趙靜芳 鄧志杰 肖德強(qiáng) 黃豐 高偉 張勇勝 潘劍 鄧祥發(fā) 魯力廣西醫(yī)科大學(xué)公共衛(wèi)生學(xué)院,廣西高校高發(fā)疾病預(yù)防與控制研究重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室(南寧500);廣西醫(yī)科大學(xué)第一附屬醫(yī)院(南寧 500);廣西醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院(南寧500)
黃曲霉毒素B1(aflatoxin B1,AFB1)是由廣泛存在于自然界中的黃曲霉和寄生曲霉所產(chǎn)生的一種毒素,其毒性是氰化物的10倍、砒霜的68倍,同時(shí)還具有致突變性、致畸性和致癌性。AFB1主要污染糧油及其制品,如花生、玉米、大米、棉籽、花生油、玉米油等。在高溫高濕地區(qū),一些糧油及其制品在生長、收獲和儲存過程中較易被污染,對人類健康構(gòu)成極大威脅[1]。目前我國AFB1污染問題仍舊十分嚴(yán)峻,如何減少或消除AFB1的攝入及對機(jī)體健康的影響,降低肝癌造成的危害成為難題。AFB1導(dǎo)致的肝癌屬于高度惡性腫瘤,病程短、進(jìn)展快、治療難、易復(fù)發(fā),如果僅依靠現(xiàn)有治療方法難以有效遏制癌細(xì)胞的蔓延,預(yù)防才是控制疾病最具成本效益的長期戰(zhàn)略。
表沒食子兒茶素沒食子酸酯(epigallocatechin gallate,EGCG)是從綠茶中提取分離出的最有效的生物活性物質(zhì)。隨著人們對它的深入研究,越來越多的證據(jù)表明EGCG具有抗氧化[2]、抗炎癥[3]、抗腫瘤[4-5]和保護(hù)免疫系統(tǒng)[6]、神經(jīng)系統(tǒng)[7]及心腦血管系統(tǒng)[8]、緩解代謝綜合征[9]等方面的作用。EGCG在干預(yù)AFB1引起的肝損傷作用方面,目前國內(nèi)外尚未見相關(guān)報(bào)道,具有廣闊的研究前景。本研究旨在探討EGCG抗AFB1致急性肝損傷的干預(yù)作用,同時(shí)為EGCG干預(yù)AFB1引起肝損傷提供臨床依據(jù)。
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 50只SPF級雄性Sprague?Dawley(SD)大鼠,體質(zhì)量180~220 g,由廣西醫(yī)科大學(xué)實(shí)驗(yàn)動(dòng)物中心提供(許可證號SCXK桂2014?0002)。實(shí)驗(yàn)期間大鼠自由攝取食物(斯萊克普通標(biāo)準(zhǔn)飼料)和水,養(yǎng)殖環(huán)境12 h晝夜交替,溫度(23±1)℃,濕度(70±10)%。
1.2 主要試劑與儀器主要試劑AFB1(美國Sigma公司);EGCG(成都普瑞法公司);DMSO(法國MP公司);過氧化氫酶(CAT)、總超氧化物歧化酶(SOD)、總谷胱甘肽(GSH)和丙二醛(MDA)的測定試劑盒(南京建成生物工程研究所);Beckman Allegra X?15R離心機(jī);日立7600?020全自動(dòng)生化分析儀;life EVOS FL全自動(dòng)熒光倒置顯微鏡;LEI?CA TP1020組織脫水機(jī);LEICA EG1160組織包埋機(jī);LEICA RM2235輪轉(zhuǎn)切片機(jī);Thermo Multiskan全波長酶標(biāo)讀數(shù)儀。
1.3 動(dòng)物分組及處理 大鼠適應(yīng)性飼養(yǎng)7 d后,隨機(jī)分為空白組、AFB1組、EGCG低劑量干預(yù)組(簡稱低E干預(yù)組)、EGCG高劑量干預(yù)組(簡稱高E干預(yù)組)以及EGCG組,每組10只。低E干預(yù)組灌胃25 mg/kg EGCG,高E干預(yù)組及EGCG組灌胃100 mg/kg EGCG,空白組及AFB1組則灌胃0.5 mL雙蒸水,每天1次,持續(xù)5 d。AFB1組、低E和高E干預(yù)組于第6天單劑量腹腔注射AFB12 mg/kg,空白組及EGCG組則予以等量雙蒸水腹腔注射,染毒后各組大鼠繼續(xù)以EGCG或雙蒸水繼續(xù)灌胃。所有大鼠于AFB1給藥48 h后稱量大鼠終體質(zhì)量,腹腔注射1%苯巴比妥麻醉后打開腹腔腹主靜脈取血,取血后迅速移除肝臟并用預(yù)冷生理鹽水清洗后吸干稱重,剪肝大葉一塊約0.5 cm×0.5 cm×1 cm大小的組織浸泡在福爾馬林溶液中,充分固定后用于組織病理學(xué)研究,其余肝組織則用凍存管分裝后于液氮急凍,保存于-80℃超低溫冰箱保存?zhèn)溆谩?/p>
1.4 指標(biāo)與方法 臟器指數(shù)計(jì)算:肝指數(shù)(%)=肝濕質(zhì)量/體質(zhì)量×100%;脾指數(shù)(%)=脾濕質(zhì)量/體質(zhì)量×100%;腎指數(shù)(%)=腎濕質(zhì)量/體質(zhì)量×100%。血清肝功能指標(biāo)的測定:所取血樣靜置約1 h,3 500 r/min、4℃離心10 min分離制備血清。用日立自動(dòng)生化分析儀檢測血清中丙氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(ALT)、門冬氨酸氨基轉(zhuǎn)移酶(AST)和堿性磷酸酶(ALP)、總膽紅素(TBIL)、直接膽紅素(DBIL)含量。肝組織病理學(xué)檢驗(yàn)(HE染色):肝組織在福爾馬林溶液中充分固定后,經(jīng)過脫水、浸蠟、石蠟包埋、切片、撈片、烤片、脫蠟、復(fù)水、蘇木素染色、洗脫、伊紅復(fù)染、清洗、晾片、封片一系列步驟后,通過光學(xué)顯微鏡觀察肝組織結(jié)構(gòu)及其病理變化。肝組織抗氧化指標(biāo)的測定:取適量肝臟組織,用電動(dòng)勻漿機(jī)進(jìn)行勻漿,按試劑盒說明書對CAT、GSH、SOD水平進(jìn)行測定;取適量血清,按試劑盒說明書對MDA水平進(jìn)行測定。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法 數(shù)據(jù)采用SPSS 19.0統(tǒng)計(jì)分析,計(jì)量資料用±s表示,多組間比較采用單因素方差分析,分析前先檢查方差齊性,方差齊時(shí)采用最小顯著差法,方差不齊時(shí)采用Tamhane′s法,P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 大鼠存活及生長狀況 實(shí)驗(yàn)期間各組大鼠均無死亡。空白組大鼠毛色正常、順滑有光澤,正?;顒?dòng),精神狀態(tài)、食欲良好;AFB1組大鼠精神萎靡,毛色黯淡,活躍度及食欲有所下降;而EGCG干預(yù)組大鼠與AFB1組相比,生長狀況有不同程度的改善;EGCG組與空白組相比,沒有變化。
2.2 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠的體質(zhì)量變化及臟器指數(shù)的影響 與空白組比較,EGCG組沒有變化,但AFB1組大鼠不僅體質(zhì)量顯著降低(P<0.05),而且肝、脾、腎指數(shù)明顯升高(P< 0.05);與AFB1組比較,EGCG干預(yù)組體質(zhì)量明顯升高,肝、脾、腎指數(shù)明顯降低(P<0.05);EGCG組與空白組相比,體質(zhì)量、脾、腎指數(shù)沒有變化,見表1。
2.3 大鼠肝組織病理學(xué)變化(HE染色) 各組肝組織病理學(xué)HE染色代表圖見圖1。空白組大鼠的肝組織結(jié)構(gòu)正常,肝小葉的構(gòu)造完好清晰,肝細(xì)胞以中央門靜脈為核心呈放射狀整齊排列,肝細(xì)胞多呈多邊形,邊緣清晰,細(xì)胞核呈圓形,位于細(xì)胞中心,核仁清晰,胞質(zhì)均勻;與空白組相比,AFB1組大鼠的肝小葉結(jié)構(gòu)損傷嚴(yán)重,肝小葉內(nèi)可見散在肝細(xì)胞點(diǎn),同時(shí)出現(xiàn)了點(diǎn)片狀壞死,匯管區(qū)明顯增大且炎癥細(xì)胞浸潤嚴(yán)重,核大,有的可見雙核,細(xì)胞形態(tài)各異、大小不均;EGCG干預(yù)組的肝組織切片顯示,雖各劑量干預(yù)組均可見不同程度的病變,但其肝小葉結(jié)構(gòu)都已基本恢復(fù)正常,肝細(xì)胞索排列規(guī)則,肝細(xì)胞變性及腫脹程度明顯減輕,匯管區(qū)炎癥浸潤明顯得到了抑制,低E干預(yù)組效果優(yōu)于高E干預(yù)組;EGCG組相對于空白組沒有差異。由此可見,EGCG可以減輕AFB1所致大鼠的急性肝損傷,同時(shí)表明100 mg/kg EGCG對大鼠肝臟無影響。
表1 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠體質(zhì)量及臟器指數(shù)影響Tab.1 Effect of EGCG on body weight and visceral index of AFB1induced acute liver injury in rats(n=10) ±s
表1 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠體質(zhì)量及臟器指數(shù)影響Tab.1 Effect of EGCG on body weight and visceral index of AFB1induced acute liver injury in rats(n=10) ±s
注:與空白組比較,aP<0.05;與AFB1組比較,bP<0.05
組別空白組AFB1組低E干預(yù)組高E干預(yù)組EGCG組體質(zhì)量244.90±11.69 225.60±13.72a 228.30±6.80a 236.3±14.01 242.3±3.83b肝指數(shù)0.029±0.001 0.033±0.002a 0.030±0.002b 0.029±0.002b 0.027±0.001ab脾指數(shù)0.002 1±0.000 4 0.002 6±0.000 4a 0.002 4±0.000 3a 0.002 2±0.000 4b 0.002 3±0.000 3腎指數(shù)0.007 5±0.000 5 0.008 5±0.000 7a 0.007 6±0.000 5b 0.007 5±0.000 3b 0.007 4±0.000 5b
圖1 EGCG抗AFB1致大鼠急性肝損傷作用的病理學(xué)觀察Fig.1 Pathological observation on the effect of EGCG on acute liver injury induced by AFB1in rats(HE staining,×200)
2.4 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠血清肝功能的影響 AFB1染毒后,大鼠肝功能指標(biāo)ALT、AST、TBIL、DBIL、ALP相較于空白組均有明顯升高(P<0.05),而EGCG各劑量干預(yù)后可顯著降低AFB1對大鼠肝臟的損傷作用,其肝功能指標(biāo)明顯好轉(zhuǎn)(與AFB1組相比,P<0.05)。EGCG組與空白組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見表2。
表2 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠血清ALT、AST、TBIL、DBIL、ALP的影響Tab.2 Effect of EGCG on serum ALT,AST,TBIL,DBIL and ALP in rats with acute liver injury induced by AFB1(n=10)±s
表2 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠血清ALT、AST、TBIL、DBIL、ALP的影響Tab.2 Effect of EGCG on serum ALT,AST,TBIL,DBIL and ALP in rats with acute liver injury induced by AFB1(n=10)±s
注:與空白組比較,aP<0.05;與AFB1組比較,bP<0.05
組別空白組AFB1組低E干預(yù)組高E干預(yù)組EGCG組ALT(U/L)53.80±6.91 4 184.00±364.53a 2 639.00±346.54ab 1 908.00±246.98ab 55.80±6.80b AST(U/L)111.10±10.38 5 422.20±265.70a 3 536.20±282.88ab 2 513.10±449.24ab 128.10±21.11b TBIL(μmol/L)2.27±0.34 33.75±3.41a 21.10±3.79ab 13.97±3.29ab 2.47±0.51b DBIL(μmol/L)0.68±0.18 20.55±2.36a 12.66±2.04ab 5.81±2.13ab 0.54±0.26b ALP(U/L)226.60±39.17 461.00±20.26a 321.30±33.56ab 282.80±35.18ab 277.20±60.49b
2.5 EGCG對AFB1所致急性肝損傷大鼠抗氧化能力的影響 AFB1染毒可致大鼠抗氧化能力明顯下降,與空白組相比其肝組織CAT、GSH、SOD水平降低(P<0.05),血清MDA水平升高(P<0.05);EGCG干預(yù)后其抗氧化能力有所恢復(fù),與AFB1組相比大鼠肝組織CAT、GSH、SOD水平增高(P<0.05),血清MDA水平降低(P<0.05)。EGCG組與空白組比較,差異無統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見表3。
表3 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠肝組織CAT、GSH、SOD及血清MDA水平的影響Tab.3 Effect of EGCG on SOD and MDA levels in liver tissue of AFB1induced acute liver injury in rats(n=10) ±s
表3 EGCG對AFB1致急性肝損傷大鼠肝組織CAT、GSH、SOD及血清MDA水平的影響Tab.3 Effect of EGCG on SOD and MDA levels in liver tissue of AFB1induced acute liver injury in rats(n=10) ±s
注:與空白組比較,aP<0.05;與AFB1組比較,bP<0.05
組別空白組AFB1組低E干預(yù)組高E干預(yù)組EGCG組CAT(U/mg prot)82.44±4.34 48.55±11.06a 66.11±12.24ab 68.09±9.94ab 79.48±7.13b GSH(μmol/L)2 203.05±207.29 1 145.97±260.36a 1 495.49±213.60ab 1 712.04±159.34ab 2 421.03±294.74b SOD(U/mg prot)390.32±26.03 295.67±32.37a 362.15±49.86b 373.37±42.43b 395.36±56.92b血清MDA(nmol/mL)2.14±0.23 8.93±2.08a 4.90±2.56b 4.60±1.67ab 2.44±0.22b
肝癌是世界上第6大最常見的癌癥,也是全世界癌癥死亡的3大主要原因之一[10]。據(jù)報(bào)道,我國每年約有38.3萬人死于肝癌,是全世界肝癌死亡病例數(shù)的51%,且發(fā)病和死亡水平居高不下,對居民生命健康危害極大,嚴(yán)峻的局勢給我國社會及醫(yī)療帶來了沉重的負(fù)擔(dān)[11]。流行病學(xué)研究表明,AFB1污染誘發(fā)的肝癌易發(fā)生于氣候炎熱潮濕的發(fā)展中國家,如東南亞地區(qū)以及撒哈拉以南的非洲地區(qū);在我國則呈現(xiàn)出南高北低的現(xiàn)象。實(shí)驗(yàn)研究證明,EGCG可從誘導(dǎo)凋亡、周期阻滯、信號傳導(dǎo)、抑制腫瘤侵襲等多方面多途徑多靶點(diǎn)地抑制腫瘤的增殖和轉(zhuǎn)移,從而安全有效地預(yù)防腫瘤發(fā)生。HAN等[12]的實(shí)驗(yàn)通過EGCG在氧化應(yīng)激作用機(jī)制下活化Nrf2信號通路,抑制了砷引起的肝臟病理損傷及氧化損傷,表明EGCG具有較好的預(yù)防化學(xué)性肝損傷作用。EGCG是從綠茶中提取的一種具備高效生物活性、無毒無害的化合物,是天然的自由基清除劑和抗氧化劑[13],更是成為腫瘤預(yù)防藥物的安全選擇,且目前已廣泛應(yīng)用于食品、醫(yī)藥、保健等領(lǐng)域。
研究證實(shí)ALT、AST是存在于肝細(xì)胞漿內(nèi)的可溶性酶,當(dāng)肝組織、肝細(xì)胞遭受損害時(shí),細(xì)胞膜通透性增加,ALT、AST釋放入血,故血清ALT、AST水平的高低可反映肝細(xì)胞損傷程度[14]。在本實(shí)驗(yàn)中,使用EGCG進(jìn)行干預(yù)后的AFB1染毒大鼠,能夠有效降低血清中ALT、AST水平,這表明EGCG能夠起到干預(yù)AFB1所致肝損傷的作用??寡趸烙到y(tǒng)包括內(nèi)源性和外源性兩大部分,內(nèi)源性防御系統(tǒng)主要包括SOD、CAT、血紅素加氧酶和非酶低分子量清除劑(如GSH),外源性防御系統(tǒng)為抗氧化劑,根據(jù)其來源可分為天然抗氧化劑(如類胡蘿卜素,飲食為主要來源),及由工業(yè)合成的合成抗氧化劑(如n?乙酰半胱氨酸),兩大系統(tǒng)的共同作用能夠維持或重建氧化還原穩(wěn)態(tài)[15]。AFB1致肝損傷的發(fā)病機(jī)制與氧化應(yīng)激密切相關(guān),肝臟酶系在代謝過程中生成大量自由基,而這些自由基又可直接攻擊細(xì)胞中的蛋白質(zhì)、DNA等,其中脂質(zhì)過氧化是自由基介導(dǎo)損傷的主要表現(xiàn)之一,細(xì)胞抗氧化酶水平降低,引起機(jī)體氧化應(yīng)激損傷[16-17]。MDA是脂質(zhì)過氧化過程中的重要產(chǎn)物,它反映了體內(nèi)脂質(zhì)過氧化的氧化程度和細(xì)胞遭受自由基損傷的程度;SOD為最重要的抗氧化酶之一,有著防止細(xì)胞氧化損傷的作用;GSH、CAT能夠間接地反映機(jī)體細(xì)胞受自由基攻擊的嚴(yán)重程度[18-19]。
本實(shí)驗(yàn)降低了AFB1染毒大鼠血清MDA水平,同時(shí)提高了肝組織CAT、SOD和GSH水平,提示EGCG能夠起到干預(yù)AFB1所致肝損傷的作用,其機(jī)制可能為在內(nèi)源性和外源性防御系統(tǒng)的共同作用下,提高了體內(nèi)自由基清除劑水平及抗氧化酶的活性,阻止了脂質(zhì)過氧化過程,從而影響膜流動(dòng)性、破壞了膜蛋白,通過減少氧化應(yīng)激保護(hù)了機(jī)體免受氧自由基的攻擊,但其具體分子作用機(jī)制尚需進(jìn)一步研究。
本研究初步揭示了EGCG對AFB1致大鼠急性肝損傷的干預(yù)作用與機(jī)制,為今后對AFB1致(亞)慢性肝損傷和肝癌的干預(yù)研究奠定了基礎(chǔ),也為今后預(yù)防AFB1肝損傷作用的膳食指導(dǎo)及其治療藥物的開發(fā)提供了理論依據(jù)。但本實(shí)驗(yàn)研究對象為動(dòng)物,所取標(biāo)本為動(dòng)物組織,與人體病理機(jī)制有一定差距,同時(shí)本實(shí)驗(yàn)未從分子機(jī)制上深入探討,從而未能從多方面驗(yàn)證EGCG干預(yù)AFB1所致肝損傷的效果。人體有效的臨床實(shí)驗(yàn)研究及分子機(jī)制有待進(jìn)行,方可進(jìn)一步驗(yàn)證EGCG對AFB1所致肝損傷的干預(yù)效果。
[1] SHENTSOVA E S,LYTKINA L I,SHEVTSOV A A.Reduc?tion of the content of aflatoxin?forming fungi in contaminated grains by methods of hydrothermal treatmen[J].Gig Sanit,2015,94(9):64?67.
[2] ZHAO C,LI C,LIU S,et al.The galloyl catechins contribut?ing to main antioxidant capacity of tea made from Camellia sinensis in China[J].Sci World J,2014,2014(4):863984.
[3] SHARMA R,SHARMA A,KUMAR A,et al.Consumption of green tea epigallocatechin?3?gallate enhances systemic immune response,antioxidative capacity and HPA axisfunctions in aged male swiss albino mice[J].Biogerontology,2017,18(1):1?16.
[4] ANDREIA G,MARINA P,SALETTE R.Epigallocatechin gal?late nanodelivery systems for cancer therapy[J].Nutrients,2016,8(5):307.
[5] 趙莉,覃媛,何艷華,等.EGCG通過抑制SIRT1表達(dá)抑制鼻咽癌細(xì)胞增殖[J].實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2014,30(10):1544?1547.
[6] WU D.Green tea EGCG,T?cell function,and T?cell?mediated autoimmune encephalomyelitis[J].J Invest Med,2016,64(8):1213?1219.
[7] SINGH N A,MANDAL A K A,KHAN Z A.Potential neuro?protective properties of epigallocatechin?3?gallate(EGCG)[J].Nutr J,2015,15(1):1?17.
[8] SUN T L,LIU Z,QI Z J,et al.(?)?Epigallocatechin?3?gallate(EGCG)attenuates arsenic?induced cardiotoxicity in rats[J].Food Chem Toxicol,2016,93:102?110.
[9] SAMUEL L,MARION R,LACTITIA F,et al.Epigallocate?chin gallate:a review of its beneficial properties to prevent met?abolic syndrome[J].Nutrients,2015,7(7):5443.
[10] TORRE L A,BRAY F,SIEGEL R L,et al.Global cancer sta?tistics,2012[J].CA Cancer J Clin,2015,65(2):87?108.
[11] QIN H,LI H,ZHOU X,et al.Effect of superoxide and inflam?matory factor on aflatoxin B1 triggeredhepatocellular carcinoma[J].Am J Transl Res,2016,8(9):4003?4008.
[12] HAN X D,ZHANG Y Y,WANG K L,et al.The involvement of Nrf2 in the protective effects of(?)?Epigallocatechin?3?gallate(EGCG)on NaAsO2?induced hepatotoxicity[J].Oncotarget,2017,8(39):65302?65312.
[13] CHAKRAWARTI L,AGRAWAL R,DANG S,et al.Therapeu?tic effects of EGCG:a patent review[J].Expert Opin Ther Pat,2016,26(8):907?916.
[14] YANG X Z,GEN A W,XIAN J C.Diagnostic value of various noninvasive indexes in the diagnosis of chronic hepatic fibrosis[J].Eur Rev Med Pharmacol Sci,2018,22(2):479?485.
[15] RADOMSKAL D M,BALAN B J.Angiogenesis modulation by exogenous antioxidants[J].Cent Eur J Immunol,2017,42(4):370?376.
[16] UNSAL V,BELGEKURUTAS E.Experimental Hepatic Carci?nogenesis:Oxidative Stress and Natural Antioxidants[J].Open Access Maced J Med Sci,2017,5(5):686.
[17] TAK E,PARK G C,KIM S H,et al.Epigallocatechin?3?gal?late protects against hepatic ischaemia?reperfusion injury by re?ducing oxidative stress and apoptotic cell death[J].J Int Med Res,2016,44(6):1248.
[18] YILMAZ S,KAYA E,COMAKLI S.Vitamin E(α tocopherol)attenuates toxicity and oxidative stress induced by aflatoxin in rats[J].Adv Clin Exp Med,2017,26(6):907?917.
[19] SINGH K B,MAURYA B K,TRIGUNR S K.Activation of oxi?dative stress and inflammatory factors could account for histo?pathological progression of aflatoxin?B1 induced hepatocarcino?genesis in rat[J].Mol Cell Biochem,2015,401(1?2):185?196.