陳薊 劉弼 熊怡勝 黃雪晴
(暨南大學(xué)第二臨床醫(yī)學(xué)院深圳市人民醫(yī)院骨科,廣東 深圳 518020)
在骨關(guān)節(jié)炎(osteoarthritis,OA)研究中,已有越來越多的miRNA被發(fā)現(xiàn)與關(guān)節(jié)炎的發(fā)生有千絲萬縷的聯(lián)系,Microrna-34a(miR-34a)是其中之一[1]。已有研究[2]表明,miR-34a通過調(diào)節(jié)細(xì)胞周期從G1期過渡到S期,有抗增殖作用,miR-34a同樣能由p53誘導(dǎo),從而促進(jìn)細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期阻滯。Sirt1基因亦是已被證實(shí)在OA發(fā)生發(fā)展過程中起重要作用[3];然而miR-34a調(diào)控Sirt1在骨關(guān)節(jié)炎、軟骨細(xì)胞中的研究報(bào)道較少見。本實(shí)驗(yàn)研究在IL-1β誘導(dǎo)的軟骨細(xì)胞模型中,miR-34a對Sirt1的作用及其對Bcl-2的表達(dá)影響。
DMEM高糖培養(yǎng)基、胎牛血清(Hyclone);DAPI染色試劑盒(Sigma);Lipofectamine 2000、RT-PCR試劑盒(Invitrogen);miR-34a mimic(RiboBio);Sirt1抗體、GAPDH抗體(Santa Cruz);Bcl-2抗體(Bioss);低溫高速離心機(jī)(Eppendorf);DNA擴(kuò)增儀(Biometra)。
1.2.1 C57BL/6J小鼠膝關(guān)節(jié)軟骨細(xì)胞的分離、純化、培養(yǎng)和刺激處理:無菌操作下取小鼠雙膝關(guān)節(jié),磷酸緩沖鹽溶液(phosphate buffer saline,PBS)沖洗,剪取全部膝關(guān)節(jié)軟骨。在顯微鏡下去除關(guān)節(jié)囊周圍組織,并將軟骨組織與深層組織仔細(xì)分離。剪碎軟骨組織后用0.2%II型膠原酶消化4~6 h,離心去上清,培養(yǎng)基洗滌后再用含15%胎牛血清培養(yǎng)液分散培養(yǎng)。隨機(jī)分為兩組,正常對照組與IL-1β組,IL-1β終濃度為100 ng/ml,繼續(xù)培養(yǎng),在加入IL-1β后24 h進(jìn)行觀察和檢測。
1.2.2 DAPI染色與流式細(xì)胞術(shù)觀察軟骨細(xì)胞凋亡:取第2代軟骨細(xì)胞,調(diào)整密度為2×105/ml,接種于6孔板進(jìn)行爬片。IL-1β組和對照組分別干預(yù),24 h后按照DAPI染色試劑盒及AnnexinV-FITC/PI凋亡試劑盒說明書操作,觀察細(xì)胞凋亡情況。
1.2.3 熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)驗(yàn)證:分別構(gòu)建包含miR-34a種子序列結(jié)合位點(diǎn)野生型質(zhì)粒、包含種子序列突變位點(diǎn)的突變型質(zhì)粒(pmir-Glo-SIRT1-3’UTR WT和Mut),與miR-34a的mimics共轉(zhuǎn)染軟骨細(xì)胞后,測定螢光素酶活性,觀察miR-34a對野生型以及突變型質(zhì)粒共轉(zhuǎn)染時(shí)的熒光素酶活力的影響。
1.2.4 RT-PCR檢測miR-34a和Sirt1 mRNA表達(dá):根據(jù)試劑盒的說明提取軟骨細(xì)胞總RNA,包括miRNA。標(biāo)準(zhǔn)方案RT-PCR檢測軟骨細(xì)胞中miR-34a和Sirt1 mRNA表達(dá)。
1.2.5 Western Blot檢測Sirt1、Bcl-2蛋白表達(dá):根據(jù)IL-1β濃度(0 ng/ml、10 ng/ml、50 ng/ml、100 ng/ml)分為a、b、c、d組,細(xì)胞經(jīng)過處理后,提取總蛋白,并測定蛋白濃度,根據(jù)Western Blot實(shí)驗(yàn)步驟檢測軟骨細(xì)胞中Sirt1、Bcl-2的蛋白表達(dá)。
采用SPSS軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析,數(shù)據(jù)以均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差表示,組間比較采用單因素方差分析,以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
細(xì)胞接種于6孔板進(jìn)行細(xì)胞爬片,然后分為A組(對照組)、B組(實(shí)驗(yàn)組),用DAPI染色,于熒光顯微鏡下觀察并照相(圖1)。同時(shí)用AnnexinV-FITC/PI凋亡試劑盒檢測細(xì)胞凋亡(圖2)。
通過搜索miRDB以及TargetScan的序列分析,
圖1 DAPI染色檢測細(xì)胞凋亡(100×)
在體外培養(yǎng)軟骨細(xì)胞,給予100 ng/ml IL-1β刺激,然后RT-PCR檢測miR-34a(圖4A)和Sirt1 mRNA(圖4B)表達(dá),與正常細(xì)胞對照組比較,IL-1β組miR-34a表達(dá)升高,Sirt1表達(dá)降低(P<0.05)。這說明過表達(dá)miR-34a,導(dǎo)致Sirt1表達(dá)降低(圖4)。
發(fā)現(xiàn)Sirt1 3’UTR的746~752堿基可能是miR-34a的結(jié)合位點(diǎn)。同時(shí)將miR-34a的mimics與野生型Sirt1-Luc熒光素酶報(bào)告基因載體共轉(zhuǎn)染軟骨細(xì)胞后,發(fā)現(xiàn)與對照組比較,細(xì)胞熒光素酶活性顯著下降(P<0.05),說明miR-34a能靶向作用Sirt1,并抑制螢光素酶的表達(dá)(圖3)。
在體外培養(yǎng)軟骨細(xì)胞,根據(jù)IL-1β濃度(0 ng/ml、10 ng/ml、50ng/ml、100ng/ml)分為a、b、c、d組,與a組(對照組)比較,b、c、d組Sirt1、Bcl-2蛋白表達(dá)降低(P<0.05)。這說明低表達(dá)Sirt1,Bcl-2表達(dá)同時(shí)亦降低(圖5)。
圖2 流式細(xì)胞術(shù)檢測細(xì)胞凋亡
圖3 雙熒光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)
圖4 RT-PCR檢測軟骨細(xì)胞中miR-34a和Sirt1 mRNA表達(dá)
骨關(guān)節(jié)炎是一種退行性關(guān)節(jié)疾病,由多種因素引起,如衰老、肥胖、創(chuàng)傷等。許多文獻(xiàn)[4,5]將OA的發(fā)生發(fā)展機(jī)制歸因于軟骨細(xì)胞反應(yīng)性調(diào)節(jié)紊亂。這種紊亂造成合成代謝與分解代謝之間的失衡,具體表現(xiàn)為基質(zhì)降解酶類的產(chǎn)生和軟骨細(xì)胞的凋亡。
Sirt1是Sirtuin家族的一員,作為組蛋白脫乙?;敢雅c年齡相關(guān)的疾病聯(lián)系在一起,如II型糖尿病、老年癡呆癥、骨質(zhì)疏松癥等[6,7]。越來越多的證據(jù)表明,Sirt1在OA發(fā)生發(fā)展中起重要作用。有學(xué)者[3]研究發(fā)現(xiàn),在軟骨細(xì)胞中,抑制Sirt1可以降低COL10A1和ADAMTS-5的表達(dá),從而促進(jìn)OA進(jìn)程。同樣,抑制Sirt1可以通過線粒體-相關(guān)信號(hào)促進(jìn)細(xì)胞凋亡[8]。
在過去的幾年中,MicroRNA因其在軟骨細(xì)胞中的重要作用而越來越受到人們的關(guān)注。據(jù)報(bào)道[9],在軟骨細(xì)胞中,調(diào)節(jié)miR-145靶向Smad3,可造成其下游靶基因的表達(dá)改變,從而引起IL-1β誘導(dǎo)細(xì)胞外基質(zhì)降解。Jin等[10]發(fā)現(xiàn),miR-146a通過調(diào)節(jié)VEGF和TGF-β的信號(hào)通路參與人軟骨細(xì)胞凋亡與OA的進(jìn)程。
MicroRNA-34家族包括miR-34a、miR-34b、miR-34c。已有研究表明,miR-34a通過調(diào)節(jié)細(xì)胞周期從G1過渡到S期具有抗增殖作用,miR-34a同樣能由p53誘導(dǎo),從而促進(jìn)細(xì)胞凋亡和細(xì)胞周期阻滯。miR-34a可以調(diào)控IL-1β誘導(dǎo)的COL2A1和iNOS表達(dá),當(dāng)沉默miR-34a時(shí),IL-1β誘導(dǎo)的鼠軟骨細(xì)胞凋亡明顯減少,同時(shí)可以阻止IL-1β誘導(dǎo)的II型膠原蛋白降解[2,11]。
Sirt1在OA發(fā)生發(fā)展過程中起重要作用,同時(shí)miR-34a亦參與調(diào)節(jié)OA過程,那么miR-34a與Sirt1之間如何作用來調(diào)控OA的發(fā)生發(fā)展及其具體機(jī)制,值得進(jìn)一步深入研究。通過生物信息學(xué)軟件預(yù)測及文獻(xiàn)搜索發(fā)現(xiàn),Sirt1作為miR-34a的靶基因,在腫瘤細(xì)胞、肝臟、胰腺等細(xì)胞及組織器官中起重要作用[12,13]。然而miR-34a調(diào)控Sirt1在OA、軟骨細(xì)胞中的研究報(bào)道較少見。因此,在體外培養(yǎng)軟骨細(xì)胞,給予IL-1β刺激,發(fā)現(xiàn)miR-34a表達(dá)升高,Sirt1表達(dá)隨之降低。同時(shí)采用熒光素酶報(bào)告基因檢測驗(yàn)證miR-34a的靶基因Sirt1,發(fā)現(xiàn)將miR-34a的mimics與野生型Sirt1-Luc熒光素酶報(bào)告基因載體共轉(zhuǎn)染軟骨細(xì)胞后,細(xì)胞熒光素酶活性顯著下降。表明miR-34a能靶向作用Sirt1,并抑制螢光素酶的表達(dá)。這說明過表達(dá)miR-34a降低Sirt1,可能是誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞凋亡加速OA進(jìn)程的重要原因。
圖5 Western Blot實(shí)驗(yàn)檢測軟骨細(xì)胞中Sirt1、Bcl-2蛋白表達(dá)
Bcl-2與細(xì)胞凋亡密切相關(guān),其具有抑制細(xì)胞凋亡的作用。有學(xué)者[8]研究發(fā)現(xiàn),激活Sirt1可以調(diào)控Bcl-2抑制軟骨細(xì)胞凋亡。本研究中,隨著IL-1β濃度逐漸增加,Sirt1、Bcl-2表達(dá)降低。說明低表達(dá)Sirt1,可以降低Bcl-2,從而誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞凋亡。
綜上所述,在IL-1β誘導(dǎo)的軟骨細(xì)胞凋亡模型中,miR-34a的表達(dá)增加,其可以靶向Sirt1進(jìn)而降低Bcl-2,誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞凋亡。既然,miR-34a靶向Sirt1誘導(dǎo)軟骨細(xì)胞凋亡,那么沉默miR-34a,Sirt1表達(dá)增加,從而可以抑制軟骨細(xì)胞凋亡。這表明沉默miR-34a可能成為治療OA的新方法,這為研究防止OA進(jìn)程提供了新的靶點(diǎn)。然而,miR-34a靶向Sirt1調(diào)控軟骨細(xì)胞凋亡,是否還有其他通路或者分子受其調(diào)節(jié),目前尚不明確。有學(xué)者[14]研究發(fā)現(xiàn),SIRT1可通過p53、NF-κB、Ku70和FOXOs等通路影響軟骨細(xì)胞凋亡,同時(shí)iNOS、COX-2以及MMP-13的表達(dá)亦發(fā)生改變[15]。是否miR-34a靶向Sirt1亦能參與這些調(diào)節(jié)過程,需要進(jìn)一步深入研究。
[1]Iliopoulos D,Malizos KN,Oikonomou P,et al.Integrative microRNA and proteomic approaches identify novel osteoarthritis genes and their collaborative metabolic and inflammatory networks.PLoS One,2008,3(11):3740-3750.
[2]Yu C,Chen WP,Wang XH.MicroRNA in osteoarthritis.J Int Med Res,2011,39(1):1-9.
[3] Fujita N,Matsushita T,Ishida K,et al.Potential involvement of SIRT1 in the pathogenesis of osteoarthritis through the modu-lation of chondrocyte gene expressions.J Orthop Res,2011,29(4):511-515.
[4]Goldring MB,Goldring SR.Osteoarthritis.J Cell Physiol,2007,213(3):626-634.
[5]Clouet J,Vinatier C,Merceron C,et al.From osteoarthritis treatments to future regenerative therapies for cartilage.Drug Discov Today,2009,14(19-20):913-925.
[6] Michan S,Sinclair D.Sirtuins in mammals:insights into their biological function.Biochem J,2007,404(1):1-13.
[7]Zeng L,Chen R,Liang F,et al.Silent information regulator,Sirtuin 1,and age-related diseases.Geriatr Gerontol Int,2009,9(1):7-15.
[8]Takayama K,Ishida K,Matsushita T,et al.SIRT1 regulation of apoptosis of human chondrocytes.Arthritis Rheum,2009,60(9):2731-2740.
[9]Yang B,Kang X,Xing Y,et al.Effect of microRNA-145 on IL-1β-induced cartilage degradation in human chondrocytes.FEBS Lett,2014,588(14):2344-2352.
[10]Jin L,Zhao J,Jing W,et al.Role of miR-146a in human chondrocyte apoptosis in response to mechanical pressure injury in vitro.Int J Mol Med,2014,34(2):451-463.
[11]Abouheif MM,Nakasa T,Shibuya H,et al.Silencing microRNA-34a inhibits chondrocyte apoptosis in a rat osteoarthritis model in vitro.Rheumatology(Oxford),2010,49(11):2054-2060.
[12]Duan K,Ge YC,Zhang XP,et al.miR-34a inhibits cell proliferation in prostate cancer by downregulation of SIRT1 expression.Oncol Lett,2015,10(5):3223-3227.
[13]Tian XF,Ji FJ,Zang HL,et al.Activation of the miR-34a/SIRT1/p53 signaling pathway contributes to the progress of liver fibrosis via inducing apoptosis in hepatocytes but not in HSCs.PLoS One,2016,11(7):e0158657.
[14]de Oliveira RM,Pais TF,Outeiro TF.Sirtuins:common targets in aging and in neurodegeneration.Curr Drug Targets,2010,11(10):1270-1280.
[15]Liu FC,Hung LF,Wu WL,et al.Chondroprotective effects and mechanisms of resveratrol in advanced glycation end productsstimulated chondrocytes.Arthritis Res Ther,2010,12(5):R167.