周達(dá),王晶,李冰航,孫超,陳源文,范建高
脯氨酰寡肽酶(prolyloligopeptidase,POP,EC 3.4.21.26)是一種能特異性水解不多于30~40個(gè)氨基酸短肽中脯氨酸殘基羧基端肽鍵的絲氨酸蛋白酶,如水解血管緊張素、P物質(zhì)、胸腺素β4等[1]。POP通過(guò)水解酶活性或與其他蛋白間相互作用在體內(nèi)發(fā)揮重要的生理功能,參與多肽的生成與代謝、細(xì)胞增殖與分化、體內(nèi)炎癥與代謝等[2,5]。更為重要的是,與其他組織相比,肝臟內(nèi)POP的活性是最高的,同時(shí)肝內(nèi)還存在如輔酶A這樣能夠調(diào)節(jié)POP活性的內(nèi)源性物質(zhì),提示其在肝內(nèi)可能具有重要的病理生理功能[4,6,7]。已有研究顯示POP參與肝內(nèi)炎癥及肝細(xì)胞的增殖和分化,肝細(xì)胞內(nèi)POP活力與肝細(xì)胞增殖和分化成熟密切相關(guān)[7-9],而肝內(nèi)POP活性降低導(dǎo)致的N-乙?;?絲氨酸-天冬氨酸-賴(lài)氨酸 -脯氨酸(N-acetyl-seryl aspartyl-lysyl-proline,Ac-SDKP)生成不足,是肝內(nèi)持續(xù)炎癥反應(yīng)、肝細(xì)胞損傷和細(xì)胞外基質(zhì)過(guò)度沉積的關(guān)鍵因素[10-13]。肝臟炎癥和纖維化的發(fā)生發(fā)展機(jī)制復(fù)雜,至今仍無(wú)有效的治療方法[14]。肝星狀細(xì)胞(hepatic stellate cell,HSC)是肝纖維化發(fā)生發(fā)展的關(guān)鍵因素,大鼠HSC-T6細(xì)胞系性能穩(wěn)定,可連續(xù)傳代,已被廣泛應(yīng)用于實(shí)驗(yàn)研究[15]。本研究應(yīng)用S17092抑制HSC內(nèi)POP活性,了解POP在HSC生物學(xué)功能發(fā)揮及其對(duì)肝臟炎癥和纖維化發(fā)生相關(guān)基因的影響,以期探索POP在肝臟炎癥和纖維化發(fā)生發(fā)展中的作用。
1.1 細(xì)胞培養(yǎng) 大鼠HSC-T6細(xì)胞購(gòu)自中國(guó)科學(xué)院上海生命科學(xué)研究院細(xì)胞資源中心。根據(jù)實(shí)驗(yàn)需要,取HSC-T6以適當(dāng)密度接種于不同大小培養(yǎng)皿中,培養(yǎng)液為10%FBS/DMEM培養(yǎng)基(血清和培養(yǎng)基購(gòu)自GIBCO,USA),置于含5%CO2孵育箱中,培養(yǎng)細(xì)胞處于良好生長(zhǎng)狀態(tài)時(shí)進(jìn)行下列相關(guān)實(shí)驗(yàn)。選擇 S17092(購(gòu)自 Sigma-Aldrich,USA)作為 POP 酶抑制劑[7]。
1.2 細(xì)胞內(nèi)Ac-SDKP檢測(cè) 采用ELISA法檢測(cè),取HSC-T6 細(xì)胞,加入 S17092(0、5、10 μg/ml)共孵育24 h,按試劑盒說(shuō)明書(shū)(購(gòu)自SPI Bio and CEA,France),先使用 RIPA(含 10 μmol/l卡托普利和 1 mmol/l PMSF)裂解細(xì)胞,隨后進(jìn)行HSC內(nèi)Ac-SDKP濃度測(cè)定。通過(guò)各組細(xì)胞數(shù)校正Ac-SDKP終濃度,計(jì)算出每 1×106個(gè)細(xì)胞中 Ac-SDKP的量,以nM/106表示。
1.3 細(xì)胞增殖檢測(cè) 將HSC-T6(約1×103)接種于96 孔板,與不同濃度的 S17092(0、5、10、25、50、100 μg/ml)共孵育24 h和48 h,每個(gè)濃度設(shè)置5個(gè)復(fù)孔,每孔加入新鮮培養(yǎng)液100μl,同時(shí)設(shè)立空白對(duì)照組。隨后每孔加入CCK-8試劑10μl,避光37℃孵育 2 h,在酶標(biāo)儀(uQuant,Biotek,USA)測(cè)定每孔450 nm處吸光度(OD值)。計(jì)算48 h每個(gè)濃度下細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率,抑制率=(1-處理組吸光度/對(duì)照組吸光度)×100%,所有組別吸光度均先減去空白孔吸光度。
1.4 細(xì)胞凋亡檢測(cè) 取HSC-T6細(xì)胞,與S17092(0、5、10μg/ml)共孵育24 h,使用不含EDTA的胰酶(購(gòu)自GIBCO,USA)消化提取細(xì)胞。使用流式細(xì)胞儀檢測(cè)HSC-T6凋亡,具體步驟參照AnnexinVPE/7-AAD凋亡試劑盒說(shuō)明書(shū)(Becton-Dickinson,USA)進(jìn)行。
1.5 基因轉(zhuǎn)錄檢測(cè) 采用實(shí)時(shí)定量PCR法檢測(cè),取HSC-T6,經(jīng) S17092(0、5、10μg/ml)孵育 24 h,采用Trizol(Takara)法提取RNA,并測(cè)定其濃度和純度。應(yīng)用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒將其逆轉(zhuǎn)錄為cDNA(primescriptRTmaster mix,Takara),采用實(shí)時(shí)熒光定量 PCR 法(SYBR Premix Ex Taq,Takara,儀器為Biosystems7500 Real-timePCR system)檢測(cè)轉(zhuǎn)化生長(zhǎng)因子 -β1(transforminggrowth factor β,TGF-β1)、α-平滑肌肌動(dòng)蛋白(α smooth muscle actin,α-SMA)、單核細(xì)胞趨化蛋白-1(monocyte chemoattractant protein 1,MCP-1)、Ⅰ型膠原(collagen I,Col I)相關(guān)基因mRNA水平,各設(shè)3個(gè)復(fù)孔,各基因引物由生工生物工程(上海)股份有限公司合成(表1),其相對(duì)水平(RQ 值)以 2-ΔΔCt表示。
表1 Realtime-PCR引物序列
1.6 蛋白表達(dá)檢測(cè) 采用Western blot法,取HSC-T6,經(jīng) S17092(0、5、10μg/ml)孵育 24 h,使用1 mmol/L的RIPA+PMSF提取細(xì)胞蛋白(購(gòu)自碧云天生物技術(shù)有限公司),采用BCA法(碧云天生物技術(shù)有限公司)測(cè)定各組蛋白濃度。隨后,進(jìn)行SDS-PAGE電泳,轉(zhuǎn)膜,5%BSA封閉2 h,加各目的蛋白一抗孵育(4℃過(guò)夜),1×TBST洗膜10~15 min×3次,加二抗孵育 1~2 h,1×TBST洗膜 10~15 min×3次,最后使用辣根過(guò)氧化物酶法檢測(cè)(購(gòu)自 Millipore Corporation,Billerica,USA),使用 Image Lab分析蛋白顯影條帶??筆OP、抗TGF-β1、抗α-SMA抗體均購(gòu)自 Sigma-Aldrich公司,抗p-Smad2/3抗體購(gòu)自巴傲得生物科技有限公司,Smad7和PPAR-γ購(gòu)自生工生物工程上海股份有限公司,相關(guān)二抗和Westernblot相關(guān)試劑購(gòu)自碧云天生物技術(shù)有限公司。
1.7 統(tǒng)計(jì)學(xué)分析 應(yīng)用SAS(Release 8.02 TS Level 02M0,NC,USA)統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)處理,計(jì)量資料以±s表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn),對(duì)方差不齊或非正態(tài)分布的計(jì)量資料以M(IQR)表示,采用秩和檢驗(yàn)。以P<0.05表示差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2.1 細(xì)胞增殖和細(xì)胞內(nèi)Ac-SDKP水平變化 經(jīng)過(guò)不同濃度的S17092抑制POP酶活性后,發(fā)現(xiàn)HSC內(nèi)Ac-SDKP水平較對(duì)照組顯著下降,其中10μg/ml S17092處理后下降約 50%(圖 1A);50 μg/ml和100 μg/ml S17092對(duì)HSC-T6細(xì)胞呈現(xiàn)明顯的細(xì)胞毒性,而與對(duì)照組相比,低濃度組(5、10、25μg/ml) 則能抑制 HSC-T6 增殖 (圖 1B),25μg/ml濃度組作用48 h時(shí)HSC增殖抑制率達(dá)40%(圖 1C)。
圖1 HSC-T6細(xì)胞生長(zhǎng)抑制率
2.2 POP抑制劑對(duì)HSC-T6細(xì)胞凋亡及其相關(guān)基因水平的影響 經(jīng)流式細(xì)胞儀檢測(cè)發(fā)現(xiàn),雖然低濃度S17092(5、10μg/ml)組細(xì)胞凋亡比例較對(duì)照組稍增多,但差異無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(圖2A);HSC-T6經(jīng)過(guò)S17092(5、10μg/ml)處理 24 h 后,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞 MCP-1和α-SMA mRNA水平較對(duì)照組明顯升高,MCP-1 mRNA在10μg/ml濃度組較對(duì)照組升高約1.5倍,α-SMA mRNA在10μg/ml處理組較對(duì)照組升高約2倍,各組TGF-β1和Col I基因水平無(wú)顯著性差異(圖2B)。
圖2 HSC-T6細(xì)胞凋亡及其相關(guān)基因變化
2.3 POP抑制劑對(duì)HSC-T6細(xì)胞炎癥和纖維化因子蛋白表達(dá)的影響 HSC-T6經(jīng)過(guò) S17092(5、10μg/ml)處理24 h后,發(fā)現(xiàn)細(xì)胞α-SMA蛋白表達(dá)較對(duì)照組升高,10μg/ml處理組較對(duì)照組表達(dá)增加約1.5倍;Smad7和PPAR-γ較對(duì)照組顯著下降,在10μg/ml處理組分別較對(duì)照組下降約50%以上和10%左右,各組細(xì)胞POP、TGF-β1和p-Smad2/3蛋白表達(dá)無(wú)顯著性差異(圖3)。
圖3 HSC-T6細(xì)胞炎癥和纖維化相關(guān)蛋白表達(dá)變化
本研究結(jié)果提示POP在HSC細(xì)胞可能具有重要的病理生理功能,并與肝臟炎癥及纖維化發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。POP可調(diào)節(jié)HSC分泌炎性因子MCP-1及分泌抗纖維化短肽Ac-SDKP,并通過(guò)調(diào)節(jié)Smad7和PPAR-γ的表達(dá)調(diào)控HSCs內(nèi)TGF-β-Smad信號(hào)通路。
首先,Ac-SDKP為POP水解胸腺素β4(Tβ4)的產(chǎn)物[16]。一方面,POP抑制劑處理組細(xì)胞內(nèi)Ac-SDKP水平顯著下降,提示S17092成功抑制了HSC胞內(nèi)POP酶活性;另一方面,大量研究證實(shí)Ac-SDKP抗機(jī)體實(shí)質(zhì)器官包括心、肝、腎、肺等纖維化作用顯著[10,17-21]?;诖耍琍OP是否通過(guò)調(diào)節(jié)細(xì)胞內(nèi)Ac-SDKP水平而發(fā)揮抗肝纖維化作用值得進(jìn)一步探討和驗(yàn)證。我們課題組在前期研究工作中已闡明Ac-SDKP在對(duì)抗四氯化碳誘導(dǎo)的肝纖維化及對(duì)抗膽總管結(jié)扎誘導(dǎo)的肝纖維化發(fā)病過(guò)程中作用顯著[10,17]。前期研究結(jié)果顯示Ac-SDKP可以抑制肝內(nèi)TGF-β1及Smad2表達(dá),而對(duì)Smad7無(wú)顯著影響,可通過(guò)直接調(diào)節(jié)TGF-β1-p-Smad2/3通路抑制肝纖維化。本研究的靶標(biāo)為POP,通過(guò)直接干預(yù)POP酶活性,發(fā)現(xiàn)HSC-T6細(xì)胞內(nèi)TGF-β1-p-Samd2/3通路蛋白未發(fā)生顯著變化,而Smad7表達(dá)卻顯著降低。Smad7的主要作用之一為抑制TGF-β1-pamd2/3信號(hào)通路,發(fā)揮抗纖維化作用。綜合上述結(jié)果,提示POP除了酶解作用以外,還存在其他未知功能。已有研究提示POP除了水解酶功能外,還存在非酶功能,如可與其他蛋白相互結(jié)合,從而調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄[22,23]。Tenorio-Laranga J et al[4]通過(guò)對(duì)大鼠體內(nèi)POP進(jìn)行長(zhǎng)時(shí)間抑制,發(fā)現(xiàn)抑制組大鼠肝內(nèi)提取的肽成分與對(duì)照組大鼠相比顯著不同,這些改變的肽大部分源自線(xiàn)粒體,其功能主要是參與蛋白翻譯。因此,以POP為靶向的干預(yù)對(duì)肝纖維化的調(diào)控可能并不依賴(lài)于抗纖維化短肽Ac-SDKP。
其次,本研究發(fā)現(xiàn)POP被抑制時(shí),HSC-T6細(xì)胞生長(zhǎng)亦被抑制,即POP調(diào)控HSC-T6的增殖生長(zhǎng),可能與肝內(nèi)POP除了存在于胞質(zhì)外,還定位于胞核有關(guān)。核內(nèi)POP可能參與核轉(zhuǎn)運(yùn)和順?lè)串悩?gòu)酶的調(diào)節(jié),進(jìn)而調(diào)控細(xì)胞增殖[24]。我們既往的研究提示Ac-SDKP同樣可抑制HSCs增殖[10],與本研究結(jié)果相反,從側(cè)面反映POP這種直接調(diào)控細(xì)胞增殖作用與Ac-SDKP無(wú)明顯關(guān)系,更多的是通過(guò)其胞內(nèi)非酶作用調(diào)控基因轉(zhuǎn)錄所致。近年針對(duì)腫瘤細(xì)胞研究顯示POP抑制劑阻礙細(xì)胞生長(zhǎng)通過(guò)減少pRb和Ki-67蛋白的表達(dá)而增加p53、p27kip1和pRb2/p130 的表達(dá)[3,25]。因此,POP 抑制劑調(diào)控 HSCs增殖的具體機(jī)制還值得進(jìn)一步探索。
肝纖維化主要表現(xiàn)為肝內(nèi)炎癥及細(xì)胞外基質(zhì)沉積,HSCs起著至關(guān)重要的作用[26]。我們的研究結(jié)果顯示,當(dāng)HSCs胞內(nèi)POP活性被抑制時(shí)可以引起α-SMA和MCP-1表達(dá)增高及PPAR-γ下調(diào)。α-SMA為活化HSC的標(biāo)志蛋白,MCP-1為HSC分泌的主要促炎促纖維化的因子[27],同時(shí)PPAR-γ為HSCs處于非活化狀態(tài)即靜止儲(chǔ)脂狀態(tài)的標(biāo)志蛋白,PPAR-γ還可以抑制HSCs的活化[28,29]。上述這些關(guān)鍵蛋白表達(dá)的變化提示當(dāng)HSCs內(nèi)POP被抑制時(shí)可以促進(jìn)其致纖維化作用,這一效應(yīng)是由于POP水解活性降低導(dǎo)致其下游產(chǎn)物Ac-SDKP減少所致,還是POP自身通過(guò)蛋白-蛋白相互作用所致,仍有待進(jìn)一步探索,但不管何種機(jī)制,都說(shuō)明POP或其下游產(chǎn)物Ac-SDKP均可抑制HSCs活性而有助于減輕肝纖維化[30]。
總之,POP在肝內(nèi)的具體功能尚不清楚,尤其是POP自身與其下游產(chǎn)物Ac-SDKP的生物學(xué)效應(yīng)和POP的非酶解功能還需要研究[31]。同時(shí),尚需進(jìn)一步行體內(nèi)實(shí)驗(yàn)驗(yàn)證以POP為靶向的干預(yù)有無(wú)改善纖維化的作用。但總得來(lái)說(shuō),本研究通過(guò)POP抑制劑初步揭示了POP這一蛋白酶對(duì)HSCs的調(diào)節(jié)作用,其在抗肝纖維化方面的作用值得進(jìn)一步探討。
【參考文獻(xiàn)】
[1]Babkova K,Korabecny J,Soukup O,et al.Prolyl oligopeptidase and its role in the organism:attention to the most promising and clinically relevant inhibitors.Future Med Chem,2017,9(10):1015-1038.
[2]Penttinen A,Tenorio-Laranga J,Siikanen A,et al.Prolyl oligopeptidase:a rising star on the stage of neuroinflammation research.CNS Neurol Disord Drug Targets,2011,10(3):340-348.
[3]Suzuki K,Sakaguchi M,Tanaka S,et al.Prolyl oligopeptidase inhibition-induced growth arrest of human gastric cancer cells.Biochem Biophys Res Commun,2014,443(1):91-96.
[4]Tenorio-LarangaJ,Mannisto PT,Storvik M,etal.Fourday inhibition of prolyl oligopeptidase causes significant changes in the peptidome ofratbrain,liver and kidney.Biochimie,2012,94(9):1849-1859.
[5]Maruyama Y,Matsubara S,Kimura AP.Mouse prolyl oligopeptidase plays a role in trophoblast stem cell differentiation into trophoblast giant cell and spongiotrophoblast.Placenta,2017,53:8-15.
[6]Yamakawa N,Shimeno H,Soeda S,et al.Inhibition of proline endopeptidase activity by acyl-coenzyme A esters.Biochim Biophys Acta,1990,1037(3):302-306.
[7]Zhou D,Li BH,Wang J,et al.Prolyl oligopeptidase inhibition attenuates steatosis in the L02 human liver cell line.Plos One,2016,11(10):e0165224.
[8]Yamakawa N,Shimeno H,Soeda S,et al.Regulation of prolyl oligopeptidase activity in regenerating rat liver.Biochim Biophys Acta,1994,1199(3):279-284.
[9]Matsubara Y,Ono T,Tsubuki S,et al.Transient up-regulation of a prolyl endopeptidase activity in the microsomal fraction of rat liver during postnatal development. Eur J Biochem,1998,252(1):178-183.
[10]Chen YW,Liu BW,Zhang YJ,et al.Preservation of basal AcSDKP attenuates carbon tetrachloride-induced fibrosis in the rat liver.J Hepatol,2010,53(3):528-536.
[11]周達(dá),陳源文,范建高.脯氨酰寡肽酶的肝內(nèi)生物學(xué)功能研究進(jìn)展. 胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志,2015,24(1):12-14.
[12]陳源文,董國(guó)芳,徐雷鳴,等.內(nèi)源性AcSDKP及其前體胸腺素β4在四氯化碳致肝纖維化發(fā)生早期的變化.胃腸病學(xué)和肝病學(xué)雜志,2010,19(1):6-9.
[13]Tenorio-Laranga J,Montoliu C,Urios A,et al.The expression levels of prolyl oligopeptidase responds not only to neuroinflammation but also to systemic inflammation upon liver failure in rat models and cirrhotic patients.J Neuroinflamm,2015,12(1):183.
[14]Zoubek ME,Trautwein C,Strnad P.Reversal of liver fibrosis:From fiction toreality.BestPractResClin Gastroenterol,2017,31(2):129-141.
[15]Shang H,Liu X,Guo H.Knockdown of Fstl1 attenuates hepatic stellate cell activation through the TGFbeta1/Smad3 signaling pathway.Mol Med Rep,2017,[Epub ahead of print].
[16]Kumar N,Nakagawa P,Janic B,et al.The anti-inflammatory peptide Ac-SDKP is released from thymosin-beta4 by renal meprin-alpha and prolyl oligopeptidase.Am J Physiol Renal Physiol,2016,310(10):F1026-1034.
[17]Zhang L,Xu LM,Chen YW,etal.Antifibrotic effectof N-acetyl-seryl-aspartyl-lysyl-proline on bile duct ligation induced liver fibrosis in rats.World J Gastroenterol,2012,18(37):5283-5288.
[18]Kanasaki K,Nagai T,Nitta K,et al.N-acetyl-seryl-aspartyl-lysyl-proline:a valuable endogenous anti-fibrotic peptide for combating kidney fibrosis in diabetes. Front Pharmacol,2014,5:70.
[19]Nagai T,Kanasaki M,Srivastava SP,et al.N-acetyl-seryl-aspartyl-lysyl-proline inhibits diabetes-associated kidney fibrosis and endothelial-mesenchymal transition.Biomed Res Int,2014,2014:696475.
[20]Xiaojun W,Yan L,HongX,etal.Acetylated alpha-tubulin regulated by N-acetyl-seryl-aspartyl-lysyl-proline(Ac-SDKP)exerts the anti-fibrotic effect in rat lung fibrosis induced by silica.Sci Rep,2016,6:32257.
[21]Hrenak J,Paulis L,Simko F.N-acetyl-seryl-aspartyl-lysylproline(Ac-SDKP):Potential target molecule in research of heart,kidney and brain.Curr Pharm Des,2015,21(35):5135-5143.
[22]Myohanen TT,Garcia-Horsman JA,Tenorio-Laranga J,et al.Issues about the physiological functions of prolyl oligopeptidase based on its discordant spatial association with substrates and inconsistencies among mRNA,protein levels,and enzymatic activity.J Histochem Cytochem,2009,57(9):831-848.
[23]Di Daniel E,Glover CP,Grot E,et al.Prolyl oligopeptidase binds to GAP-43 and functions without its peptidase activity.Mol Cell eurosci,2009,41(3):373-382.
[24]Myohanen TT,Venalainen JI,Garcia-Horsman JA,et al.Distribution of prolyl oligopeptidase in the mouse whole-body sections and peripheral tissues.Histochem Cell Biol,2008,130(5):993-1003.
[25]Sakaguchi M,Matsuda T,Matsumura E,et al.Prolyl oligopeptidase participates in cell cycle progression in a human neuroblastoma cell line.Biochem Biophys Res Commun,2011,409(4):693-698.
[26]Lee SJ.Mechanisms of fibrogenesis in liver cirrhosis:The molecular aspects of epithelial-mesenchymal transition.World J Hepatol,2014,6(4):207.
[27]Marra F,Tacke F.Roles for chemokines in liver disease.Gastroenterology,2014,147(3):577-594.
[28]Zardi EM,Navarini L,Sambataro G,et al.Hepatic PPARs:their role in liver physiology,fibrosis and treatment.Curr Med Chem,2013,20(27):3370-3396.
[29]Yu J,Zhang S,Chu ES,et al.Peroxisome proliferator-activated receptors gamma reverses hepatic nutritional fibrosis in mice and suppresses activation of hepatic stellate cells in vitro.Int J Biochem Cell Biol,2010,42(6):948-957.
[30]李兵航,李夢(mèng)婷,何玲楠,等.AcSDKP體外抑制脂多糖誘導(dǎo)的小鼠RAW264.7巨噬細(xì)胞促炎功能研究.實(shí)用肝臟病雜志,2017,20(2):142-147.
[31]王晶,周達(dá),丁永年,等.慢病毒介導(dǎo)脯氨酰寡肽酶過(guò)表達(dá)抑制硫代乙酰胺誘導(dǎo)的大鼠肝纖維化.實(shí)用肝臟病雜志,2015,18(2):168-172.