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    低 C/N 馴化生物絮團的自養(yǎng)和異養(yǎng)硝化性能研究

    2018-10-26 08:07:06劉青松段亞飛董宏標張家松
    海洋漁業(yè) 2018年5期
    關鍵詞:絮團異養(yǎng)堿度

    王 濤,劉青松,段亞飛,李 華,董宏標,張家松,3

    (1.中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部南海漁業(yè)資源開發(fā)利用重點實驗室,廣東廣州 510300;2.水產(chǎn)科學國家級實驗教學示范中心,上海水產(chǎn)養(yǎng)殖工程技術研究中心,農(nóng)業(yè)農(nóng)村部魚類營養(yǎng)與環(huán)境生態(tài)研究中心(上海海洋大學),上海 201306;3.中國水產(chǎn)科學研究院南海水產(chǎn)研究所深圳試驗基地,廣東深圳 518121)

    中國是世界水產(chǎn)養(yǎng)殖大國,養(yǎng)殖過程中殘餌和糞便及其被微生物分解產(chǎn)生的氨氮N)、亞硝酸鹽氮和硝酸鹽氮等無機氮大量排放是造成養(yǎng)殖水質(zhì)惡化、病害頻發(fā)的重要因素[1-4]。為解決這一問題,利用生物絮團技術(biofloc technology)調(diào)控養(yǎng)殖水質(zhì)以減少換水的養(yǎng)殖模式提供了新的思路[5-7]。

    生物絮團對養(yǎng)殖水中有害氮的去除,與絮團內(nèi)的微生物菌群結(jié)構密切相關,主要包括同化、自養(yǎng)硝化、異養(yǎng)硝化、反硝化等生化過程[8-9]?,F(xiàn)有的生物絮團培養(yǎng)方式,大多通過調(diào)控C/N大于15來富集培養(yǎng)異養(yǎng)微生物,有害氮素去除以同化作用和異養(yǎng)硝化作用為主[10-11]。近年來,有研究者提出定向馴化自養(yǎng)硝化型生物絮團,以減少外碳源添加和溶解氧(DO)消耗,節(jié)約成本[12]。有研究表明,水產(chǎn)養(yǎng)殖系統(tǒng)中,超過50%的投喂飼料以殘餌、糞便等形式排入水體,經(jīng)微生物分解釋放的化學需氧量(COD)占飼料的39%~44%[13-14]。養(yǎng)殖水體中碳源的含量與飼料組分密切相關,商品魚蝦配合飼料中蛋白質(zhì)含量為35%時,C/N比值為8.9;蛋白質(zhì)含量為30%時,C/N比值為10.4;蛋白質(zhì)含量為25%時,C/N比值為12.5[15]。一般認為,自養(yǎng)硝化細菌的硝化活性比異養(yǎng)菌高103~104倍,而異養(yǎng)硝化菌生長速率快,在環(huán)境中的數(shù)量大,可彌補異養(yǎng)硝化菌活性低的不足[16]。因此,以低 C/N條件馴化的生物絮團,其自養(yǎng)硝化和異養(yǎng)硝化作用對有害氮素的去除效能哪種更高,很值得進一步研究。

    本實驗接種羅非魚養(yǎng)殖池的生物絮團,以高蛋白飼料為氮源,赤砂糖為碳源,并通過逐漸降低赤砂糖添加量,調(diào)節(jié)C/N逐步從15降至7.9,以模擬養(yǎng)殖水體中相對較低的C/N環(huán)境,進行馴化培養(yǎng)。在此基礎上,對其自養(yǎng)硝化和異養(yǎng)硝化兩種生化過程的存在情況進行研究,并對其氮去除效能進行綜合評價,以期為生物絮團脫氮功能菌定向培養(yǎng)及其在養(yǎng)殖水處理中的應用提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 實驗裝置與菌種來源

    硝化性能實驗于有效容積28 L的圓筒型有機玻璃反應器(圖1-A)中進行,好氧反硝化性能實驗采用3個有效容積3 L的抽濾瓶(圖1-B),硝化反應和好氧反硝化反應過程均采用功率為100 W、曝氣量40 L·min-1的增氧泵(日生LP100)進行曝氣。每個反應設置3組平行,結(jié)果取平均值進行計算統(tǒng)計。

    圖1 實驗裝置圖Fig.1 Experimental device diagram

    初始所用菌種取自工廠化羅非魚養(yǎng)殖系統(tǒng)的生物絮團,投加飼料(C:43.64%,N:7.81%,粗蛋白含量≥48%)進行培養(yǎng),添加量以實際養(yǎng)殖情況下生物絮團處理的有機氮負荷進行核算,為0.1 g·g-1(即每克生物絮團添加 0.1 g飼料),以赤砂糖(C:36.28%)為外加碳源,通過調(diào)節(jié)赤砂糖和飼料質(zhì)量比來調(diào)控C/N,進行為期240 d的馴化培養(yǎng)。整個馴化過程分為3個階段:第一階段為0~30 d,C/N維持在15左右(赤砂糖∶飼料≈2∶1);第二階段為 30~90 d,C/N維持在10.5(赤砂糖∶飼料≈1∶1);第三階段為 90~240 d,C/N為7.9(赤砂糖∶飼料≈0.5∶1)。水質(zhì)檢測結(jié)果顯示,整個馴化周期內(nèi)NH4+-N維持在0.50 mg·L-1以下,NO2--N在 0.10 mg·L-1左右波動,可以滿足養(yǎng)殖水質(zhì)要求[17-19]。

    1.2 實驗方法

    1.2.1 自養(yǎng)硝化性能實驗

    1)取3份20 L經(jīng)富集培養(yǎng)的生物絮團,測定其特性為:絮團懸浮物固體濃度(MLSS)=2860 mg·L-1,絮團懸浮物揮發(fā)性固體濃度(MLVSS)=2 077 mg·L-1,污泥體積指數(shù)(SVI)=43.70 mg·L-1,污泥沉降比(SV)=12.50%,MLVSS/MLSS=72.61%。用自來水反復沖洗5次,移入圖1-A所示反應器中,饑餓處理12 h后,以NH4Cl為氮源,調(diào)整 NH4+-N 約 為 8.00 mg·L-1。定時監(jiān)測反應器中三氮(NH4+-N、NO2--N、NO3--N,下同)及 pH、DO、COD、堿度等變化情況,以測定生物絮團的自養(yǎng)氨氧化(autotrophic ammonia oxidation,AN-AO)性能。

    2)取3份20 L經(jīng)富集培養(yǎng)的生物絮團,測定其特性為:MLSS=2 547 mg·L-1,MLVSS=1 768 mg·L-1,SVI=50.38 mL·g-1,SV=12.83%,MLVSS/MLSS=69.42%。用自來水反復沖洗5次,移入圖1-A所示反應器中,饑餓處理12 h后,以NaNO2為氮源,調(diào)整NO2--N約為10.00 mg·L-1。定時監(jiān)測反應器中三氮及pH、DO、COD、堿度等變化情況,以測定生物絮團的自養(yǎng)亞硝酸鹽氧化(autotrophic nitrite oxidation,AN-NO)性能。

    1.2.2 異養(yǎng)硝化性能實驗

    取3份20 L經(jīng)富集培養(yǎng)的生物絮團,測定其特性為:MLSS=2 777 mg·L-1,MLVSS=1 853 mg·L-1,SVI=44.41 mL·g-1,SV=12.33%,MLVSS/MLSS=66.73%。用自來水反復沖洗5次,移入圖1-A所示反應器中,饑餓處理12 h后,以NH4Cl為氮源、赤砂糖為碳源,調(diào)節(jié)C/N至16,NH4+-N初始濃度 8.00 mg·L-1。定時監(jiān)測反應器中三氮及pH、DO、COD、堿度等變化情況,以測定異養(yǎng)氨氧化(heterotrophic ammonia oxidation,HN-AO)性能。

    1.2.3 好氧反硝化

    取2 L經(jīng)富集培養(yǎng)的生物絮團,測定其特性為:MLSS=3 977 mg·L-1,MLVSS=2 383 mg·L-1,SVI=46.10 mL·g-1,SV=18.33%,MLVSS/MLSS=59.92%。用自來水反復沖洗清洗5次,移入圖1-B所示反應器中,以NaNO3為氮源,赤砂糖為碳源,調(diào)節(jié)C/N至16,-N質(zhì)量濃度約20 mg·L-1。定時監(jiān)測反應器中-N、NO3--N及pH、DO、COD、堿度等變化情況,以測定生物絮團的好氧反硝化(aerobic denitrification,AD)性能。

    1.3 檢測指標及方法

    1.3.1 檢測分析NH4+-N:水楊酸法(哈希氰尿酸-水楊酸試劑粉包);:N-(1-萘基)-乙二胺光度法;:麝香草芬分光光度法;COD:重鉻酸鉀氧化法;總堿度:微量滴定法;MLSS:恒量稱重法;SV:沉降法;MLVSS:高溫灼燒法;pH、DO、T:哈希HQ40D多參數(shù)溶氧儀[20]。

    2)比氨氧化速率(special ammonia oxidizing rate,SAOR)、比亞硝酸鹽氮氧化速率(special nitrite oxidizing rate,SNOR)、比硝酸鹽還原速率(special nitrate reduction rate,SNiRR)依據(jù)下式計算[22-24]:

    2 結(jié)果與分析

    2.1 自養(yǎng)硝化性能

    2.1.1 自養(yǎng)氨氧化性能

    生物絮團自養(yǎng)氨氧化性能如圖2所示。從圖2可以看出,NH4+-N質(zhì)量濃度隨時間延長呈快速降低趨勢,6 h時,質(zhì)量濃度由7.06 mg·L-1降至 0.47 mg·L-1,ARE為 93.42%;至8 h時,濃度維持在 0.21 mg·L-1,ARE達 97.10%。NO2--N濃度隨時間延長出現(xiàn)輕微升高,至4 h時達到峰值,為 0.44 mg·L-1;隨后開始降解,8 h時降至0.02 mg·L-1。作為硝化反應的最終產(chǎn)物,隨降解而逐漸累積,從0 h的 5.28 mg·L-1升至 8 h的 14.51 mg·L-1。DO、pH變化情況如圖3所示,DO在整個實驗過程中基本穩(wěn)定,均大于 8.00 mg·L-1,處于高DO狀態(tài);pH從0到8 h出現(xiàn)了一定程度的降低。

    圖2 自養(yǎng)氨氧化性能Fig.2 Performance of AN-AO

    圖3 自養(yǎng)氨氧化DO和pH變化Fig.3 Dynam ics of DO and pH in the AN-AO

    2.1.2 自養(yǎng)亞硝酸鹽氧化性能

    圖4 亞硝酸鹽氧化性能Fig.4 Performance of AN-NO

    圖5 亞硝酸鹽氧化DO和pH變化Fig.5 Dynam ics of DO and pH in the AN-NO

    2.2 異養(yǎng)硝化性能

    2.2.1 異養(yǎng)硝化性能實驗

    圖6反映了微生物以赤砂糖為外加碳源、氯化銨為氮源時,反應器內(nèi)三氮、ARE和(和的 積 累 量 與的轉(zhuǎn)化量之比)的變化情況??梢园l(fā)現(xiàn),生物絮團表現(xiàn)出良好的去除性能。經(jīng)過2.5 h反應,質(zhì)量濃度降至0.03 mg·L-1,ARE接近100.00%。在0.5 h內(nèi)上升至2.62mg·L-1,后又快速降低,在3 h降低至0 mg·L-1。呈現(xiàn)先降低后升高,最后趨于平穩(wěn),前0.5 h從初始質(zhì)量濃度的4.37 mg·L-1降低到3.03 mg·L-1;0.5 h后開始緩慢上升,至2.5 h濃度增加至 6.08 mg·L-1而趨于平穩(wěn)狀態(tài)。而的變化情況為在0.5 h達到最高值0.71,后逐漸降低,直至8 h,的積累量比轉(zhuǎn)化量為0.23。

    由圖7中DO與pH變化情況表示,加入碳源,系統(tǒng)中DO和pH快速降低。隨著反應的進行,DO和pH值曲線出現(xiàn)相吻合的特征凹點(分別標記為C和c),0.5 h后又趨于平穩(wěn)。

    2.2.2 好氧反硝化

    圖9為pH和DO的變化情況。DO在反應開始階段迅速降低,0.2 h降至最低,從7.93 mg·L-1降至 6.28 mg·L-1,而后開始逐漸升高,至2 h時升至接近初始值。pH出現(xiàn)些微下降,至0.4 h從7.39降至最低值 7.02,0.4 h以后又開始緩慢升高,2 h時升至7.51。

    圖6 異養(yǎng)硝化性能Fig.6 Performance of HN-AO

    圖7 異養(yǎng)硝化DO和pH變化Fig.7 Dynam ics of DO and pH in the HN-AO

    圖8 好氧反硝化性能Fig.8 Performance of AD

    圖9 好氧反硝化DO和pH變化Fig.9 Dynam ics of DO and pH in the AD

    2.3 自養(yǎng)和異養(yǎng)硝化特性對比

    2.3.1 氮降解速率、NiAR和 TIN去除

    如圖10所示,以氮化合物滿足養(yǎng)殖水質(zhì)要求時為終止點,各氮化合物濃度與反應時間均呈現(xiàn)線性相關關系,自養(yǎng)氨氧化、自養(yǎng)亞硝酸鹽氧化、異養(yǎng)氨氧化與時間相關性 R2分別為0.99、0.99和0.98(P<0.05)。

    圖11-A為自養(yǎng)硝化與異養(yǎng)硝化過程中NiAR隨時間的變化情況。異養(yǎng)硝化過程中,NO2--N積累明顯,在0.5 h時NiAR達到峰值,為46.37%,而后開始降低,2.5 h約降為0。自養(yǎng)硝化過程,NO2--N沒有明顯的積累,4 h時NiAR達到最大值,但僅為3.31%。

    圖11-B是不同反應過程中TIN的變化情況,異養(yǎng)硝化過程的TIN去除率遠大于自養(yǎng)氨氧化過程。自養(yǎng)氨氧化過程中,反應結(jié)束時的TIN為14.73 mg·L-1,較初始的 12.82 mg·L-1略高;亞硝酸鹽氧化過程TIN從初始濃度12.94 mg·L-1降至 11.80 mg·L-1,去除率為 8.81%;而異養(yǎng)硝化過程 TIN從 11.10 mg·L-1降至 5.96 mg·L-1,去除率達 53.69%。

    圖10 氮素降解速率Fig.10 Nitrogen degradation rate

    圖11 亞硝酸鹽氮積累率和總無機氮去除率Fig.11 NiAR accumulation rate and TIN removal rate

    2.3.2 堿度和 COD的消耗

    圖12-A為自養(yǎng)硝化與異養(yǎng)硝化過程中堿度消耗情況。從圖12-A中可見,自養(yǎng)硝化、亞硝酸鹽氧化及異養(yǎng)硝化堿度初始值分別為128.20 mg·L-1、109.87 mg· L-1及 122.25 mg·L-1(以 CaCO3計),實驗結(jié)束時,分別為98.30 mg·L-1、84.01 mg·L-1及 99.32 mg·L-1。根據(jù) NH4+-N、NO2--N降解量及堿度的消耗量,可核算得到每降解1 g NH4+-N,自養(yǎng)硝化、亞硝酸鹽氧化和異養(yǎng)硝化過程分別消耗4.30 g、2.49 g和3.34 g堿度。

    圖12-B反映了不同反應過程中COD消耗情況。自養(yǎng)氨氧化和亞硝酸鹽氧化過程無外加碳源,僅對反應器中殘留的COD進行消耗,COD從初始的 40.14 mg·L-1和 35.14 mg·L-1分別下降到結(jié)束時的 23.95 mg·L-1和 11.57 mg·L-1。而異養(yǎng)硝化過程COD從初始的154.43 mg·L-1降至 24.90 mg·L-1。

    圖12 堿度和COD的消耗對比Fig.12 Comparison of alkalinity and COD consumption

    3 討論

    3.1 自養(yǎng)硝化性能

    本實驗研究結(jié)果說明了以低C/N馴化的生物絮團具有較好的全程硝化性能,NO2--N累積量少,自養(yǎng)氨氧化實驗期間質(zhì)量濃度變化均在羅非魚可承受范圍內(nèi)·L-1)[17-18],pH降低程度大于自養(yǎng)亞硝酸鹽氧化過程,需進行調(diào)節(jié),該現(xiàn)象可能是因為絮團微生物細胞合成時,全程硝化的生化反應過程分為兩階段,反應式如下[25]:

    式(4)~式(5)中:C5H7NO2代表微生物菌體的化學方程式,硝化反應對堿度的消耗主要發(fā)生在第一階段,即自養(yǎng)氨氧化過程微生物需要消耗更多的堿度,導致該階段pH降低程度多于自養(yǎng)亞硝酸鹽氧化過程。自養(yǎng)硝化性能實驗的氨氮降解情況也表明以低C/N馴化生物絮團可以定向富集出自養(yǎng)硝化菌。

    3.2 異養(yǎng)硝化性能

    對于異養(yǎng)硝化反應過程中,DO和pH出現(xiàn)相吻合的最低值C和c。主要是由于反應初期,COD充足,生物絮團中的異養(yǎng)微生物呼吸代謝旺盛,消耗了大量的DO,使得水中復氧速率小于DO的消耗速率,導致DO降低,而呼吸作用加劇意味著會釋放出更多的CO2,溶于水體,導致水體pH下降。隨著水中COD的消耗,微生物呼吸作用減緩,DO消耗降低,水中復氧速率大于DO消耗速率,DO濃度上升,直至恢復初始水平,而實驗過程中采用氣泵增氧對微生物呼出CO2存在吹脫作用,系統(tǒng)中CO2的量減少,可能是使得pH再次上升的原因。

    另外,為了研究2.2.1所述異養(yǎng)硝化反應前期NO3--N質(zhì)量濃度下降以及反應過程中降低的問題,開展了在初始DO維持8.00 mg·L-1條件下,以赤砂糖為碳源,NaNO3為氮源進行好氧反硝化實驗驗證。實驗研究得到 NaRE為27.85%,這說明在 COD和存在的情況下,本實驗中馴化的生物絮團存在好氧反硝化作用。因為好氧反硝化過程會補充部分堿度,導致該過程pH波動小于異養(yǎng)硝化過程。劉文暢等[30]以生物絮團反應器作為中試規(guī)模循環(huán)水養(yǎng)殖系統(tǒng)的唯一水處理裝置時,發(fā)現(xiàn)了好氧反硝化優(yōu)勢菌種Hydrogenophaga和Terrimonas,也表明生物絮團中好氧反硝化是有可能存在的。

    3.3 自養(yǎng)硝化和異養(yǎng)硝化特性對比

    自養(yǎng)硝化和異養(yǎng)硝化對無機氮均有著良好的降解效能。為進一步對比自養(yǎng)和異養(yǎng)過程中氮的去除速率,本實驗對反應過程中各形態(tài)氮濃度隨時間的變化規(guī)律進行線性擬合。在此基礎上計算自養(yǎng) SAOR、SNOR和異養(yǎng)SAOR分別為13.17 mg·(gVSS·d)-1、29.20 mg·(gVSS·d)-1和40.28 mg·(gVSS·d)-1。由此可見,在自養(yǎng)硝化過程中,SAOR<SNOR,氨氧化過程為自養(yǎng)硝化反應的限速步驟,這解釋了圖2中NO2--

    N基本無累積的現(xiàn)象。異養(yǎng)SAOR為自養(yǎng)SAOR的3.06倍,即異養(yǎng)硝化過程可實現(xiàn)NH4+-N的快速降解。然而,異養(yǎng)硝化過程中NiAR會出現(xiàn)快速積累現(xiàn)象,而自養(yǎng)硝化不會出現(xiàn)明顯的積累。這說明添加碳源的異養(yǎng)硝化過程中,碳源的存在可能會短暫抑制NO2--N的氧化,而當碳源被異養(yǎng)硝化菌利用后,NO2--N才開始被氧化。也有可能加入碳源后,亞硝酸鹽氧化菌代謝通路會受到一定的影響,導致響應時間增長,出現(xiàn)了前期的積累。

    對比自養(yǎng)硝化和異養(yǎng)硝化TIN變化情況,發(fā)現(xiàn)自養(yǎng)氨氧化TIN結(jié)束值高于初始值,分析原因可能為反應初始階段為微生物對NH4+-N的吸附階段,從而使測得的TIN比實際值偏低。隨后微生物對所吸附含氮化合物的釋放,使得后續(xù)測得TIN值較初始值略高[31]。亞硝酸鹽氮氧化過程TIN去除率僅為8.81%,而異養(yǎng)硝化過程TIN去除率為53.69%。這主要是由于在有機碳源存在條件下,異養(yǎng)硝化產(chǎn)生了NO3--N可能會使好氧反硝化作用繼續(xù)發(fā)生。異養(yǎng)硝化和好氧反硝化的耦合反應,有利于養(yǎng)殖水中無機氮的徹底脫除。自養(yǎng)硝化-好氧反硝化這一反應特性可能也是導致異養(yǎng)硝化堿度消耗低于自養(yǎng)硝化的原因,因為多數(shù)異養(yǎng)硝化菌亦是好氧反硝化菌,反硝化過程產(chǎn)生堿度,在一定程度上補充硝化過程中消耗的堿度[26]。一般來說,生物絮團培養(yǎng)過程中,為了提高氮轉(zhuǎn)化效率,堿度需提高至150 mg·L-1以上[32]。FURTADO等[33-34]研究證實水體堿度低于100 mg·L-1時,不利于生物絮團系統(tǒng)中硝化菌的硝化反應,而150~300 mg·L-1的堿度水平更利于生物絮團的形成及硝化菌落的建立。

    綜上,從環(huán)境效益的角度分析,異養(yǎng)硝化對NH4+-N去除速率快,且和好氧反硝化有耦合反應,有利于養(yǎng)殖水中無機氮素的徹底脫除,降低養(yǎng)殖水的富營養(yǎng)化潛勢。從經(jīng)濟效益的角度分析,異養(yǎng)硝化反應過程DO波動劇烈,意味著原位處理養(yǎng)殖水的情況下,為保證養(yǎng)殖生物安全,需要更多DO供給,電耗更高。此外,異養(yǎng)硝化能節(jié)約一定的堿度添加量,但需要消耗大量外加碳源。鑒于此,如何優(yōu)化現(xiàn)有的生物絮團養(yǎng)殖工藝,調(diào)控自養(yǎng)和異養(yǎng)硝化比例,實現(xiàn)環(huán)境效益和經(jīng)濟效益兼顧,還需進一步研究。

    4 小結(jié)

    1)低C/N馴化培養(yǎng)的生物絮團具有優(yōu)良的無機氮去除效能。最終AN與HN-AD的ARE分別為97.10%、100.00%,NiRE為100.00%。

    2)生物絮團的HN對NH4+-N的降解速率要快于 AN,自養(yǎng) AOR、NOR和異養(yǎng) AOR分別為1.14 mg·(L·h)-1、2.15 mg·(L·h)-1、3.11 mg·(L·h)-1;HN-AD的耦合作用,有利于養(yǎng)殖水中無機氮的徹底脫除。

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