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    東山島星座短腹海鞘共附生微生物多樣性研究

    2018-06-29 02:54:36喬玉寶田曉清唐瑩瑩樊成奇馬麗艷陸亞男
    海洋漁業(yè) 2018年3期
    關(guān)鍵詞:海鞘高通量星座

    喬玉寶, 田曉清, 唐瑩瑩, 樊成奇, 馬麗艷, 陸亞男

    (1中國水產(chǎn)科學(xué)研究院東海水產(chǎn)研究所,農(nóng)業(yè)部東海與遠(yuǎn)洋漁業(yè)資源開發(fā)利用重點(diǎn)實(shí)驗室,上海 200090; 2上海海洋大學(xué),上海 201306)

    星座短腹海鞘(Aplidiumconstellatum,也稱星座褶胃海鞘),原名星座美洲海鞘(AmarouciumconstellatumVerrill,也稱星座列精海鞘 ),屬脊索動物門(Chordata)尾索動物亞門(Urochordata)海鞘綱(Asciacea)三段海鞘科(Polyclinidae)短腹海鞘屬(或稱褶胃海鞘屬),為復(fù)海鞘,在渤海、黃海、東海海域均有分布,是我國海鞘常見優(yōu)勢物種之一[1-2]。此前已有文獻(xiàn)報道從該屬海鞘中分離出了具有多種骨架類型的生物堿、酚醌、環(huán)肽、大環(huán)內(nèi)酯等成分,并顯示出抗菌、抗腫瘤等多種生物活性[3-4],提示其可能具有藥學(xué)或保健方面的應(yīng)用價值。但迄今為止,尚未有關(guān)于星座短腹海鞘共附生微生物及其活性物質(zhì)的報道。前期對星座短腹海鞘脂溶性提取物進(jìn)行了研究,首次發(fā)現(xiàn)其具有降血脂功效,提示其可能具有進(jìn)一步的開發(fā)利用價值,并開展了其脂溶性提取物提取工藝的初步研究[5-6]。

    已有研究表明,海洋生物次生代謝產(chǎn)物的類型與多樣性與其共附生微生物的次生代謝產(chǎn)物類型與多樣性具有較強(qiáng)的相關(guān)性。海鞘中蘊(yùn)含著豐富的微生物資源,其共附生微生物中可能存在著與海鞘生物中相類似的活性天然產(chǎn)物[7-8]。為進(jìn)一步研究該海鞘及其共附生微生物的次生代謝產(chǎn)物,本文以福建東山島采集的星座短腹海鞘為研究材料,通過免培養(yǎng)微生物高通量測序技術(shù)和純培養(yǎng)技術(shù)對其細(xì)菌多樣性進(jìn)行分析,一方面通過高通量測序技術(shù)首次解析了其共附生菌群的種類、豐度及多樣性信息,另一方面也積累了豐富的該種海鞘共附生微生物菌種資源,以期為進(jìn)一步探索海鞘與微生物之間的共生、附生關(guān)系,并開展海鞘降血脂活性物質(zhì)的開發(fā)利用奠定基礎(chǔ)。

    1 材料與方法

    1.1 實(shí)驗材料

    星座短腹海鞘于2017年5月采自福建漳州東山島海域。采集后用大量海水沖洗并快速置于4 ℃冷藏保存,24 h內(nèi)運(yùn)回實(shí)驗室進(jìn)行分析。

    Ezup柱式基因組DNA抽提試劑盒(上海生工生物有限公司);16 s引物(上海生工生物有限公司);PCR擴(kuò)增體系(北京康為世紀(jì))。

    1.2 實(shí)驗方法

    1.2.1 高通量測序

    星座短腹海鞘(20 g)樣品用無菌海水清洗3次,清洗干凈表面的泥沙,將清洗好的樣品用滅菌研缽研磨成漿,然后用適量無菌海水進(jìn)行稀釋,備用。

    DNA抽提:使用 Stool DNA Kit 試劑盒(OMEGA,美國)提取星座短腹海鞘樣品微生物的DNA。所有樣品的DNA 提取步驟均參照Stool DNA Kit試劑盒說明書。對提取到的樣品基因組DNA 用質(zhì)量分?jǐn)?shù)為1% 的瓊脂糖凝膠電泳檢測質(zhì)量。

    PCR擴(kuò)增:針對細(xì)菌16S rRNA基因V3 + V4 區(qū)設(shè)計含 barcode 的特異引物338F /806R,引物序列為:338F:5′-ACTCCTACGGGAGGCAGCAG - 3′,806R:5′-GGACTACHVGGGTWTCTAAT- 3′。PCR擴(kuò)增采用TransGen AP221-02:TransStart FastPfu DNA Polymerase,20 μL反應(yīng)體系:5×FastPfu Buffer 4 μL,2.5 mM dNTPs 2 μL,F(xiàn)orward Primer(5 μM) 0.8 μL,Reverse Primer(5 μM) 0.8 μL,F(xiàn)astPfu Polymerase 0.4 μL,BSA 0.2 μL,Template DNA 10 ng,補(bǔ)ddH2O至20 μL。PCR條件:95 ℃變性3 min;95 ℃ 30 s,55 ℃ 30 s,72 ℃ 45 s,27個循環(huán);最后72 ℃ 10 min延伸(PCR儀:ABI Gene Amp? 9700型)。然后將獲得PCR產(chǎn)物混合后用2%瓊脂糖凝膠電泳檢測,使用AxyPrepDNA凝膠回收試劑盒(AXYGEN公司)切膠回收PCR產(chǎn)物,Tris-HCl洗脫; 2%瓊脂糖電泳檢測。

    Miseq文庫構(gòu)建及Miseq測序:構(gòu)建測序文庫后在 Illumina Miseq平臺進(jìn)行高通量測序(美吉生物公司,上海)[9]。

    數(shù)據(jù)質(zhì)控:MiSeq測序得到的是雙端序列數(shù)據(jù),首先根據(jù)PE reads之間的overlap關(guān)系,將成對的reads拼接(merge)成一條序列,同時對reads的質(zhì)量和merge的效果進(jìn)行質(zhì)控過濾,根據(jù)序列首尾兩端的barcode和引物序列區(qū)分樣品得到有效序列,并校正序列方向。數(shù)據(jù)去雜方法和參數(shù):1)過濾reads尾部質(zhì)量值20以下的堿基,設(shè)置50bp的窗口,如果窗口內(nèi)的平均質(zhì)量值低于20,從窗口開始截去后端堿基,過濾質(zhì)控后50bp以下的reads,去除含N堿基的reads;2)根據(jù)PE reads之間的overlap關(guān)系,將成對reads拼接(merge)成一條序列,最小overlap長度為10 bp;3)拼接序列的overlap區(qū)允許的最大錯配比率為0.2,篩選不符合序列;4)根據(jù)序列首尾兩端的barcode和引物區(qū)分樣品,并調(diào)整序列方向,barcode允許的錯配數(shù)為0,最大引物錯配數(shù)為2;使用軟件:FLASH、Trimmomatic。

    數(shù)據(jù)分析:按照97%相似性對非重復(fù)序列(不含單序列)進(jìn)行OTU聚類,得到OTU的代表序列;將所有優(yōu)化序列map至OTU代表序列,選出與代表序列相似性在97%以上的序列,生成OTU表格。采用RDP classifier貝葉斯算法對97%相似水平的OTU代表序列進(jìn)行分類學(xué)分析,并分別在各個分類水平:domain(域),kingdom(界),phylum(門),class(綱),order(目),family(科),genus(屬),species(種)統(tǒng)計各樣本的群落組成。16S細(xì)菌比對數(shù)據(jù)庫:Silva、RDP、Greengene。

    軟件及算法: Qiime平臺, RDP Classifier,置信度閾值為0.7。

    1.2.2 可培養(yǎng)共附生菌的分離及鑒定

    可培養(yǎng)共附生菌的分離:將1.2.1中剩余海鞘研磨樣品用適量無菌海水稀釋,置4 ℃冰箱過夜,次日取上清液用無菌海水進(jìn)行梯度稀釋至10-1、10-2、10-3、10-4,分別涂布于2216E培養(yǎng)基,28 ℃培養(yǎng)10 d。待平板菌落長成,挑取不同形狀、不同顏色的菌落平板劃線進(jìn)行純化,最后挑取劃線平板上單菌落接到斜面上,保種備用。

    可培養(yǎng)共附生菌的鑒定:1)細(xì)菌基因組DNA的制備:將已生長到對數(shù)期的斜面菌落,接種到5 mL 2216液體培養(yǎng)基中,置于搖床28 ℃培養(yǎng)3~5 d,根據(jù)細(xì)菌基因組DNA提取試劑盒說明書步驟提取目標(biāo)基因組DNA。2)引物設(shè)計:海洋細(xì)菌16S rRNA基因擴(kuò)增選用通用引物27F(5′-AGAGTTTGATCCTGGCTCAG-3′)和1492R(5′-GGTTACCTTGTTACGACTT-3′)進(jìn)行PCR擴(kuò)增。3)PCR擴(kuò)增體系為50 μL∶2×TaqPCR MasterMix 25 μL,引物各1 μL,模板DNA 3 μL,重蒸水20 μL。擴(kuò)增程序:94 ℃預(yù)變性5 min,94 ℃變性30 s,56 ℃退火30 s,72 ℃延伸1 min,共35個循環(huán),最后72 ℃延伸10 min[10]。PCR產(chǎn)物進(jìn)行1%瓊脂糖凝膠電泳[11]。4)DNA測序和系統(tǒng)發(fā)生學(xué)分析:委托上海美吉生物公司完成測序。獲得的16S rRNA基因序列提交GenBank用BLAST 軟件與已知序列進(jìn)行對比,利用MEGA 5.1軟件繪制系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 樣品信息統(tǒng)計

    星座短腹海鞘所獲得的37 911條序列長度分布在293~480(表1),420~440范圍內(nèi)序列最多,為30 325條,其次是441~460,為7 502條(圖1)。

    圖1 序列長度分布Fig.1 Length distribution of trimmed sequences

    從稀釋曲線來看,隨著測序量的增加,稀釋曲線斜率逐漸降低,曲線趨向平坦,說明測序數(shù)據(jù)量合理,更多的數(shù)據(jù)量只會產(chǎn)生少量的新的物種(圖2)。

    圖2 稀釋曲線Fig.2 Rarefaction curve

    2.2 物種注釋與評估

    可操作分類單元(OTU,operational taxonomic units) 是在系統(tǒng)發(fā)生學(xué)Greengene或群體遺傳學(xué)研究中,為了便于進(jìn)行分析,人為給某一個分類單元(品系,種,屬,分組等)設(shè)置的統(tǒng)一標(biāo)志。要了解一個樣本測序結(jié)果中的菌種、菌屬等數(shù)目信息,就需要對序列進(jìn)行聚類。通過聚類操作,對各個樣品的有效序列進(jìn)行系譜分類,以 97%相似性水平為標(biāo)準(zhǔn)劃分OTU[11],使得星座短腹海鞘共附生微生物所獲得的37 911條序列分為310個OTUs,注釋到24個門,41個綱,84個目,124個科,197個屬,249個種。

    從多樣性指數(shù)表來看,ace值和chao值分別為310.327和310.091,說明所測樣品中所含OTU數(shù)目為310;Simpson值為0.373,Shannon值為2.494,說明所測樣品群落多樣性較高;樣本覆蓋率(Coverage)為99.99%,說明本次測序結(jié)果可以代表樣本中微生物的真實(shí)情況(表2)。

    2.3 物種組成分析

    從門的水平來看(圖4),星座短腹海鞘共附生微生物優(yōu)勢門有7個,分別為變形菌門(Proteobacteria,78.86%)、放線菌門(Actinobacteria,6.01%)、擬桿菌門(Bacteroidetes,4.67%)、藍(lán)藻門(Cyanobacteria,2.62%)、厚壁菌門(Firmicutes,1.79%)、柔膜菌門(Tenericutes,1.76%)、螺旋菌門(Spirochaetae,1.33%),其它的17個門占2.95%。

    表1 樣本信息統(tǒng)計表Tab.1 Sample information statistics

    圖3 星座短腹海鞘共附生菌門水平分布圖Fig.3 The phylum level distribution of Aplidium constellatum associated bacteria

    從屬的水平來看(圖3),星座短腹海鞘共附生微生物分屬于197個屬,優(yōu)勢屬有10個,分別為Ruegeria(60.83%)、SAR116_clade科下未知屬(3.27%)、Rhodococcus(2.40%)、Cyanobacteria綱下未知屬(2.26%)、Candidatus_Hepatoplasma(1.76%)、PeM15目下未知屬(1.61%)、Spirochaetaceae科下未分類屬(1.33%)、Thalassobius(1.26%)、Rhodobacteraceae科下未分類屬(1.23%)、Rhodospirillaceae科下未分類屬(1.08%)。

    2.4 星座短腹海鞘可培養(yǎng)微生物類群的多樣性

    從星座短腹海鞘中共分離獲得15株可培養(yǎng)共附生菌,對這15株可培養(yǎng)共附生菌16S rRNA基因進(jìn)行PCR擴(kuò)增及測序,所得序列與GenBank數(shù)據(jù)庫進(jìn)行同源性比對(表3),結(jié)果表明,15株可培養(yǎng)共附生菌分屬于8個屬,分別為弧菌屬Vibrio(7株)、希瓦氏菌屬Shewanella(2株),其余的屬Pseudomonas、Pseudovibrio、Thalassobius、Exiguobacterium、Flavobacterium、Thalassospira各1株。從相似度來看,15株可培養(yǎng)共生菌與GenBank數(shù)據(jù)庫中菌種相似度在98%以上?;?6S rRNA基因的系統(tǒng)發(fā)育分析見圖 5。

    表2 多樣性指數(shù)表Tab.2 Table of alpha diversity indices

    圖4 星座短腹海鞘共附生菌屬平分布圖Fig.4 The genus level distribution of Aplidium constellatum associated bacteria

    屬 Genus菌株編號 Strain No.相近模式菌株 Similar strain相似度/% SimilarityVibrio XZDF-10Vibrio tasmaniensis LMG 21574T (AJ514912)99.24XZDF-11Vibrio atlanticus Vb 11.11T (EF599163)99.17XZDF-16Vibrio neocaledonicus NC 470T (JQ934828)99.22XZDF-20Vibrio hyugaensis 090810aT (LC004912)99.86XZDF-24Vibrio crassostreae LGP 7T (CCJW01000022)99.31XZDF-25Vibrio chagasii R-3712T (AJ316199)98.80XZDF-7Vibrio cyclitrophicus P-2P44T (U57919)98.34ShewanellaXZDF-14Shewanella loihica PV-4T (CP000606)98.07XZDF-23Shewanella aquimarina SW-120T (AY485225)99.10PseudomonasXZDF-8-1Pseudomonas zhaodongensis NEAU-ST5-21T(JQ762275)98.93PseudovibrioXZDF-8-2Pseudovibrio ascidiaceicola DSM 16392T (AB175663)99.57ThalassobiusXZDF-12Thalassobius aestuarii DSM 15283T (AY442178)99.12ExiguobacteriumXZDF-13Exiguobacterium aestuarii TF-16T (AY594264)98.90FlavobacteriumXZDF-15Flavobacterium rakeshii FCS-5T (JF830803)99.51ThalassospiraXZDF-26Thalassospira xiamenensis M-5T (CP004388)98.71

    圖5 基于16S rRNA序列構(gòu)建的星座短腹海鞘可培養(yǎng)共附生菌的系統(tǒng)發(fā)育進(jìn)化樹Fig.5 Phylogenetic tree based on neighbor-joining analysis of 16S rRNA sequences

    3 討論

    本文通過高通量測序技術(shù)首次解析了星座短腹海鞘共附生微生物種類、豐度及多樣性信息,此結(jié)果對于深化對海鞘共附生多樣性的認(rèn)識,指導(dǎo)其可培養(yǎng)共附生微生物的分離具有重要意義。

    從研究結(jié)果發(fā)現(xiàn),通過純培養(yǎng)技術(shù)所得到的可培養(yǎng)共附生微生物種屬數(shù)量較少,可能是由于本實(shí)驗只使用了2216E一種海洋培養(yǎng)基的緣故。以往的研究結(jié)果表明,使用不同的培養(yǎng)基對于微生物的多樣性發(fā)現(xiàn)有較大影響。因此在后續(xù)研究中應(yīng)當(dāng)增加分離培養(yǎng)基的種類,以提高共附生微生物的分離效果[8]。

    研究結(jié)果顯示,從星座短腹海鞘中分離出的細(xì)菌中有弧菌、希瓦氏菌這兩種致病菌,這可能與本實(shí)驗采集海鞘的地點(diǎn)為當(dāng)?shù)刂饕KB(yǎng)殖區(qū)有關(guān),樣本可能在生長過程中受到養(yǎng)殖水產(chǎn)病害的污染。雖然這兩種致病菌并不屬于優(yōu)勢菌株,但仍然提示在后期的海鞘開發(fā)利用過程中,應(yīng)注意原料來源;在原料采集或共附生微生物的規(guī)?;囵B(yǎng)中,要注意監(jiān)測水產(chǎn)致病菌的存在情況,避免可能帶來的安全隱患。

    以往對海鞘共附生微生物的研究多采用純培養(yǎng)方式,本實(shí)驗采用了高通量測序方法。這主要是由于海洋中有許多微生物是不可培養(yǎng)的,只靠純培養(yǎng)技術(shù)不能全面了解微生物多樣性,而Illumina MiSeq高通量測序技術(shù)打破了純培養(yǎng)技術(shù)的限制,使得人們可以更快捷、全面了解微生物多樣性。因此,在以后的共附生微生物多樣性的研究中,結(jié)合高通量測序技術(shù)與純培養(yǎng)方法來探討海洋微生物多樣性,將更有助于深化人們對微生物資源的認(rèn)識。

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