房亞蘭 黃語悠 趙詠梅* 李錦程 段云霞 高 利 羅玉敏
(1.北京市平谷區(qū)醫(yī)院全科醫(yī)療科,北京 101200;2. 首都醫(yī)科大學(xué)宣武醫(yī)院 北京市老年病醫(yī)療研究中心,北京 100053)
缺血性卒中嚴(yán)重威脅人類健康,目前已成為我國國民死亡的首要原因[1]。然而臨床上治療腦缺血的藥物非常有限,唯一有效的治療方法是在有限的時(shí)間窗內(nèi)應(yīng)用重組組織型纖溶酶原激活劑進(jìn)行溶栓。中藥大黃在我國用于治療腦缺血損傷由來已久,大黃酚(chrysophanol, CHR)是自大黃中提取的一種活性成分[2],近年來的研究[2-4]表明,CHR能顯著減少腦缺血再灌注損傷,但其相關(guān)神經(jīng)保護(hù)機(jī)制尚不完全清楚。
環(huán)磷酸腺苷反應(yīng)元件結(jié)合蛋白(cyclic AMP response element binding protein,CREB)是細(xì)胞核內(nèi)的一種轉(zhuǎn)錄因子,其磷酸化程度與細(xì)胞對缺氧導(dǎo)致死亡的耐受性相關(guān)[5-6]。研究[7]表明,腦缺血損傷抑制磷酸化CREB(phosphorylated CREB,p-CREB)產(chǎn)生。給予永久性大腦中動(dòng)脈梗死(middle cerebral artery occlusion, MCAO)小鼠西洛他唑治療后,神經(jīng)元內(nèi)p-CREB蛋白表達(dá)增加,細(xì)胞凋亡減少,腦梗死體積顯著減小[5]。腦源性神經(jīng)營養(yǎng)因子(brain derived neurotrophic factor,BDNF)是CREB的下游調(diào)控因子,作為大腦發(fā)育過程及成人期的主要神經(jīng)營養(yǎng)因子,廣泛分布于大腦皮質(zhì)、海馬和紋狀體,能促進(jìn)神經(jīng)功能恢復(fù),在腦缺血損傷中發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用[8]。給予腦缺血再灌注大鼠三七皂甙R1治療可能通過上調(diào)BDNF基因在海馬的表達(dá)水平,增加抗凋亡因子表達(dá),從而保護(hù)腦缺血再灌注大鼠的海馬神經(jīng)元,減少腦梗死體積[9]。
p-CREB和BDNF在腦缺血?jiǎng)游锬P秃湍X缺血患者中表達(dá)失調(diào),與腦缺血損傷密切相關(guān),被認(rèn)為是未來治療腦缺血的重要靶點(diǎn)[10]。轉(zhuǎn)錄激活因子3(signal transducer and activator of transcription 3, STAT3)是一種廣泛存在于中樞神經(jīng)系統(tǒng)的DNA結(jié)合蛋白,在信號轉(zhuǎn)導(dǎo)和轉(zhuǎn)錄過程中發(fā)揮重要作用。有文獻(xiàn)[11]報(bào)道,STAT3聯(lián)結(jié)BDNF后可發(fā)揮神經(jīng)可塑性。磷酸化STAT3(phosphorylated STAT3,p-STAT3)是STAT3的激活形式,p-STAT3參與腦缺血損傷的細(xì)胞死亡、凋亡過程[12]。研究[13]表明,在腦缺血再灌注大鼠的缺血側(cè)海馬組織,p-STAT3顯著增加。因此,本研究采用 MCAO再灌注模型小鼠,觀察CHR對腦缺血小鼠再灌注后14 d CREB、BDNF和p-STAT3表達(dá)的影響,從而進(jìn)一步探討CHR長期拮抗腦缺血再灌注損傷的機(jī)制。
麻醉機(jī)(Harvard Apparatus公司,美國)、小動(dòng)物手術(shù)顯微鏡(Carl Zeiss公司,德國)、雙極電凝器(天業(yè)德威醫(yī)療設(shè)備有限公司)、反饋式溫度調(diào)節(jié)儀(CMA 150, Carnegie Medicin公司,瑞典)、熒光顯微鏡(Nikon公司,日本)。
CHR(中國食品藥品檢定研究院);Tween 80(Sigma公司,美國);恩氟烷(河北一品制藥有限公司); p-CREB抗體(北京中杉金橋公司);BDNF抗體(Abcam公司,美國);NeuN抗體(Millipore公司,美國);p-STAT3抗體(CST公司,美國);β-actin抗體(Santa cruz公司,美國)等。
2月齡C57BL健康雄性小鼠,體質(zhì)量(23.5±1)g,實(shí)驗(yàn)動(dòng)物許可證號:SCXK(京) 2012-0001(北京維通利華實(shí)驗(yàn)動(dòng)物公司),飼養(yǎng)于SPF級動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室。按照數(shù)字表法隨機(jī)將18只小鼠分為3組(每組6只):假手術(shù)(Sham)組、MCAO組、CHR組。CHR溶于含1%(體積分?jǐn)?shù))Tween 80和1%(體積分?jǐn)?shù))DMSO的0.9%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))氯化鈉注射液中,從造模當(dāng)天至再灌注后14 d,CHR組小鼠按0.1 mg/kg腹腔注射CHR,每天1次, Sham組和MCAO組小鼠腹腔注射同等體積的含1%(體積分?jǐn)?shù)) Tween 80和1%(體積分?jǐn)?shù)) DMSO的0.9%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))氯化鈉注射液。
MCAO模型按改良ZeaLonga法制備。將恩氟烷混合于70%(體積分?jǐn)?shù))N2O和30%(體積分?jǐn)?shù))O2中,先用5%(體積分?jǐn)?shù))恩氟烷誘導(dǎo)麻醉,再用面罩吸入2%(體積分?jǐn)?shù))恩氟烷維持麻醉。于小鼠頸部沿正中線切口,分離右側(cè)頸總動(dòng)脈、頸內(nèi)動(dòng)脈及頸外動(dòng)脈,將頭端直徑0.38 mm的尼龍線栓由頸外動(dòng)脈殘端插入頸內(nèi)動(dòng)脈,至頸外動(dòng)脈和頸內(nèi)動(dòng)脈分叉約1 cm處。手術(shù)過程中使用反饋性控溫毯監(jiān)測實(shí)驗(yàn)小鼠肛溫,維持在(37.0±0.5) ℃。缺血45 min后,小心地將線栓拔出進(jìn)行再灌注。術(shù)后小鼠飼養(yǎng)于SPF級動(dòng)物實(shí)驗(yàn)室,自由進(jìn)食飲水。
于造模后14 d,各組小鼠經(jīng)腹腔注射水合氯醛麻醉后,快速斷頭取腦,經(jīng)4%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))多聚甲醛固定48 h后,于30%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))蔗糖脫水24 h,將腦組織行連續(xù)冰凍切片(厚度為20 μm),切片經(jīng)PBS洗后,用含0.2%(體積分?jǐn)?shù))TritonX-100的PBS孵育10 min,再經(jīng)PBS洗后,于室溫下用5 %(體積分?jǐn)?shù))山羊血清封閉30 min,滴加一抗(p-CREB與NeuN鼠多克隆抗體 1∶300,或BDNF與NeuN鼠多克隆抗體 1∶300),4 ℃孵育過夜。次日取出切片,經(jīng)PBS洗后,滴加山羊抗鼠和山羊抗兔熒光二抗(1∶300),避光于室溫下孵育1 h。經(jīng)PBS洗后,最后用含DAPI(4′,6-diamidino-2-phenylindole)的封片劑進(jìn)行封片。于熒光顯微鏡下觀察腦皮質(zhì)缺血半暗帶區(qū)[14]。每組選取5只小鼠同一位置的腦切片3張,在相同放大倍數(shù)、相同參數(shù)條件下,每張腦組織冰凍切片隨機(jī)選取4個(gè)視野照相,使用NIS Element軟件統(tǒng)計(jì)p-CREB和BDNF陽性細(xì)胞數(shù)目。
再灌注14 d后,各組小鼠快速斷頭取腦,立即于前囟0到-0.1切取1 mm厚的腦組織冠狀切片,將缺血側(cè)腦組織在含有蛋白酶抑制劑的裂解緩沖液中于冰上勻漿,經(jīng)30 min冰浴后,4 ℃條件下12 000 g離心30 min取上清。用BCA法進(jìn)行蛋白濃度測定。將上樣緩沖液加入樣品煮沸10 min,然后進(jìn)行SDS-PAGE電泳,濕轉(zhuǎn)法轉(zhuǎn)膜90 min,于5%(質(zhì)量分?jǐn)?shù))脫脂牛奶室溫下封閉1 h,加入一抗(p-STAT3 1∶1 000,β-actin 1:1 000),4 ℃孵育過夜,用TBST洗膜3次,室溫下于HRP標(biāo)記的二抗中孵育1 h,TBST洗膜3次,用ECL化學(xué)發(fā)光液顯色,并用化學(xué)發(fā)光系統(tǒng)掃描,蛋白條帶用Image J圖像處理軟件進(jìn)行定量分析。
免疫熒光染色結(jié)果顯示,Sham組小鼠腦組織內(nèi)可見p-CREB紅色熒光染色,而MCAO組小鼠腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB染色陽性細(xì)胞顯著減少,CHR組小鼠腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB染色陽性細(xì)胞數(shù)目比MCAO組顯著增加(圖1 A),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖1 B)。免疫熒光雙標(biāo)染色結(jié)果可見,在MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)內(nèi)可見p-CREB陽性細(xì)胞及NeuN陽性細(xì)胞,其中p-CREB陽性細(xì)胞為紅色熒光,NeuN陽性細(xì)胞為綠色熒光。所有細(xì)胞的胞核為藍(lán)色熒光。圖像合并后,綠色與紅色熒光重合,表明p-CREB與神經(jīng)元共定位,即腦缺血再灌注后p-CREB在缺血半暗帶區(qū)神經(jīng)元內(nèi)表達(dá)(圖1 A)。
免疫熒光染色結(jié)果顯示,Sham組小鼠腦組織內(nèi)可見BDNF紅色熒光染色,分布于大腦皮質(zhì)、海馬及紋狀體,MCAO組小鼠腦缺血半暗帶區(qū)BDNF染色陽性細(xì)胞比Sham組明顯減少,CHR組小鼠腦缺血半暗帶區(qū)BDNF的表達(dá)比MCAO組明顯增加(圖2 A),差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖2 B)。在MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)內(nèi)可見BDNF陽性細(xì)胞為紅色熒光及NeuN陽性細(xì)胞為綠色熒光,細(xì)胞核為藍(lán)色熒光。圖像合并后,綠色與紅色熒光重合,表明BDNF與神經(jīng)元共定位,即腦缺血再灌注后BDNF在缺血半暗帶區(qū)神經(jīng)元內(nèi)表達(dá)(圖2 A)。
圖1 Sham、MCAO及CHR各組小鼠再灌注14 d腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB/NeuN免疫熒光雙標(biāo)結(jié)果Fig.1 The double immunofluorescence labeling of p-CREB (red) / NeuN (green) in cerebralischemia penumbra of Sham, MCAO and CHR groups mice 14 d after reperfusion
A:representative double immunofluorescence labeling of p-CREB (red) / NeuN (green) on 14 d after ischemia/reperfusion. Bar=20μm.B: quantification of p-CREB-positive cells. (n=5, mean ± SD)*P<0.05vssham group,#P<0.05vsMCAO group;MCAO: middle cerebral artery occlusion;CHR:chrysophanol;p-CREB:phosphorylated cyclic AMP response element binding protein;DAPI: 4′,6-diamidino-2-phenylindole.
圖2 Sham、MCAO及CHR各組小鼠再灌注14 d腦缺血半暗帶區(qū)BDNF/NeuN免疫熒光雙標(biāo)結(jié)果Fig.2 The double immunofluorescence labeling of BDNF (red) / NeuN (green) in cerebral ischemia penumbra of Sham, MCAO and CHR groups mice 14 d after reperfusion
A:representative double immunofluorescence labeling of BDNF (red) / NeuN (green) on 14 d after ischemia/reperfusion. Bar=20μm.B: quantification of BDNF-positive cells. (n=5, mean ± SD)*P<0.05vsSham group,#P<0.05vsMCAO group;BDNF:brain derived neurotrophic factor;MCAO: middle cerebral artery occlusion;CHR:chrysophanol;DAPI: 4′,6-diamidino-2-phenylindole.
Western blotting結(jié)果顯示,與Sham組相比,MCAO組小鼠缺血側(cè)腦組織的p-STAT3蛋白表達(dá)水平顯著增加,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖3)。CHR組小鼠缺血側(cè)腦組織p-STAT3蛋白水平比MCAO組顯著減少,差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(P<0.05,圖3)。
炎性反應(yīng)、氧化應(yīng)激、興奮性氨基酸毒性等多種機(jī)制參與腦缺血/再灌注損傷過程。本課題組的研究[2]表明,腦缺血再灌注后14 d,CHR提高了MCAO小鼠生存率,改善神經(jīng)功能評分,減少腦組織丟失,從而發(fā)揮長期的神經(jīng)保護(hù)作用。這可能與CHR抑制內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應(yīng)激,進(jìn)而抑制腦缺血半暗帶區(qū)內(nèi)NF-κΒ活化,減少下游炎性反應(yīng)因子表達(dá)有關(guān)[2-3]。然而對于缺血性腦損傷過程中,CHR發(fā)揮長期腦保護(hù)作用的機(jī)制尚不完全清楚。本研究采用免疫熒光染色方法檢測MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB和BDNF蛋白表達(dá)水平,Western blotting檢測MCAO小鼠缺血側(cè)腦組織p-STAT3的蛋白水平,從而探討CHR拮抗腦缺血再灌注損傷的相關(guān)機(jī)制。
圖3 Sham、MCAO及CHR各組小鼠再灌注14 d缺血側(cè)腦組織p-STAT3的蛋白免疫印跡結(jié)果Fig.3 Western blotting results of p-STAT3 in ischemiabrain tissue of Sham, MCAO and CHR groupsmice 14 d after reperfusion
Western blotting results of p-STAT3. β-actin functions as loading control.*P<0.05vsSham group,#P<0.05vsMCAO group (n=5, mean±SD);MCAO: middle cerebral artery occlusion;CHR:chrysophanol;p-STAT3:phosphorylated signal transducer and activator of transcription 3.
研究[15]表明,p-CREB誘導(dǎo)激活與神經(jīng)元存活相關(guān)的多種靶基因。為闡明CHR保護(hù)腦缺血損傷的機(jī)制,本研究觀察了CHR對MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB表達(dá)的影響。免疫熒光染色結(jié)果顯示,腦缺血再灌注14 d,MCAO組小鼠缺血半暗帶區(qū)p-CREB蛋白水平較Sham組顯著降低,p-CREB介導(dǎo)一些神經(jīng)營養(yǎng)因子和神經(jīng)保護(hù)蛋白的轉(zhuǎn)錄,對修復(fù)神經(jīng)細(xì)胞損傷有重要作用,有助于神經(jīng)細(xì)胞存活[16],因此,本研究結(jié)果提示短暫性局灶性腦缺血再灌注損傷抑制p-CREB產(chǎn)生,導(dǎo)致神經(jīng)細(xì)胞損傷。給予CHR治療的MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)p-CREB蛋白表達(dá)顯著增加,表明CHR促進(jìn)p-CREB產(chǎn)生,結(jié)合課題組之前的研究[2]結(jié)果,給予CHR治療14 d能明顯改善MCAO小鼠神經(jīng)功能缺損,減少細(xì)胞凋亡。提示CHR可能是通過促進(jìn)p-CREB蛋白表達(dá),減少神經(jīng)細(xì)胞凋亡,從而減輕腦缺血損傷。
內(nèi)源性神經(jīng)保護(hù)劑BDNF是由p-CREB激活的神經(jīng)營養(yǎng)因子之一[16],為進(jìn)一步闡明CHR拮抗腦缺血損傷的機(jī)制,本研究觀察了CHR對MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)BDNF表達(dá)水平的影響。結(jié)果顯示,腦缺血再灌注14 d,MCAO組小鼠缺血半暗帶區(qū)BDNF蛋白水平較Sham組顯著降低,提示腦缺血再灌注損傷抑制內(nèi)源性BDNF產(chǎn)生,促進(jìn)神經(jīng)元死亡,加重腦缺血再灌注損傷。p-CREB能促進(jìn)BDNF等神經(jīng)營養(yǎng)因子產(chǎn)生[17],增加BDNF水平或激活BDNF相關(guān)信號通路有助于恢復(fù)卒中導(dǎo)致的神經(jīng)功能缺損[18],給予CHR治療的MCAO小鼠腦缺血半暗帶區(qū)BDNF蛋白表達(dá)顯著增加,提示CHR可能通過上調(diào)p-CREB表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)內(nèi)源性BDNF產(chǎn)生,發(fā)揮長期腦保護(hù)作用。
有研究[19]顯示,腦缺血后BDNF與TNF-α在海馬小膠質(zhì)細(xì)胞中共定位表達(dá),BDNF能抑制TNF-α蛋白及mRNA的表達(dá)[20],表明BDNF參與調(diào)節(jié)炎性反應(yīng)。結(jié)合本課題組之前的研究[2]結(jié)果,CHR能顯著抑制TNF-α等炎性反應(yīng)因子表達(dá),提示CHR可能通過促進(jìn)BDNF產(chǎn)生,進(jìn)而抑制炎性反應(yīng),發(fā)揮神經(jīng)保護(hù)作用。
P-CREB能促進(jìn)BDNF等神經(jīng)營養(yǎng)因子產(chǎn)生,提高神經(jīng)元存活率,改善突觸功能[17]。為闡明MCAO小鼠腦內(nèi)p-CREB、BDNF在缺血半暗帶區(qū)神經(jīng)元中表達(dá)水平的變化,本研究分別將p-CREB、BDNF與神經(jīng)元標(biāo)志物NeuN共染。免疫熒光雙標(biāo)染色結(jié)果顯示,p-CREB、BDNF分別與NeuN共定位,表明p-CREB、BDNF在神經(jīng)元內(nèi)表達(dá),提示p-CREB、BDNF影響腦缺血后神經(jīng)元損傷。
STAT3介導(dǎo)許多細(xì)胞因子驅(qū)動(dòng)的信號轉(zhuǎn)導(dǎo)。STAT3磷酸化后被激活,p-STAT3促進(jìn)暫時(shí)性局灶性腦缺血后的神經(jīng)元損傷[21]。在本研究中,筆者通過Western blotting檢測發(fā)現(xiàn),腦缺血再灌注14 d,MCAO組小鼠缺血側(cè)腦組織p-STAT3蛋白比Sham組顯著增多。局灶性缺血后,p-STAT3可與DNA結(jié)合誘導(dǎo)多種基因表達(dá),導(dǎo)致神經(jīng)炎性反應(yīng)、細(xì)胞凋亡和腦損傷[12]。因此本研究結(jié)果提示,腦缺血再灌注促進(jìn)p-STAT3表達(dá),進(jìn)而促進(jìn)細(xì)胞凋亡,因此,p-STAT3參與腦缺血再灌注損傷。文獻(xiàn)[22]報(bào)道,肢體遠(yuǎn)端缺血后處理可調(diào)節(jié)反應(yīng)性星形細(xì)胞可塑性并抑制STAT3磷酸化,以促進(jìn)缺血性卒中后的神經(jīng)功能恢復(fù)。本研究中給予CHR治療的MCAO小鼠缺血側(cè)腦組織p-STAT3蛋白顯著減少,表明CHR可能通過抑制缺血損傷后腦組織內(nèi)p-STAT3表達(dá),從而發(fā)揮長期神經(jīng)保護(hù)作用。
綜上,本研究結(jié)果表明,給予CHR治療能促進(jìn)腦缺血再灌注損傷過程半暗帶區(qū)p-CREB產(chǎn)生,上調(diào)BDNF表達(dá),進(jìn)而抑制炎性反應(yīng),并抑制缺血側(cè)腦組織p-STAT3蛋白表達(dá),減少神經(jīng)元死亡,發(fā)揮長期腦保護(hù)作用。
[1] Lin Y, Li Z, Liu C, et al. Towards precision medicine in ischemic stroke and transient ischemic attack [J]. Front Biosci (Landmark Ed), 2018, 23: 1338-1359.
[2] Zhao Y, Fang Y, Li J, et al. Neuroprotective effects of chrysophanol against inflammation in middle cerebral artery occlusion mice [J]. Neurosci Lett, 2016, 630: 16-22.
[3] Zhao Y, Fang Y, Zhao H, et al. Chrysophanol inhibits endoplasmic reticulum stress in cerebral ischemia and reperfusion mice [J]. Eur J Pharmacol, 2018, 818: 1-9.
[4] 房亞蘭, 黃語悠, 趙詠梅, 等. 大黃酚對局灶性腦缺血再灌注小鼠缺血半暗帶區(qū)環(huán)氧化酶2和基質(zhì)金屬蛋白酶-9表達(dá)的影響[J]. 首都醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào), 2017, 38(1): 47-52.
[5] Shichinohe H, Tan C, Abumiya T, et al. Neuroprotective effects of cilostazol are mediated by multiple mechanisms in a mouse model of permanent focal ischemia [J]. Brain Res, 2015, 1602: 53-61.
[6] 魯楊, 張鴻, 馬英. CREB與腦缺血神經(jīng)元損傷[J]. 解剖科學(xué)進(jìn)展, 2010, 16(4): 374-376.
[7] Miyamoto N, Tanaka R, Shimosawa T, et al. Protein kinase A-dependent suppression of reactive oxygen species in transient focal ischemia in adrenomedullin-deficient mice [J]. J Cereb Blood Flow Metab, 2009, 29(11): 1769-1779.
[8] Dancause N, Nudo R J. Shaping plasticity to enhance recovery after injury [J]. Prog Brain Res, 2011, 192: 273-295.
[9] Zou S, Zhang M, Feng L, et al. Protective effects of notoginsenoside R1 on cerebral ischemia-reperfusion injury in rats [J]. Exp Ther Med, 2017, 14(6): 6012-6016.
[10] Qin L, Jing D, Parauda S, et al. An adaptive role for BDNF Val66Met polymorphism in motor recovery in chronic stroke [J]. J Neurosci, 2014, 34(7): 2493-2502.
[11] Tang Q P, Shen Q, Wu L X, et al. STAT3 signal that mediates the neural plasticity is involved in willed-movement training in focal ischemic rats [J]. J Zhejiang Univ Sci B, 2016, 17(7): 493-502.
[12] Hu G Q, Du X, Li Y J, et al. Inhibition of cerebral ischemia/reperfusion injury-induced apoptosis: nicotiflorin and JAK2/STAT3 pathway [J]. Neural Regen Res, 2017, 12(1): 96-102.
[13] 陳媛, 吳海金, 黃曉松, 等. 葛根素對腦缺血再灌注大鼠海馬組織P-STAT3、P53表達(dá)的影響[J]. 湖南中醫(yī)藥大學(xué)學(xué)報(bào), 2018, 38(1): 36-39.
[14] Dong W, Qi Z, Liang J, et al. Reduction of zinc accumulation in mitochondria contributes to decreased cerebral ischemic injury by normobaric hyperoxia treatment in an experimental stroke model [J]. Exp Neurol, 2015, 272: 181-189.
[15] Lee J H, Park S Y, Lee W S, et al. Lack of antiapoptotic effects of antiplatelet drug, aspirin and clopidogrel, and antioxidant, MCI-186, against focal ischemic brain damage in rats [J]. Neurol Res, 2005, 27(5): 483-492.
[16] Chen A, Xiong L J, Tong Y, et al. The neuroprotective roles of BDNF in hypoxic ischemic brain injury [J]. Biomed Rep, 2013, 1(2): 167-176.
[17] Cortes-Mendoza J, Diaz de Leon-Guerrero S, Pedraza-Alva G, et al. Shaping synaptic plasticity: the role of activity-mediated epigenetic regulation on gene transcription [J]. Int J Dev Neurosci, 2013, 31(6): 359-369.
[18] Liu B, Li L L, Tan X D, et al. Gadd45b mediates axonal plasticity and subsequent functional recovery after experimental stroke in rats [J]. Mol Neurobiol, 2015, 52(3): 1245-1256.
[19] Mohamed R A, Agha A M, Abdel-Rahman A A, et al. Role of adenosine A2A receptor in cerebral ischemia reperfusion injury: signaling to phosphorylated extracellular signal-regulated protein kinase (pERK1/2) [J]. Neuroscience, 2016, 314: 145-159.
[20] Jiang Y, Wei N, Lu T, et al. Intranasal brain-derived neurotrophic factor protects brain from ischemic insult via modulating local inflammation in rats [J]. Neuroscience, 2011, 172: 398-405.
[21] Satriotomo I, Bowen K K, Vemuganti R. JAK2 and STAT3 activation contributes to neuronal damage following transient focal cerebral ischemia [J]. J Neurochem, 2006, 98(5): 1353-1368.
[22] Cheng X, Zhao H, Yan F, et al. Limb remote ischemic post-conditioning mitigates brain recovery in a mouse model of ischemic stroke by regulating reactive astrocytic plasticity [J]. Brain Res, 2018, 1686: 94-100.