陶周善 周皖舒 江云云 吳興凈 張欣 楊民 謝加兵 徐祝軍
1. 皖南醫(yī)學院第一附屬醫(yī)院,弋磯山醫(yī)院創(chuàng)傷骨科,安徽 蕪湖 241000 2. 皖南醫(yī)學院第二附屬醫(yī)院老年病科,安徽 蕪湖 241000
人口老齡化是當今世界一個突出性的社會問題,作為與其相關的疾病越來越引起世界的關注,骨質(zhì)疏松就是其中最常見的一種。由于骨吸收的增加或骨形成的減少,導致骨質(zhì)的連續(xù)損失和骨骼微結構的退化,甚至是最小的創(chuàng)傷就會導致骨骼脆性骨折。隨著亞洲老齡人口的增加,該地區(qū)髖部骨折的發(fā)病率預計將從1990年到2050年增加到世界總量的1/4左右[1-2],因此,預防和治療骨質(zhì)疏松癥是一項嚴重的挑戰(zhàn)[3]。但目前對骨質(zhì)疏松癥的治療仍然不夠有效,研究骨質(zhì)疏松癥治療的組合治療的評估是必要的。骨形成蛋白(bone morphogenetic protein,BMP)具有強大的誘導成骨能力,它能誘導骨髓間充質(zhì)干細胞增殖并向成骨細胞方向分化,大量的研究已證實骨形成蛋白具有安全有效誘導骨形成的功效[4]。雷奈酸鍶(strontium ranelate,SR)是目前臨床上所有抗骨質(zhì)疏松藥物中唯一一種兼具促進成骨和抑制破骨的藥物,SR不僅可以通過促進成骨細胞增殖、分化來促進成骨,而且可以通過下調(diào)破骨細胞激活相關的一系列蛋白,從而起到抑制破骨的作用[5]。有研究表明SR通過內(nèi)源性BMP的上調(diào)表達促進成骨細胞分化[6]。受這些研究的啟發(fā),筆者想進一步探討是否通過外源性添加BMP來促進SR的作用。本研究目標是通過SR及BMP-2和成骨細胞的共培養(yǎng)來探討兩者聯(lián)合使用的可行性,為臨床上兩種藥物聯(lián)合使用奠定理論基礎。
取出生24 h的SD大乳鼠作為原代成骨細胞來源,由皖南醫(yī)學院弋磯山醫(yī)院中心實驗室提供。
DMEM 培養(yǎng)基(GIBCO公司),胎牛血清、胰蛋白酶(HyClone公司);I 型膠原酶(Sigma公司);噻唑藍(MTT)、二甲基亞砜(DMSO)、TritonX-100(Sigma公司);SR(法國 Servier 公司),BMP-2(Peprotech,美國)。
大鼠成骨細胞培養(yǎng)液使用DMEM,含有10%小牛血清,青霉素(100 U/mL),鏈霉素(100 U/mL),細胞培養(yǎng)在 37 ℃、含5%的二氧化碳培養(yǎng)箱中,待細胞生長覆蓋瓶底 80%時進行傳代。
1.4.1采用MTT法檢測成骨細胞增殖情況:實驗分為4組:SR組、BMP-2組、SR-BMP組及對照組。用0.25%胰蛋白酶消化單層細胞,用含有10%FBS的DMEM 培養(yǎng)液配成單個細胞懸液,以每孔1×104個細胞接種于96孔培養(yǎng)板中,共4列,培養(yǎng)24 h。在倒置顯微鏡下觀察,待大多數(shù)成骨細胞貼壁伸展后,棄去孔內(nèi)液體,用無血清的DMEM沖洗數(shù)次,加1% FBS的DMEM 200 μL。一列孔加入5 mmol/L的SR(SR組),一列孔加入0.1 mg/L的BMP-2(BMP-2組),一列孔同樣加入0.1 mg/L的BMP-2(SR-BMP組),一列孔為對照組(對照組),不加誘導液,3 d 換液1次,培養(yǎng)6 d換液后SR-BMP組的一列孔再次添加5 mmol/L的SR,繼續(xù)培養(yǎng)到12 d。加入10% MTT 溶液(5 mg/mL)繼續(xù)培養(yǎng)細胞 2 h,棄去細胞培養(yǎng)液,并加入DMSO(100 μL/孔)輕微震蕩,采用比色法通過酶標儀檢測A 490 值。
1.4.2茜素紅染色及堿性磷酸酶活性測定:待上述成骨細胞細胞培養(yǎng)12 d棄培養(yǎng)液,PBS漂洗2 遍,加入10% 福爾馬林固定10 min。棄固定液,0.1%茜素紅在37 ℃下染色5 min,流水沖洗,流水沖洗后換固定液,拍照記錄結果。堿性磷酸酶(alkaline phosphatase,ALP)活性采用 PNPP法測定,細胞培養(yǎng)12 d棄培養(yǎng)液,PBS漂洗2遍,1%Triton X-100反復凍融3次,細胞裂解物孵育在磷酸鹽底物中30 min,室溫37 ℃,然后加入1 mol/L的NaOH終止反應,405 nm下測定吸光度值。根據(jù)蛋白質(zhì)標準化的Sigma 校正曲線,計算酶活性。
1.4.3成骨細胞骨鈣素(osteocalcin,OCN)及Runx2表達檢測:按上述方案培養(yǎng)到12 d,提取細胞總蛋白,加熱變性后,于-20 ℃保存。取蛋白30 μL,進行 SDS-PAGE 凝膠電泳,將分離后的蛋白質(zhì)電轉(zhuǎn)移到PVDF膜上,用封閉液封閉濾膜 4 h,依次結合相應濃度的抗OCN抗體,抗Runx2抗體和抗GAPDH抗體(1∶1000),于4 ℃孵育過夜,洗膜后,加入辣根過氧化物酶標記的山羊抗兔/兔抗鼠(1∶2000),孵育1 h。用化學發(fā)光法曝光膠片,沖洗顯色,檢測相應蛋白條帶。用凝膠成像分析系統(tǒng)掃描分析蛋白條帶。
采用SPSS 19.0進行統(tǒng)計學分析,多組間細胞蛋白含量、ALP 定量及茜素紅定量結果采用單因素方差分析(ANOVA),組間比較采用LSD-t法;P<0.05 為差異有統(tǒng)計學意義。
經(jīng)過BMP-2、SR以及BMP-2聯(lián)合SR的處理,各組細胞茜素紅染色及堿性磷酸酶染色的結果如圖1A、1B所示,定量結果如圖1C、1D所示,結果表明BMP-2、SR以及BMP-2聯(lián)合SR處理的成骨細胞的礦化能力及活性明顯增加,相對于對照組,實驗組的成骨細胞礦化能力及ALP活性明顯增加,和對照組相比,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),且以BMP-2聯(lián)合SR處理細胞鈣化能力最強及ALP活性最高,這表明BMP-2聯(lián)合SR對成骨細胞礦化能力及活性影響明顯優(yōu)于單獨使用的效果。
經(jīng)過BMP-2、SR以及BMP-2聯(lián)合SR的處理,MTT檢測的結果如圖1E所示,相對于對照組,實驗組的成骨細胞數(shù)目明顯增加,和對照組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),且以BMP-2聯(lián)合SR處理細胞數(shù)目最多,這表明BMP-2聯(lián)合SR對成骨細胞增殖影響明顯優(yōu)于單獨使用的效果。
經(jīng)過BMP-2、SR以及BMP-2聯(lián)合SR的處理,各組細胞OCN及Runx2蛋白表達的結果如圖1F所示,定量結果如圖1G、1H所示,結果表明BMP-2、SR以及BMP-2聯(lián)合SR處理的成骨細胞的OCN及Runx2蛋白表達明顯增加,相對于對照組,實驗組的成骨細胞OCN及Runx2蛋白表達明顯增加,和對照組比較,差異有統(tǒng)計學意義(P<0.05),且以BMP-2聯(lián)合SR處理細胞OCN及Runx2蛋白表達量最多,這表明BMP-2聯(lián)合SR對成骨細胞OCN及Runx2蛋白表達影響明顯優(yōu)于單獨使用的效果。
圖1 A:各組大鼠成骨細胞ALP染色結果;B:各組大鼠成骨細胞茜素紅染色結果;C:各組大鼠成骨細胞ALP活性定量結果;D:各組大鼠成骨細胞茜素紅染色定量結果;E:各組大鼠成骨細胞MTT定量結果;F:各組大鼠成骨細胞蛋白電泳結果;G:各組大鼠成骨細胞Runx2蛋白表達定量結果;H:各組大鼠成骨細胞OCN蛋白表達定量結果注:與對照組比較,*P<0.05;與SR組比較,#P<0.05;與BMP組比較,&P<0.05(CON:對照組,SR:SR組,BMP:BMP-2組,BMP-SR:SR-BMP組;×40)Fig.1 A: ALP staining results of rat osteoblasts in each group; B: Alizarin red staining results of rat osteoblasts in each group; C: ALP activity quantitative results of rat osteoblasts in each group; D: Alizarin red staining quantitative results of rat osteoblasts in each group; E: MTT quantitative results of rat osteoblasts in each group; F: Protein electrophoresis results of rat osteoblasts in each group; G: Runx2 protein expression quantitative results of rat osteoblasts in each group; H: OCN protein expression quantitative results of rat osteoblasts in each group.Note: Compared with the control group, *P<0.05; compared with the SR group, #P<0.05; compared with the BMP group, &P<0.05 (CON: control group, SR: SR group, BMP: BMP-2 group, BMP-SR: SR-BMP group; ×40)
本研究通過SR聯(lián)合BMP-2使用來干預大鼠成骨細胞,觀察對成骨細胞增殖、鈣化能力及細胞活性和OCN及Runx2蛋白表達情況來研究聯(lián)合使用的可行性,通過藥物和成骨細胞共培養(yǎng)12 d,各組大鼠成骨細胞增殖情況、礦化能力及活性以OCN及Runx2蛋白表達情況被檢測;結果表明相對SR及BMP-2單獨使用的效果,聯(lián)合使用的效果更佳,能極大提高成骨細胞增殖能力,增加成骨細胞的功能如礦化,同時明顯增加OCN及Runx2蛋白的表達,這些結果表明SR聯(lián)合BMP-2來干預大鼠成骨細胞有一定潛力,為臨床上聯(lián)合使用治療骨質(zhì)疏松癥提供細胞學基礎。
骨骼在修復過程表現(xiàn)出一定的再生能力,以應對在骨骼發(fā)育或整個成年人連續(xù)骨骼重塑過程中發(fā)生損傷。骨再生包括一系列良好骨組織誘導和傳導的生物過程,涉及許多細胞類型和細胞內(nèi)和細胞外分子信號通路,通過確定的時間和空間序列,努力增強骨骼修復和恢復骨骼功能[7]。骨形成取決于不同方面的共同影響,如:特異性細胞類型間充質(zhì)干細胞和破骨細胞;骨基質(zhì)(羥磷灰石、鈣、細胞外基質(zhì)分子等);可溶性分子(細胞因子、生長因子、激素、離子和維生素等)的表達和各種外界機械刺激[8-9]。信號分子可以分為3類:促炎細胞因子、TGF-β超家族和其他生長因子和血管生成因子[10-11]。白細胞介素-1(interleukin-1,IL-1)、白細胞介素-6(IL-6)和腫瘤壞死因子-α(tumor necrosis factor-α,TNF-α)在啟動修復級聯(lián)中起著至關重要的作用。細胞因子也調(diào)節(jié)軟骨內(nèi)骨形成和重塑。TNF-α促進骨髓間充質(zhì)干細胞的募集,在軟骨內(nèi)骨化時引起肥厚軟骨細胞凋亡,提供破骨細胞功能[12]。轉(zhuǎn)化生長因子(transforming growth factor,TGF)超家族包括BMP、GDF,TGF促進骨折愈合期間各個階段的內(nèi)膜和軟骨內(nèi)骨骨化。BMP是骨形成和愈合中最重要的生長因子[12],BMP在骨髓間充質(zhì)細胞、成骨細胞和軟骨細胞的修復中產(chǎn)生,以觸發(fā)一系列事件,這些事件支持骨和軟骨的發(fā)育[13]。骨質(zhì)疏松癥出現(xiàn)骨小梁的微型骨折,骨質(zhì)疏松癥治療過程就是骨形成及骨折愈合的過程,BMP在此過程中發(fā)揮重要作用,局部添加BMP明顯可以增加去卵巢大鼠骨密度,增加骨強度。
近年來一種具有降低骨吸收和增加骨形成雙重作用機制的抗骨質(zhì)疏松藥SR被開發(fā)出來,它可治療絕經(jīng)后骨質(zhì)疏松癥,使椎體和髖部骨折的危險性降低,使骨密度和強度得到增強,使其他藥物單向作用的弊端得到克服[14]。許多動物實驗表明,SR可加快新骨的形成,同時減慢舊骨的重吸收。SR不僅可以抑制去勢大鼠骨質(zhì)的下降,還可以使正常動物的骨質(zhì)得到增加,從而使骨質(zhì)的耐受能力增加[15]。同時它還可以在抑制破骨和刺激成骨的前提下增加骨質(zhì),加快健康小鼠骨形成,提高脊椎骨的骨質(zhì)含量[16]。由于刺激骨形成和抑制骨吸收的顯著作用,鍶(Sr2+)已被并入生物材料/支架中,以改善骨再生應用的生物活性[17-18]。據(jù)報道,Sr2+可能通過鈣敏感受體依賴機制或調(diào)節(jié)Wnt/b-連環(huán)蛋白,促進成骨細胞分化,包括內(nèi)源性BMP-2的上調(diào)和MAPK通路[6,19]。本研究表明外源性添加BMP-2可以明顯增加SR的功能,對成骨細胞的增殖分化和功能都有明顯的促進效果。
總的來說,雖然筆者沒有實驗不同藥物劑量對實驗結果的影響,但本實驗目標已經(jīng)達到,合適劑量的BMP-2和SR聯(lián)合使用對成骨細胞增殖、分化及功能有疊加作用,明顯優(yōu)于單獨使用的效果。