宋 珺, 韓 菁, 孫 越, 施偉民
(上海交通大學(xué)附屬第一人民醫(yī)院皮膚科,上?!?00080)
侵襲性肺曲霉病(invasive pulmonary aspergillosis, IPA)是煙曲霉菌(Aspergillusfumigatus, AF)侵入免疫受損宿主所導(dǎo)致的一種高致死率的嚴(yán)重感染性疾病[1-3]。該病的病理表現(xiàn)為急性廣泛出血性壞死性肺炎、膿腫或由上皮細(xì)胞和巨噬細(xì)胞組成的肉芽腫,還表現(xiàn)為曲霉菌在肺組織內(nèi)增殖并侵入血管,導(dǎo)致壞死性血管炎、血栓和菌栓性出血,并可經(jīng)血行播散,甚至全身多器官受累,預(yù)后極差[1-3]。
煙曲霉是一種通過空氣傳播的腐生條件致病真菌,廣泛存在于自然界,其孢子直徑很小,可被動吸入呼吸道進(jìn)入人體從而引起肺部感染,引起炎癥因子釋放激發(fā)免疫反應(yīng),進(jìn)而引發(fā)IPA[4-7]。呼吸道黏膜通常是由氣道上皮細(xì)胞、間質(zhì)成纖維細(xì)胞和肺微血管內(nèi)皮細(xì)胞(pulmonary microvascular endothelial cells, PMVECs)組成一個功能單位,參與疾病的病理生理過程。PMVECs是肺臟內(nèi)含量最為豐富的細(xì)胞之一,其通過細(xì)胞間的相互作用以及與細(xì)胞外基質(zhì)連接構(gòu)成肺微循環(huán)交換血管的最內(nèi)層,具備代謝活躍和功能復(fù)雜的特點[8-10]。PMVECs參與肺內(nèi)多種生理功能的調(diào)節(jié),如微血管緊張性的維持、宿主自身防御反應(yīng)以及血管生成等,其功能和結(jié)構(gòu)的完整性對于維持正常肺生理功能至關(guān)重要[8-10]。在肺部炎癥反應(yīng)過程中,PMVECs是病毒、細(xì)菌、真菌、炎癥因子等首先攻擊的效應(yīng)細(xì)胞之一,其維持的結(jié)構(gòu)和功能屏障被破壞以及由此造成的細(xì)胞通透性增加為肺部多種疾病的病理基礎(chǔ)之一[8-10]。
目前,尚未有研究報導(dǎo)煙曲霉對PMVECs通透性的影響。本研究考察了煙曲霉對PMVECs通透性的影響,并對其可能機(jī)制進(jìn)行了探討。
人PMVECs(HPMVECs)購于美國加利福尼亞州圣地亞哥ScienCell研究實驗室;煙曲霉菌株(AF 293)購于中國普通微生物菌種保藏管理中心;吐溫80購自生工生物工程(上海)股份有限公司;胎牛血清、DMEM、胰蛋白酶等細(xì)胞培養(yǎng)試劑購自賽默飛世爾公司;激光共聚焦掃描顯微鏡(Leica TCS SP5)購自Leica公司;跨膜電阻儀購自Millipore公司。
取AF293煙曲霉菌菌株接種于馬鈴薯葡萄糖瓊脂培養(yǎng)基上,37℃培養(yǎng)箱培養(yǎng)3d,0.1%吐溫80的生理鹽水10mL沖洗培養(yǎng)基表面,收集煙曲霉菌孢子懸液,8層無菌紗布(高壓滅菌)過濾,含0.1%吐溫80的PBS液清洗,后轉(zhuǎn)入離心管中,1000r/min,離心10min,棄去上清液,煙曲霉孢子重懸于含0.1%吐溫80的PBS液中,計數(shù)孢子數(shù)量,再將煙曲霉孢子懸液離心(1000r/min)10min,孢子重懸于PBS中,調(diào)整孢子濃度為5×107cfu/mL,備用。
HPMVECs的培養(yǎng)參照以前的研究[11],培養(yǎng)液為專用內(nèi)皮細(xì)胞培養(yǎng)液。HPMVECs達(dá)90%培養(yǎng)皿底壁后,棄舊培養(yǎng)液,適量PBS清洗,加入適度預(yù)熱的胰酶,置于37℃培養(yǎng)箱消化,加入培養(yǎng)液終止消化,移液器輕輕吹打,待細(xì)胞全部吹打下來后,收集HPMVECs懸液,于15mL離心管中離心5min(離心半徑30cm,1000r/min),培養(yǎng)液調(diào)整細(xì)胞密度后置于孵箱(37℃、5% CO2飽和濕度)中進(jìn)行傳代培養(yǎng)。于傳代培養(yǎng)第5代(細(xì)胞達(dá)90%底壁)后,HPMVECs被給予煙曲霉菌孢子處理。
HPMVECs被胰酶消化后,培養(yǎng)液重懸,取細(xì)胞懸液滴到的細(xì)胞爬片(鋪于培養(yǎng)孔板中)上,30min后,添加培養(yǎng)液,置于孵箱(37℃、5% CO2飽和濕度)中培養(yǎng)6h,然后用煙曲霉菌孢子刺激HPMVECs,PBS清洗,多聚甲醛(4%)于室溫固定1.5h,PBS清洗,與羅丹明-鬼筆環(huán)肽孵育(室溫)30min,取出細(xì)胞爬片,PBS漂洗,用4′,6-二脒基-2-苯基吲哚染色,PBS漂洗,后封片劑封片(有細(xì)胞一面對著載玻片),用激光共聚焦掃描顯微鏡觀察并拍照。使用Image J測量熒光強(qiáng)度。
細(xì)胞跨膜電阻值(transepithelial electrical resist-ance, TER)反映溶質(zhì)離子電流的強(qiáng)弱,與細(xì)胞通透性呈反比,可用于反映細(xì)胞通透性。將HPMVECs接種于基質(zhì)膠包被的Transwell小室,上、下室分別加入250、750μL培養(yǎng)液,HPMVECs達(dá)單層融合后,設(shè)置空白對照組(Con)、AF處理組(AF,MOI: 1∶8)、TNF-α(20ng/mL)處理組(TNF-α)、AF+SB203580(20μmol/L)處理組(AF+SB203580)、AF+Y27632(20μmol/L)處理組(AF+Y27632)以及AF+LY317615(10μmol/L)處理組(AF+LY317615),其中TNF-α組為陽性對照組。將跨膜電阻測定儀調(diào)至歐姆檔,2個電極分別于置于Transwell小室表面和下室固定位置,于4、8、16、24h測量各組電阻,并測未接種HPMVECs的小室的電阻,每室重復(fù)3次,計算公式為TER=(測得電阻值-空白電阻值)×Transwell小室的底面積,單位為: Ωcm2。
羅丹明-鬼筆環(huán)肽與胞質(zhì)內(nèi)肌動蛋白(F-actin)結(jié)合而發(fā)紅光,DAPI與細(xì)胞核結(jié)合發(fā)藍(lán)光。激光共聚焦掃描顯微鏡顯示,HPMVECs與煙曲霉共培養(yǎng)至8h,與對照組相比較,煙曲霉組HPMVECs數(shù)量減少,細(xì)胞F-actin明顯減少,應(yīng)力纖維排列紊亂或部分消失,細(xì)胞間的連接縫隙增大或中斷,見圖1。細(xì)胞F-actin反映細(xì)胞骨架的改變,進(jìn)而反映細(xì)胞的通透性,對F-actin染色熒光強(qiáng)度的統(tǒng)計學(xué)分析顯示,AF處理后F-actin染色的熒光強(qiáng)度顯著下降(P<0.01),表明AF處理后引起HPMVECs的通透性增加,見圖2。
圖1 激光共聚焦掃描顯微鏡檢測HPMVECsFig.1 Detection of human pulmonary microvascular endothelial cells with confocal laser scanning microscopy
圖2 煙曲霉處理對HPMVECs F-actin表達(dá)的影響Fig.2 Effect of Aspergillus fumigatus on F-actin in human pulmonary microvascular endothelial cells與對照組比較,#P<0.01
在4h時,空白對照組、AF組、TNF-α陽性對照組、AF+SB203580組、AF+Y27632組以及AF+LY317615組各組間跨膜電阻值差異無統(tǒng)計學(xué)意義(P>0.05);8h時,與空白對照組比較,AF組和TNF-α組的跨膜電阻值均出現(xiàn)顯著下降(P<0.01),與AF組比較,AF+SB203580組、AF+Y27632組以及AF+LY317615組的跨膜電阻值均顯著上升(P<0.05),上述改變一直持續(xù)到24h,見圖3。
圖3 HPMVECs跨膜電阻的檢測Fig.3 Detection of transepithelial electrical resistance in human pulmonary microvascular endothelial cells與對照組比較,#P<0.01,;與煙曲霉組比較,*P<0.05;Con: 對照,SB: SB203580,Y: Y27632,LY: LY317615,AF: 煙曲霉,TER: 內(nèi)皮細(xì)胞細(xì)胞跨膜電阻;A、B、C、D分別為試驗后4、8、16、24h
細(xì)胞骨架在維持細(xì)胞的形態(tài)和結(jié)構(gòu)的完整性方面起著重要作用,負(fù)責(zé)執(zhí)行和協(xié)助完成多種細(xì)胞功能。微絲是細(xì)胞骨架的組成成分,微絲主要由F-actin等組成,具可收縮性的特點。當(dāng)細(xì)胞受到異常刺激時,F(xiàn)-actin會發(fā)生重組和再分布,細(xì)胞中央出現(xiàn)大量呈束狀密集排列的應(yīng)力纖維,導(dǎo)致細(xì)胞中心張力增高,加速細(xì)胞收縮,引起凋亡壞死,最終導(dǎo)致細(xì)胞通透性增高。TER是評價緊密連接蛋白完整性的指標(biāo)之一,常用于反映細(xì)胞通透性。一般而言,微血管內(nèi)皮細(xì)胞的通透性與細(xì)胞跨膜電阻的變化成反比,即細(xì)胞跨膜電阻升高則細(xì)胞通透性降低,細(xì)胞跨膜電阻降低則細(xì)胞通透性升高。因此,TER的測量可反映微血管內(nèi)皮細(xì)胞的通透性。本研究觀察到,煙曲霉處理后PMVECs F-actin染色的熒光強(qiáng)度顯著下降(P<0.01),煙曲霉處理組也出現(xiàn)細(xì)胞跨膜電阻值的顯著下降(P<0.01)。以上結(jié)果表明,煙曲霉感染PMVECs導(dǎo)致其通透性升高。
本研究進(jìn)一步探討了煙曲霉致PMVECs通透性升高的機(jī)制。與單獨煙曲霉處理組比較,SB203580(20μmol/L, p38 MAPK抑制劑)干預(yù)組、Y27632(20μmol/L, ROCK抑制劑)干預(yù)組以及LY317615(10μmol/L,蛋白激酶C抑制劑)干預(yù)組的跨膜電阻值均顯著上升(P<0.05)。有絲分裂原激活的蛋白激酶(mitogen activated protein kinases, MAPK)信號通路是真核細(xì)胞內(nèi)最普遍的信號調(diào)節(jié)機(jī)制之一。MAPK信號通路參與調(diào)節(jié)細(xì)胞骨架的聚合及穩(wěn)定性,并且影響相關(guān)的細(xì)胞活動,如細(xì)胞分裂、細(xì)胞黏附、遷移等。迄今為止,在哺乳動物內(nèi)已發(fā)現(xiàn)多種MAPK家族亞群,如細(xì)胞外信號調(diào)節(jié)蛋白激酶(extracellular signal-regulated protein kinase, ERK)通路、c-jun氨基末端激酶(c-jun N-terminal kinase, JNK)通路,p38 MAPK通路等。有研究[12]表明,p38 MAPK通路激活后引起微絲重排及相關(guān)細(xì)胞形態(tài)的改變,p38 MAPK激酶還可通過影響微絲的完整性及穩(wěn)定性調(diào)節(jié)細(xì)胞的凋亡或再分化等[13]。本研究結(jié)果表明,p38 MAPK信號通路可能參與煙曲霉致PMVECs通透性的改變,也提示p38 MAPK有可能成為煙曲霉感染的潛在治療靶點之一。ROCK屬于絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶家族成員,是小G蛋白家族成員Rho A的下游靶效應(yīng)分子。Rho A/ROCK信號通路是體內(nèi)普遍存在的一條信號通路,此通路可能通過一個復(fù)雜的磷酸化/脫磷酸化級聯(lián)反應(yīng)調(diào)節(jié)微絲骨架的聚合,控制微血管內(nèi)皮細(xì)胞的諸多生物學(xué)行為,是內(nèi)皮功能調(diào)節(jié)的重要信號分子[14-15]。本研究結(jié)果也表明,ROCK信號通路可能參與煙曲霉致PMVECs通透性的改變,據(jù)此推測,ROCK信號通路可能是煙曲霉感染介導(dǎo)的PMVECs功能損傷的重要調(diào)控靶位之一。本研究還表明,PKC信號通路可能參與煙曲霉致PMVECs通透性的改變。蛋白激酶C(PKC)也屬于絲氨酸/蘇氨酸蛋白激酶家族,是細(xì)胞內(nèi)的重要信號轉(zhuǎn)導(dǎo)分子,它的激活是導(dǎo)致內(nèi)皮細(xì)胞功能紊亂的關(guān)鍵因素之一[16-17]。關(guān)于血管內(nèi)皮屏障功能障礙的研究顯示,肌球蛋白輕鏈(myosin light chain, MLC)磷酸化可引起細(xì)胞骨架重組。肌球蛋白輕鏈激酶(myosin light chain kinase, MLCK)和Rho激酶對MLC磷酸化水平的調(diào)節(jié)作用在細(xì)胞骨架重組起重要作用,而PKC也是MLCK的上游激活分子之一。據(jù)此推測,PKC通路通過維持MLC磷酸化水平,從而促發(fā)肌動-肌球蛋白絲收縮,進(jìn)而引起內(nèi)皮細(xì)胞骨架結(jié)構(gòu)和收縮狀態(tài)的改變,最終導(dǎo)致內(nèi)皮細(xì)胞通透性的改變。因此,PKC通路可能是介導(dǎo)煙曲霉改變HPMVECs通透性的信號途徑之一。
綜上所述,本研究結(jié)果顯示,煙曲霉處理致PMVECs通透性增加,其機(jī)制可能涉及p38 MAPK、ROCK激酶以及蛋白激酶C通路,有必要開展進(jìn)一步的深入研究以揭示更加精確的機(jī)制。