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    微生物共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的適宜條件

    2018-08-10 07:09:30蘇宏南陳切希趙甲元遲原龍賈冬英姚開
    食品與發(fā)酵工業(yè) 2018年7期
    關(guān)鍵詞:氯氰共培養(yǎng)菊酯

    蘇宏南,陳切希,趙甲元,遲原龍,賈冬英,姚開*

    1(四川大學 輕紡與食品學院,四川 成都,610065) 2(旌陽區(qū)食品藥品監(jiān)督管理局,四川 德陽,618000) 3(四川師范大學 生命科學學院,四川 成都,610101)

    β-氯氰菊酯(β-cypermethrin,β-CY)是一種高效擬除蟲菊酯類農(nóng)藥,被廣泛應(yīng)用于果蔬、谷物等蟲害的防治。β-氯氰菊酯疏水性強、對光熱穩(wěn)定,自然條件下降解緩慢,在中性土壤中的半衰期可達165 d[1],長期施用易造成土壤和農(nóng)產(chǎn)品中殘留量超標,進而對生物體造成危害[2]。微生物降解法因其高效、安全等特點,已成為降解農(nóng)藥的首選方法之一[3]。

    通常,土壤環(huán)境中的混合菌株比單一菌株具有更強的農(nóng)藥降解能力[4],尤其是具有菌絲體結(jié)構(gòu)的菌株,不僅自身對污染物會有一定的降解作用[5],還能使其他微生物借助其菌絲體穿越土壤的空隙層,實現(xiàn)更大范圍的分散,增大微生物與土壤中污染物的接觸概率,提高污染物的降解率。此外,菌絲體還能刺激其他微生物的生長和生物活性的表達,從而更有利于微生物作用于土壤中的污染物[6]。

    本文以長期噴施擬除蟲菊酯類農(nóng)藥的菜園土壤為菌源,篩選得到對β-氯氰菊酯具有降解能力的放線菌,并將其與前期篩選得到的對β-氯氰菊酯具有較強降解能力的地衣芽孢桿菌B-1共同培養(yǎng),考察其對β-氯氰菊酯的適宜降解條件和降解效果,為農(nóng)產(chǎn)品和糧食中殘留的擬除蟲菊酯類農(nóng)藥生物降解的深入研究提供參考數(shù)據(jù)。

    1 材料與方法

    1.1 試劑與培養(yǎng)基

    (1) 試劑:β-氯氰菊酯標準品(純度為99.7%,國家標準物質(zhì)中心),色譜純乙腈(美國TEDIA試劑公司),其他試劑均為國產(chǎn)分析純。

    (2) 查氏培養(yǎng)基(CDM):蔗糖30 g,NaNO31.0 g,KCl 0.5 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,K2HPO4·3H2O 1.0 g,F(xiàn)e2(SO4)30.01 g,胰蛋白胨0.5 g,吐溫80 2.0 mL,去離子水1 000 mL,pH 7.2~7.4,121℃滅菌20 min。

    (3) 高氏一號培養(yǎng)基(GSM):可溶性淀粉20 g,KNO31.0 g,K2HPO4·3H2O 0.5 g,NaCl 0.5g,F(xiàn)eSO4·7H2O 0.01 g,MgSO4·7H2O 0.5 g,吐溫80 2.0 mL,去離子水1 000 mL,pH 7.2~7.4,121℃滅菌20 min。

    (4) LB培養(yǎng)基:胰蛋白胨5.0 g,酵母膏2.0 g,NaCl 10 g,吐溫80 2.0 mL,去離子水1 000 mL,pH 7.0,121℃滅菌20 min。

    1.2 儀器與設(shè)備

    LC-10AT高效液相色譜儀,日本島津公司;TU-1800PC紫外分光光度計,北京普析通用儀器有限責任公司;KQ5200DB數(shù)控超聲波清洗器,昆山市超聲儀器有限公司;GL-20G-C高速冷凍離心機,上海安亭飛鴿有限公司。

    1.3 菌株篩選和鑒定

    (1) 菌株B-1:本實驗室前期從茶園土壤中篩選和馴化得到的地衣芽孢桿菌B-1(BacilluslicheniformisB-1),其在一定條件下對β-氯氰菊酯的降解率為77.0%。

    (2) 菌株K-1:從長期噴灑擬除蟲菊酯類農(nóng)藥的菜園土壤中篩選得到的放線菌。

    取土樣1.5 g,置于裝有28.5 mL CDM培養(yǎng)基(β-氯氰菊酯含量為50 μg/mL)的250 mL錐形瓶中,35℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)72 h;然后按5.0%轉(zhuǎn)接量,依此條件再進行3次重復(fù)培養(yǎng),并依次提高培養(yǎng)基中β-氯氰菊酯含量,分別為100、200、300 μg/mL;將最后一級培養(yǎng)液稀釋后涂布于GSM瓊脂培養(yǎng)基上,35℃培養(yǎng)72 h,對菌落進行分離和純化,從中篩選出對β-氯氰菊酯具有較強耐受性和較好降解能力的理想放線菌。

    參照陳少華等的方法對篩選的理想菌株進行生理生化鑒定[8]。菌株16S rDNA測序由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司完成,從GenBank數(shù)據(jù)庫中選擇同源性高的16S rDNA基因序列,利用軟件ClustalX2.3和MEGA6.0構(gòu)建菌株系統(tǒng)發(fā)育樹。

    1.4 β-氯氰菊酯含量的測定

    用乙腈配制一系列不同含量的β-氯氰菊酯的標準溶液,參照劉芳芳的方法[7],測定β-氯氰菊酯的HPLC峰面積,平行重復(fù)3次,取其平均值。對β-氯氰菊酯含量(X)與其峰面積(Y)進行線性擬合,得到標準曲線方程:Y=68 023X+26 227,R2=0.999 9。

    將降解體系勻漿,取5.0 mL降解液與等體積乙腈混合,超聲(80 Hz,160 W)30 min,離心(8 000 r/min)20 min,上清液過有機濾膜(0.45 μm),濾液進行HPLC檢測,根據(jù)標準曲線方程計算β-氯氰菊酯含量,并按公式(1)計算降解率。

    降解率/%=(1-D/Dk)×100

    (1)

    式中:D,降解液中β-氯氰菊酯含量;Dk,空白對照組中β-氯氰菊酯含量。

    1.5 菌懸液的制備

    (1) 菌株B-1菌懸液:將活化的菌株B-1接種于LB培養(yǎng)基中(β-氯氰菊酯含量為50 μg/mL),35 ℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)48 h,冷凍離心(4 ℃,8 000 r/min)10 min,沉淀用無菌生理鹽水復(fù)溶,調(diào)整細胞濃度,制成OD600值為0.8的菌株B-1菌懸液。

    (2) 菌株K-1孢子懸液:將活化的菌株接種于GSM瓊脂培養(yǎng)基上(β-氯氰菊酯質(zhì)量濃度為100 μg/mL),30 ℃培養(yǎng)72 h。用無菌生理鹽水洗下孢子,振蕩混勻,調(diào)整其濃度,制成OD600值為1.0的菌株K-1孢子懸液。

    1.6 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯適宜條件的選擇

    (1) 培養(yǎng)基組成:將GSM培養(yǎng)基與LB培養(yǎng)基分別按1∶0、1∶1、0∶1(v/v)的比例混合,分別取β-氯氰菊酯含量為50 μg/mL的混合培養(yǎng)基28.5 mL,分裝于250 mL錐形瓶中。以1∶1(K-1∶B-1,v/v)的接種比例,分別接入菌懸液或孢子懸液,總接種量為5.0%(v/v),以等量的無菌生理鹽水替代菌懸液及孢子懸液作為空白對照,35℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)72 h,檢測β-氯氰菊酯的含量,并計算其降解率。

    (2) 接種比例:取β-氯氰菊酯質(zhì)量濃度為50 μg/mL的混合培養(yǎng)基28.5 mL,分裝于250 mL錐形瓶中。按5.0%(v/v)的接種量,分別以3∶1、2∶1、1∶1、1∶2、1∶3、1∶0、0∶1(K-1∶B-1,v/v)的比例接入其菌懸液或孢子懸液,以等量的無菌生理鹽水替代菌懸液及孢子懸液作為空白對照,35 ℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)72 h,檢測β-氯氰菊酯的含量,并計算其降解率。

    (3) 接種方式:取β-氯氰菊酯質(zhì)量濃度為50 μg/mL的混合培養(yǎng)基28.5 mL,分裝于250 mL錐形瓶中。分別按以下3種方式接入適宜比例的菌懸液或孢子懸液,總接種量為5.0%(v/v),以等量的無菌生理鹽水替代菌懸液及孢子懸液作為空白對照,35 ℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)72 h,檢測β-氯氰菊酯的含量,并計算其降解率:

    ①先接種菌株K-1,培養(yǎng)24 h后接種菌株B-1;

    ②先接種菌株B-1,培養(yǎng)24 h后接種菌株K-1;

    ③同時接種菌株K-1和菌株B-1。

    1.7 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的動力學分析

    分別取β-氯氰菊酯質(zhì)量濃度為50、100、200 μg/mL的混合培養(yǎng)基28.5 mL,分裝于250 mL錐形瓶中,按5.0%(v/v)的接種量和2∶1的比例(K-1∶B-1,v/v)接入菌懸液或孢子懸液,35 ℃振蕩(150 r/min)培養(yǎng)5 d,定時取樣,檢測β-氯氰菊酯的含量。選用Logistic方程[9]并利用軟件Origin 8.0對不同β-氯氰菊酯含量隨培養(yǎng)時間的變化進行非線性擬合。

    2 結(jié)果與討論

    2.1 菌株K-1的鑒定

    菌株K-1的生理生化特征如表1所示,其16S rDNA基因的PCR擴增結(jié)果如圖1所示。可以看出,菌株K-1符合鏈霉菌特征[8],其16S rDNA擴增產(chǎn)物凝膠電泳的顯示結(jié)果與測序長度1 273 bp吻合。BLAST基因同源性分析結(jié)果表明,菌株K-1與Streptomycesneopeptiniusstrain T41(GenBank登錄號為KU317914.1)及Streptomyceschartreusisstrain S14(GenBank登錄號為KT958872.1)均有99%的同源性,據(jù)此建立的系統(tǒng)進化樹如圖2所示。綜合菌株K-1的生理生化特征及序列比對結(jié)果,最終鑒定其為一株鏈霉菌(Streptomycessp. K-1)。

    表1 菌株K-1的生理生化特征Table 1 Physiological and biochemical characteristics ofstrain K-1

    注:“+”表示為陽性;“-”表示為陰性。

    M-Maker; 1-菌株K-1的PCR產(chǎn)物圖1 菌株K-1 16S rDNA的PCR擴增產(chǎn)物電泳圖Fig.1 Electrophoretogram of 16S rDNA PCR product of strain K-1

    *參考菌株來源于GenBank數(shù)據(jù)庫,括號內(nèi)為菌株在數(shù)據(jù)庫中的登錄號圖2 菌株K-1的系統(tǒng)發(fā)育樹Fig.2 Phylogenetic tree of strain K-1

    2.2 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的培養(yǎng)基組成確定

    不同培養(yǎng)基組成對β-氯氰菊酯降解效果的影響如圖3所示??梢缘贸?,當培養(yǎng)基為GSM(GSM∶LB=1∶0)和LB(GSM∶LB=0∶1)時,β-氯氰菊酯降解率分別為18.3%和75.3%,而當混合培養(yǎng)基的比例為1∶1(GSM∶LB,v/v)時,β-氯氰菊酯降解率可達80.6%,其原因可能是由于單一培養(yǎng)基中缺乏兩菌株共同生長的營養(yǎng)物質(zhì)[10]。因此,GSM和LB比例為1∶1(v/v)的混合培養(yǎng)基是菌株B-1和菌株K-1共同培養(yǎng)的適宜培養(yǎng)基。

    圖3 培養(yǎng)基組成對菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的影響Fig.3 Effect of culture compositions on β-CY degradation by co-culture of the strains

    2.3 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的接種比例確定

    兩菌株接種比例對β-氯氰菊酯降解效果的影響如圖4所示。可以得出,當菌株K-1和菌株B-1的接種比例為2∶1(v/v)時,β-氯氰菊酯的降解率可達84.1%,為適宜的接種比例。菌株生存有其適應(yīng)的適度空間,兩菌株混合培養(yǎng)時為奪取生存空間及營養(yǎng)物質(zhì)等資源而相互抑制[4],且同時接種也會導致兩菌株生長的競爭作用加劇[9],一定程度上影響了β-氯氰菊酯的降解。

    圖4 接種比例對菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的影響Fig.4 Effect of inoculation ratios on β-CY degradation by co-culture of the strains

    2.4 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的接種方式確定

    菌株接種方式對β-氯氰菊酯降解率的影響如圖5所示。可以得出,3種不同接種方式的β-氯氰菊酯降解率分別為88.3%、72.55%和83.91%,其中接種方式1的降解效果最佳。一般認為,微生物降解目標底物的過程主要發(fā)生在菌體細胞內(nèi)或胞外酶液環(huán)境,但無論哪種過程的目標底物都需與菌體細胞或降解酶發(fā)生直接接觸,即生物吸附作用[11],且生物吸附先行于生物降解。因此,共培養(yǎng)體系中先接種菌株K-1有利于其生長繁殖和菌絲吸附β-氯氰菊酯,并借助生物膜運輸將β-氯氰菊酯傳送給隨后接入的菌株B-1,使后者更大程度地接觸β-氯氰菊酯,并將其降解[12]。

    圖5 接種方式對菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的影響Fig.5 Effect of inoculation methods on β-CY degradation by co-culture of the strains

    2.5 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的動力學特征

    對適宜條件下菌株共培養(yǎng)降解不同含量β-氯氰菊酯的過程進行動力學分析,依據(jù)得到的動力學方程計算β-氯氰菊酯的降解速率常數(shù)(k)、半衰期(T1/2)和最大比生長速率(Vmax),結(jié)果見圖6和表2??梢钥闯觯?~1 d時,β-氯氰菊酯含量緩慢下降,降解速率較低,這是因為接種初期的菌株K-1尚處在生長適應(yīng)期的緣故;1~4 d時,β-氯氰菊酯降解速率明顯增大,這可能是由于菌株K-1的生長形成的菌絲體使加入的菌株B-1更好地接觸并降解β-氯氰菊酯;培養(yǎng)5 d時,不同含量(50、100、200 μg/mL)β-氯氰菊酯的降解率依次為94.0%、85.7%和65.1%。動力學方程的相關(guān)系數(shù)(R2)均大于0.95,表明其可較好地反映菌株共培養(yǎng)過程中β-氯氰菊酯含量與培養(yǎng)時間的關(guān)系。

    圖6 菌株共培養(yǎng)降解β-氯氰菊酯的動力學曲線Fig.6 Kinetic curves of β-CY degradation by co-culture of the strains

    β-氯氰菊酯/(μg·mL-1)動力學方程R2k/d-1T1/2/dVmax/[μg·(mL·d)-1]50Ct=59.04-59.04[0.94/(1+257.63e-2.6252t)]0.996 32.632.400.62100Ct=102.96-102.96[0.90/(1+65.43e-1.5323t)]0.998 51.533.450.34200Ct=210-210[0.60/(1+75.25e-1.7584t)]0.999 01.7612.290.26

    3 結(jié)論

    從長期噴施擬除蟲菊酯類農(nóng)藥的菜園土壤中篩選得到1株對β-氯氰菊酯具有較強降解能力的放線菌,根據(jù)生理生化特征及16S rDNA測序結(jié)果鑒定其為鏈霉菌(Streptomycessp. K-1)。適宜條件下,鏈霉菌K-1與地衣芽孢桿菌B-1共培養(yǎng)對β-氯氰菊酯的降解率較之單獨使用地衣芽孢桿菌B-1提高了11.3%,表明2菌株共培養(yǎng)更有利于β-氯氰菊酯的降解。研究結(jié)果可為擬除蟲菊酯類農(nóng)藥污染農(nóng)作物土壤的修復(fù)和減少農(nóng)產(chǎn)品中農(nóng)藥殘留途徑提供參考依據(jù)。

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