<0.01,P<0.001)。具體結(jié)果見表5。

    4 結(jié)論

    本文建立了百合珠芽中主要化學成分的UPLC-Q-TOF-MS鑒定方法,方法快速簡便,能為百合珠芽的質(zhì)量控制及標志性成分分析提供技術參考。本文通過UPLC-Q-TOF-MS鑒定出了百合珠芽中薯蕷皂苷等10種化學成分,證實了百合珠芽中含有薯蕷皂苷,而薯蕷皂苷屬于甾體皂苷,水解即可得到薯蕷皂苷元。在此基礎上,進行了薯蕷皂苷元抗腫瘤藥效實驗,研究發(fā)現(xiàn),薯蕷皂苷元對肺癌A549細胞增殖只有微弱的抑制活性,而對胃癌HGC-27細胞增殖表現(xiàn)出較強的抑制作用,其IC50值約為62786μM,并且展現(xiàn)出濃度依賴性。因此,有必要對百合珠芽化學成分進行深層次的藥效研究,課題組將繼續(xù)對鑒定出來的其他物質(zhì)進行藥效試驗研究,為更好利用百合資源提供實驗依據(jù)。

    表3 百合珠芽UPLC-Q-TOF-MS分析結(jié)果

    表4 Dio對肺癌A549細胞增殖的影響

    注:與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

    Note:compared with the control group,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001.

    表5 Dio對胃癌HGC-27細胞增殖的影響

    注:與對照組比較,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001。

    Note:compared with the control group,*P<0.05,**P<0.01,***P<0.001.

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