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    椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組分析*

    2018-10-23 11:17:36徐志文任雪敏張枝全劉乃勇朱家穎
    西南林業(yè)大學學報 2018年5期
    關(guān)鍵詞:微衛(wèi)星椰子堿基

    徐志文 任雪敏 王 俊 張枝全 劉乃勇 閻 偉 朱家穎

    (1. 西南林業(yè)大學云南省森林災(zāi)害預警與控制重點實驗室,云南 昆明 650224;2. 中國熱帶農(nóng)業(yè)科學院椰子研究所,海南 文昌 571339)

    椰子織蛾 (Opisinaarenosella) 又名椰子木蛾和椰蛀蛾等,為鱗翅目 (Lepidoptera)、織蛾科 (Oecophoridae) 昆蟲。它的原產(chǎn)地為南亞的印度和斯里蘭卡[1],后傳播到南亞的其他地區(qū)和東南亞地區(qū),包括巴基斯坦、泰國、馬來西亞、緬甸等多個國家和地區(qū)[2],并造成嚴重危害。隨著頻繁的國際貿(mào)易發(fā)展,該蟲首次于2013年8月在我國海南省萬寧市被發(fā)現(xiàn),并在該地區(qū)造成一定危害[3]。我國于2014年將其列為檢疫性入侵害蟲,現(xiàn)主要分布于我國的海南、廣西、廣東和福建[4],其他地區(qū)還未見報道。由于椰子織蛾的環(huán)境適應(yīng)性強,加之寄主種類繁多(主要為棕櫚科植物)[5],因此該害蟲在我國的潛在分布范圍廣[6]。一旦椰子織蛾在我國大面積傳播擴散,將會造成難以預估的經(jīng)濟損失。

    目前,國內(nèi)外針對椰子織蛾的研究主要限于形態(tài)特征、生物學特性、危害和防治等方面[2,4,7],甚少有涉及分子層面的研究報道。截至目前,僅Rajesh等對來自5個地區(qū)的18份椰子織蛾幼蟲線粒體細胞色素氧化酶亞基Ⅰ基因進行測序,分析揭示了它們的遺傳多樣性[8]。在NCBI中,現(xiàn)僅檢索到椰子織蛾的基因序列不到30條,也未見轉(zhuǎn)錄組學或其他組學手段應(yīng)用于該害蟲的研究中。隨著快速、經(jīng)濟、高效的二代高通量測序技術(shù)的發(fā)展和成熟,且轉(zhuǎn)錄組具有不需要基因組為背景、準確的大數(shù)據(jù)量、低冗余性和檢測低豐富度基因等優(yōu)點[9]。轉(zhuǎn)錄組學手段被廣泛的應(yīng)用于昆蟲分子生物學研究領(lǐng)域,其在挖掘基因、探究基因功能和基因差異表達、分析代謝途徑、開發(fā)單核苷酸多態(tài)性和微衛(wèi)星分子標記等方面具有其特有的優(yōu)勢[10-12]。據(jù)此,為了得到比較全面的椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù),本研究基于Illumina HiSeqTM2000測序平臺對該害蟲幼蟲和成蟲的混合樣品開展轉(zhuǎn)錄組測序及分析,測序獲得的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)填補了椰子織蛾轉(zhuǎn)錄信息的空白,將為后期挖掘分子標記、研究椰子織蛾的遺傳多樣性及其功能基因提供參考。

    1 材料與方法

    1.1 昆蟲材料

    本實驗的供試蟲源椰子織蛾幼蟲、雌雄成蟲,均由中國海南熱帶農(nóng)業(yè)科學院椰子研究所提供。室內(nèi)飼養(yǎng)條件為:溫度 (28 ± 1)℃,飽和濕度,光照12 h/d。選擇中齡幼蟲、雌雄成蟲各2頭,混合研磨后轉(zhuǎn)移至盛有Trizol試劑的離心管中,保存在-80 ℃超低溫冰箱用于轉(zhuǎn)錄組測序。

    1.2 樣品總RNA提取與質(zhì)檢

    參照Trizol Reagent說明書提取樣品總RNA,分別利用1%瓊脂糖凝膠電泳、Agilent 2100 (Agilent Technologies, CA, USA)、Nanodrop分光光度計 (IMPLEN, CA, USA) 和Qubit RNA Assay Kit (Life Technologies, CA, USA) 檢測分析總RNA質(zhì)量、完整性和純度 (OD260與OD280比值),并精確定量。

    1.3 構(gòu)建cDNA文庫和上機測序

    用帶有Oligo (dT) 的磁珠富集mRNA。在高溫條件下,加入fragmentation buffer將mRNA打斷成短片段,以此為目的模板,用六堿基隨機引物 (random hexamers) 和逆轉(zhuǎn)錄酶 (RNase H-) 合成一鏈cDNA,之后加入緩沖液、dNTPs、DNA polymerase I和RNase H合成二鏈cDNA,再用AMPure XP beads純化雙鏈cDNA。純化的雙鏈cDNA先進行末端修復、加A尾并連接測序接頭,再用AMPure XP beads選擇大小在150~200 bp的片段。最后進行PCR擴增,后用AMPure XP beads純化PCR產(chǎn)物,得到最終的文庫。文庫質(zhì)檢合格和定量后,將cDNA文庫置于Illumina HiSeqTM2000平臺上機測序。

    1.4 轉(zhuǎn)錄組拼接和功能基因注釋

    測序的原始數(shù)據(jù) (raw read) 經(jīng)質(zhì)量評估合格后,去除序列接頭、poly-N的比例大于10%和低質(zhì)量的read,得到高質(zhì)量序列 (clean read),并計算Q20、Q30、GC含量和序列重復水平。利用Trinity軟件將高質(zhì)量的clean read進行拼接[13],將拼接得到的unigene運用BLAST軟件在七大數(shù)據(jù)庫:Nr (NCBI non-redundant protein sequences);Nt (NCBI non-redundant nucleotide sequences);Pfam (Protein family);KOG/COG (Clusters of Orthologous Groups);Swiss-Prot (A manually annotated and reviewed protein sequence database); KEGG (Kyoto Encyclopedia of Genes and Genomes);GO (Gene Ontology) 中進行比對 (E-value < 1.0 × 10-5),獲得功能基因注釋信息。

    1.5 微衛(wèi)星鑒定

    基于拼接得到的椰子織蛾unigene序列,利用MISA軟件 (http://pgrc.ipk-gatersleben.de/misa/misa.html) 進行微衛(wèi)星鑒定。搜索參數(shù)設(shè)置為:單堿基重復次數(shù) ≥10,二堿基重復次數(shù) ≥6,三堿基重復次數(shù) ≥5,四堿基重復次數(shù) ≥5,五堿基重復次數(shù) ≥5,六堿基重復次數(shù) ≥5,相鄰2個微衛(wèi)星重復單元間的最大間隔長度為100 bp。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 測序質(zhì)控分析和轉(zhuǎn)錄組組裝

    測序獲得54 571 146條原始序列,經(jīng)過濾去除低質(zhì)量序列后得到50 606 604條clean reads,共計5.06 Gb。樣本的GC含量為49.85%,Q20為96.86%,堿基Q30為89.44%。經(jīng)Trinity軟件組裝后 (表1),共得到51 578條轉(zhuǎn)錄本 (transcript) 和37 416條unigenes。轉(zhuǎn)錄本平均長度為1 035 bp,N50為1 939 bp,在200~300 bp長度之間的轉(zhuǎn)錄本數(shù)量最大,占總比約26.99%,而長度大于2 000 bp的占比最小,占13.84%。Unigene平均長度為803 bp,N50為1 415 bp,在200~300 bp長度之間的unigene數(shù)量最多,占總比約32.91%,長度大于2 000 bp的數(shù)量最少,占8.91%。

    表1 椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組組裝結(jié)果統(tǒng)計Table 1 Statistics of transcriptome assembly for O.arenosella

    2.2 Unigene功能注釋結(jié)果

    Unigene在七大數(shù)據(jù)庫中Blast比對得到功能注釋信息 (表2)。組裝獲得的37 416條unigenes被成功注釋19 154條,注釋率為51.19%。在每一個數(shù)據(jù)庫中都被注釋的有1 977條,占5.28%。其中,在Nr中被注釋的unigene最多 (17 428條,46.57%),之后則依次是GO (14 131條,37.76%)、PFAM (12 217條,32.65%)、SwissProt (11 561條,30.89%)、KOG (8 606條,23%) 和KEGG (6 171條,16.49%);在Nt數(shù)據(jù)庫中被注釋的最少,為4 144條,占11.07%。從在Nr數(shù)據(jù)庫中注釋的物種相似分布可知 (圖1),與黑脈金斑蝶 (Danausplexippus) 的相似基因最多 (68.45%),之后依次是家蠶 (Bombyxmori) (6.63%)、柑橘鳳蝶 (Papilioxuthus) (3.66%)、赤擬谷盜 (Triboliumcastaneum) (2.13%)和草地貪夜蛾 (Spodopterafrugiperda) (1.41%),而與其他物種的達到17.72%。

    表2 椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組功能注釋結(jié)果統(tǒng)計Table 2 Statistics of transcriptome functional annotation for O.arenosella

    圖1椰子織蛾unigene與Nr數(shù)據(jù)庫其他物種相似比對
    Fig.1 Similarity comparison of unigene fromO.arenosellawith other species in Nr database

    2.3 Unigene功能分類

    在GO數(shù)據(jù)庫中,被注釋到的14 131條unigenes共得到了83 418次功能注釋,其被分為3個類別 (圖2):生物學過程、細胞組分和分子功能,3個功能組又被劃分為54個第2層級分類。注釋到生物學過程的最多,為38 686條,占比46.38%;細胞組分次之,為26 506條,占比31.77%;分子功能最少,為18 226條,占比21.85%。其生物學過程中細胞過程 (Cellular process,8 378條) 和代謝過程 (Metabolic process,7 550條) 的數(shù)量最多,節(jié)律進程 (Rhythmic process,6條) 的最少;細胞組分中細胞部分 (Cell part,5 301條) 和細胞 (Cell,5 301條) 的最多,核狀小體 (Nucleoid,4條) 的最少;分子功能中結(jié)合活性 (Binding,8 314條) 和催化活性 (Catalytic activity,6 248條) 的最多,調(diào)節(jié)受體活性 (Receptor regulator activity,3條) 的最少。

    圖2椰子織蛾unigene的GO分類
    Fig.2 GO categories ofO.arenosellaunigene

    轉(zhuǎn)錄組拼接得到的unigene在COG數(shù)據(jù)庫中比對分析,被成功注釋的8 606條unigenes共得到9 637個功能注釋,注釋到26個分類 (圖3)。其中R類 (具有一般功能) 注釋到的數(shù)量最多,有1 847條 (19.17%);其次是T類 (信號轉(zhuǎn)導機制) 1 234條 (12.8%),O類 (翻譯后修飾、蛋白轉(zhuǎn)運及蛋白伴侶) 828條 (8.59%),S類 (未知功能) 552條 (5.73%),J類 (參與翻譯、核糖體結(jié)構(gòu)及生物合成) 502條 (5.21%);其余的都小于500條,最少的是X類 (未命名蛋白) 2條 (0.02%)。

    進行KEGG注釋到的6 171條unigenes參與5大類通路分支 (圖4):細胞過程 (Cellular processes),環(huán)境信息處理 (Environmental information processing),遺傳信息處理 (Genetic information processing),代謝 (Metabolism) 和有機系統(tǒng) (Organismal systems),其又歸屬于信號轉(zhuǎn)導 (Signal transduction)、翻譯 (Translation) 和內(nèi)分泌系統(tǒng) (Endocrine system) 等32類亞通路。將KEGG數(shù)據(jù)庫作為參考,最后將unigene定位于260條通路 (數(shù)據(jù)未展示),有16條與脂類代謝 (Lipid metabolism) 相關(guān)的通路,14條與異物生物降解與代謝 (Xenobiotics biodegradation and metabolism) 相關(guān)的通路。其中有大于200條unigenes被注釋到的代謝途徑只有核糖體 (ribosome,220條),在100~200條unigenes之間的有18條生化代謝途徑,其余代謝途徑上注釋到的unigene數(shù)量都小于100條。

    圖3椰子織蛾unigene的COG分類
    Fig.3 COG categories ofO.arenosellaunigene

    A. 細胞過程Cellular processes;B. 環(huán)境信息處理Environmental information processing;C. 遺傳信息處理Genetic information processing;D. 代謝Metabolism;E. 有機系統(tǒng)Organismal systems。

    圖4椰子織蛾unigene的KEGG分類
    Fig.4 KEGG categories ofO.arenosellaunigene

    2.4 微衛(wèi)星位點分析

    在37 416條unigenes中,2 849條unigenes中存在微衛(wèi)星位點,含1個以上微衛(wèi)星位點的序列數(shù)為317條。在鑒定到的3 248個微衛(wèi)星位點中 (表3),有2 282個單堿基重復單元,重復次數(shù)最多的是10次;312個二堿基重復單元,重復次數(shù)最多的是6次;592個三堿基重復單元,重復次數(shù)最多的是5次;56個四堿基重復單元,重復次數(shù)最多的是5次;4個五堿基重復單元,重復次數(shù)最多的是5次;2個六堿基重復單元,重復次數(shù)僅為6次。

    表3 椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組的微衛(wèi)星重復單元分析統(tǒng)計Table 3 Summary of repeat units of microsatellite in O.arenosella transcriptome

    椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組中不同微衛(wèi)星重復類型分布見表4。在單堿基重復單元中,1 176個的A重復類型最多,占比為36.21%;在二堿基重復單元中,67個的AT重復類型最多,占比為2.06%;在三堿基重復單元中,50個的GGC重復類型最多,占比為1.54%;在四堿基重復單元中,各為5個的AATA和ATGG重復類型最多,占比為0.16%;在五堿基重復單元中,其重復類型僅為4類,分別是CCTCG、 CTGCA、 TACAA和TGGGT;在六堿基重復單元中,僅含有一個GATGAC和一個TGCCCA重復類型。

    表4 椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組中22個不同微衛(wèi)星重復類型統(tǒng)計Table 4 Statistics of repeat types of 22 microsatellites in O.arenosella transcriptome

    3 結(jié)論與討論

    轉(zhuǎn)錄組測序去除低質(zhì)量的數(shù)據(jù)后,通常以N50和Q30來評估轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)質(zhì)量。據(jù)目前轉(zhuǎn)錄組研究報道,認為N50值越大得到的長片段就越多,拼接效果越好,且當Q30值大于80%時,說明其測序質(zhì)量可靠[14],但也有學者認為Q30值大于85%測序質(zhì)量才可靠[15]。雖然本次轉(zhuǎn)錄組測序的N50的值比目前報道的大墊尖翅蝗 (Epacromiuscoerulipes)[16]、桑絹絲野螟 (Glyphodespyloalis)[17]等部分昆蟲轉(zhuǎn)錄組測序得到的N50小,但卻大于小菜蛾 (Plutellaxylostella)[18]、日本蚱 (Tetrixjaponica)[19]、亞洲玉米螟 (Ostriniafurnacalis)[20]等昆蟲轉(zhuǎn)錄組測序的N50。并且,本研究椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組測序得到的Q30值大于85%,表明本次測序質(zhì)量可信度較高[18,21]。因此,本研究獲得的轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)質(zhì)量高,可用于功能注釋及新基因挖掘等后續(xù)研究。

    去除低質(zhì)量序列拼接得到的unigene在Nr、Nt、Pfam、Swiss-prot、GO、KEGG和KOG數(shù)據(jù)庫中進行比對分析,預測其可能的功能分類和分子代謝通路。其中,未被成功注釋的有18 262條 (48.81%),表明得到的unigene中存在很多功能未知的新基因[22]。另外,未被注釋unigene的存在與拼接的片段長度短、缺少基因組信息和目前仍有大量的基因功能信息缺乏有關(guān)[23-24]。在Nr數(shù)據(jù)庫中的同源比對搜索結(jié)果顯示,椰子織蛾unigene注釋到黑脈金斑蝶和家蠶上的序列最多,而注釋到赤擬谷盜和麗蠅蛹集金小蜂 (Nasoniavitripennis) 等昆蟲上的卻較少。這是由于黑脈金斑蝶和家蠶的基因組已被測定,且與椰子織蛾都屬于鱗翅目昆蟲所致。

    通過GO這個國際標準化的基因功能分類體系,明確了椰子織蛾的GO功能分類,其第1層級基因注釋分類比例與鱗翅目的柞蠶 (Antheraeapernyi)[25]、菜粉蝶 (Pierisrapae)[24]等的相似。在KEGG分析中,發(fā)現(xiàn)了一些椰子織蛾unigene被注釋到脂類代謝和異物生物降解與代謝兩類代謝通路上。這兩類代謝通路中包含與昆蟲抗藥性密切相關(guān)的代謝途徑,如注釋到50條unigenes的細胞色素P450外源物質(zhì)代謝、注釋到42條unigenes的細胞色素P450藥物代謝和注釋到48條unigenes的其他酶的藥物代謝途徑,這為后續(xù)研究椰子織蛾的抗藥性機制做了鋪墊。但是,直接通過生物信息學方法得到的基因GO和KEGG注釋結(jié)果會存在假陽性,這已經(jīng)在黑腹果蠅 (Drosophilamelanogaster)、布氏錐蟲 (Trypanosomabrucei) 等中通過實驗驗證具體的基因功能得到了證實[26]。因此,該研究得到的GO和KEGG注釋結(jié)果也會存在假陽性。GO和KEGG注釋結(jié)果雖然能為挖掘研究椰子織蛾的基因功能提供了方便,但還需依據(jù)得到的功能分類或通路結(jié)果進行進一步的試驗驗證才能真正揭示相關(guān)基因的生理功能。從轉(zhuǎn)錄組中鑒定得到的3 248個微衛(wèi)星,其單堿基、二堿基和三堿基重復較為豐富,其他重復數(shù)量較少,這與黃粉甲 (Tenebriomolitor)、大墊尖翅蝗等[12,16]昆蟲的微衛(wèi)星研究結(jié)果類似。本研究獲得的椰子織蛾轉(zhuǎn)錄組數(shù)據(jù)為挖掘功能基因從分子層面揭示該害蟲的生物學和生理學相關(guān)機制奠定基礎(chǔ),鑒定獲得的微衛(wèi)星有助于今后開發(fā)多態(tài)性微衛(wèi)星引物來研究該害蟲的種群遺傳結(jié)構(gòu)及其分子機制。

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