王崇義, 史訓(xùn)忠, 孫正林
(1. 寧海縣第一醫(yī)院檢驗(yàn)科,浙江 寧波 315600;2. 寧波大學(xué)醫(yī)學(xué)院附屬醫(yī)院檢驗(yàn)科,浙江 寧波 315020)
流行性腦脊髓膜炎(簡稱流腦)是由腦膜炎奈瑟菌(Neisseria meningitidis,Nm)引起的急性呼吸道傳染病,是危害人類呼吸道的傳染病之一。流腦的主要傳染源是帶菌者[1]。Nm的攜帶率與流腦的流行有重要的關(guān)系,帶菌率調(diào)查主要采用細(xì)菌培養(yǎng)法檢測[2]。增強(qiáng)對流腦病原菌的監(jiān)測,建立高效的Nm檢測方法對流腦的臨床診斷有重要的意義[3]。流腦的常規(guī)診斷方法是從腦脊液和血液中分離出病原菌,但患者使用抗菌藥物治療后,病原菌的陽性率會顯著下降,因此亟需一個(gè)敏感、高效的方法來解決傳統(tǒng)細(xì)菌培養(yǎng)法的缺陷[4]。為此,本研究探討了實(shí)時(shí)熒光定量聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)檢測Nm的臨床價(jià)值。
收集2010年1月—2016年12月寧??h第一醫(yī)院70例疑似流腦病例的雙份腦脊液標(biāo)本,1份采用細(xì)菌培養(yǎng)法進(jìn)行檢測,將標(biāo)本置于消毒試管內(nèi),接種于巧克力平板上;另1份采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR進(jìn)行檢測,需將標(biāo)本保存在生理鹽水中,置-20 ℃環(huán)境中。細(xì)菌培養(yǎng)法所用的儀器與試劑均購自法國生物梅里埃公司,lightcycler 480熒光定量PCR儀(瑞士羅士公司);K30破裂儀(寧波立誠公司),3111型CO2培養(yǎng)箱(美國Thermo公司),Nm熒光定量PCR檢測試劑盒(上海之江生物科技有限公司)。
1.2.1 細(xì)菌培養(yǎng)法 將腦脊液標(biāo)本接種于巧克力平板上,于5%~10%CO2環(huán)境中37 ℃培養(yǎng)24~72 h,選取Nm可疑菌落進(jìn)行鑒定、分型和藥物敏感性試驗(yàn)。
1.2.2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 對腦脊液標(biāo)本提取DNA,同時(shí)吸取180 μL標(biāo)本,置于1.5 mL離心管中,震蕩混勻,11 544×g離心2 min,去除上清。將100 μL DNA加入沉淀液中,充分混勻,再置沸水浴10 min。最后再對其11 544×g離心5 min,取上清4 μL進(jìn)行檢測。根據(jù)引物進(jìn)行反應(yīng)混合液的配制以及循環(huán)參數(shù)的設(shè)置,同時(shí)設(shè)置陽性和陰性對照。結(jié)果根據(jù)lightcycler 480熒光定量PCR儀和試劑盒說明書進(jìn)行評價(jià)。
采用SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)分析。計(jì)數(shù)資料以率表示,組間比較采用χ2檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
采用細(xì)菌培養(yǎng)法檢出Nm陽性49例,陽性率為70.00%;實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢出Nm陽性67例,陽性率為95.71%,其中有49例細(xì)菌培養(yǎng)法與實(shí)時(shí)熒光定量PCR均為陽性,有18例細(xì)菌培養(yǎng)法為陰性而實(shí)時(shí)熒光定量PCR為陽性。實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm的陽性率明顯高于細(xì)菌培養(yǎng)法(χ2=16.293 1,P=0.000 1)。見表1。
表1 實(shí)時(shí)熒光定量PCR與傳統(tǒng)細(xì)菌培養(yǎng)法檢測Nm的結(jié)果
實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm的特異性為100%,無假陰性結(jié)果,陽性預(yù)測值為73.13%,陰性預(yù)測值為0.00%。見表2。
表2 實(shí)時(shí)熒光定量PCR和細(xì)菌培養(yǎng)法的檢測結(jié)果[例(%)]
采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測10倍系列梯度稀釋的標(biāo)本,分析其敏感性。結(jié)果表明實(shí)時(shí)熒光定量PCR最低可以檢測到的Nm DNA濃度為103拷貝/mL。見圖1。
按照實(shí)驗(yàn)要求對選取的模板進(jìn)行10倍系列有效稀釋,并選取7個(gè)濃度(2×107~2×103拷貝/mL),同時(shí)采用實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測。結(jié)果表明在2×103~2×107拷貝/mL范圍內(nèi),與相應(yīng)的Ct值有較好的相關(guān)性(r值分別為0.999 9、0.999 6、0.999 5、0.999 7)。因此,實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm DNA的線性范圍為2×103~2×107拷貝/mL。
圖1 Nm實(shí)時(shí)熒光定量PCR曲線
流腦是一種嚴(yán)重影響患者健康的冬、春季急性傳染病,主要表現(xiàn)為發(fā)熱、嘔吐以及頭痛等臨床癥狀。有研究表明,由Nm引起的腦膜炎時(shí)常伴隨著較高的死亡率,因此受到臨床的重點(diǎn)關(guān)注[5]。流腦患者通常伴隨發(fā)熱以及頭痛等臨床癥狀,對患者的確診通常需要從患者的腦脊液和血液中分離出Nm。Nm是引起流腦的病原體,其主要寄居在患者上呼吸道內(nèi),是一種革蘭陰性雙球菌,對干燥、寒冷以及陽光環(huán)境都十分敏感。相關(guān)研究表明,Nm置于室溫中3 h就會死亡[6]。
傳統(tǒng)的細(xì)菌培養(yǎng)法檢測時(shí)間較長,Nm易在標(biāo)本運(yùn)輸過程中死亡,當(dāng)患者接受抗菌藥物治療以及受其他非特異性因素的影響時(shí),會引起細(xì)菌分離的失敗,降低細(xì)菌培養(yǎng)法的準(zhǔn)確性[7]。有研究表明,細(xì)菌培養(yǎng)法分離鑒定Nm的敏感性不高,因此采用敏感性更高的檢測方法變得十分重要且意義重大[8-9]。近年來,敏感性和特異性較高的實(shí)時(shí)熒光定量PCR已被廣泛應(yīng)用臨床檢測。該法的主要特點(diǎn)是:(1)采用了熒光標(biāo)記的特異性探針,增強(qiáng)了PCR擴(kuò)增的特異性[10];(2)采用Ct值定量結(jié)果,能夠有效地定量PCR擴(kuò)增指數(shù)增長期起始的拷貝數(shù),避免平臺效應(yīng)對結(jié)果的影響,增強(qiáng)方法的敏感性[11];(3)使用全封閉反應(yīng),不需要電泳等PCR后期處理,能有效避免PCR產(chǎn)物造成的假陽性污染;(4)檢測過程中進(jìn)行在線式實(shí)時(shí)監(jiān)測,測量結(jié)果直觀有效,自動化程度較高[12]。實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm的敏感性和特異性高,經(jīng)濟(jì)成本低,為Nm的檢測提供了重要的技術(shù)手段,為正常人群Nm帶菌率的調(diào)查提供了新的方法,也為暴發(fā)流行時(shí)快速、低成本的診斷提供了相應(yīng)的技術(shù)支持[13]。PCR技術(shù)能通過對流腦患者的腦脊液或血液標(biāo)本進(jìn)行擴(kuò)增,以擴(kuò)增出特異性DNA片段來診斷Nm感染[14]。實(shí)時(shí)熒光定量PCR應(yīng)用了較高的光譜技術(shù),同時(shí)應(yīng)用了高敏感性的儀器檢測熒光,因而熒光定量PCR檢測技術(shù)的敏感性、特異性與細(xì)菌培養(yǎng)法相比都有較大的提升[15]。由此可見,熒光定量PCR檢測技術(shù)的自動化程度及準(zhǔn)確度均較高,還能有效地解決污染問題,檢測時(shí)間短,在檢測某些臨床已使用抗菌藥物或保存不當(dāng)?shù)臉?biāo)本、監(jiān)控流腦的早期情況及疾病流行的實(shí)驗(yàn)室快速診斷方面均有十分廣闊的應(yīng)用前景[7]。
本研究結(jié)果顯示,實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm的陽性率(95.71%)顯著高于細(xì)菌培養(yǎng)法(70.00%),二者的陽性符合率為70.00%,2種方法完全符合49例,另有18例細(xì)菌培養(yǎng)法為陰性而實(shí)時(shí)熒光定量PCR為陽性。這一現(xiàn)象說明實(shí)時(shí)熒光定量PCR的敏感性比傳統(tǒng)的細(xì)菌培養(yǎng)法更高。同時(shí),本研究結(jié)果還表明,實(shí)時(shí)熒光定量PCR的特異性達(dá)100%,無假陰性結(jié)果。
綜上所述,實(shí)時(shí)熒光定量PCR檢測Nm的敏感性高、特異性強(qiáng),且快速、簡便,為流腦流行病學(xué)調(diào)查提供了一種快速、簡便的病原學(xué)診斷手段。
[1] 張力文,王宗潤,吳秀麗,等. 實(shí)時(shí)熒光定量PCR法檢測人糞便中雙歧桿菌方法的建立及評價(jià)[J]. 吉林大學(xué)學(xué)報(bào)(醫(yī)學(xué)版),2014,56(3):686-691.
[2]PEDERSEN K S,OKHOLM E,JOHANSEN M,et al. Clinical utility and performance of sock sampling in weaner pig diarrhoea[J]. Prev Vet Med,2015,120(3-4):313-320.
[3]熊長輝,楊夢,劉曉青,等. 腦膜炎奈瑟菌檢測及基因分群[J]. 中國公共衛(wèi)生,2015,31(5):578-580.
[4]TOCQUEVILLE V,F(xiàn)ERRé S,NGUYEN N H,et al. Multilocus sequence typing ofMycoplasma hyorhinisstrains identified by a real-time TaqMan PCR assay[J]. J Clin Microbiol,2014,52(5):1664-1671.
[5] 方莉,龍思琪,許媛,等. 實(shí)時(shí)熒光PCR法檢測耐甲氧西林金黃色葡萄球菌的研究[J]. 重慶醫(yī)學(xué),2013,42(32):3950-3951.
[6]NYMOEN D A,HETLAND FALKENTHAL T E,HOLTH A,et al. Expression and clinical role of chemoresponse-associated genes in ovarian serous carcinoma[J]. Gynecol Oncol,2015,139(1):30-39.
[7]KITAJIMA M,HATA A,YAMASHITA T,et al.Development of a reverse transcription-quantitative PCR system for detection and genotyping of aichi viruses in clinical and environmental samples[J]. Appl Environ Microbiol,2013,79(13):3952-3958.
[8] 牟成惠,宋妙芳,鐘逸雯,等. 實(shí)時(shí)熒光雙重PCR檢測610份珠江水霍亂弧菌結(jié)果分析[J]. 實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2012,28(15):2598-2600.
[9]TAKEDA M,F(xiàn)UNATO T,IKEMOTO M,et al.Clinical usefulness of the PAXgeneTMbone marrow RNA system for stabilizing total RNA[J]. J Clin Lab Anal,2015,29(1):61-67.
[10]張?jiān)娒?,尹小毛,劉非,? 基于gyrB序列Taqman實(shí)時(shí)熒光PCR檢測在MTC鑒定中的應(yīng)用[J]. 實(shí)用醫(yī)學(xué)雜志,2014,30(3):472-474.
[11]MARQUART L,BAKER M,O'ROURKE P,et al. Evaluating the pharmacodynamic effect of antimalarial drugs in clinical trials by quantitative PCR[J]. Antimicrob Agents Chemother,2015,59(7):4249-4259.
[12]程凱,余波,王建東,等. qRT-PCR檢測石蠟包埋組織microRNA的研究進(jìn)展[J]. 臨床與實(shí)驗(yàn)病理學(xué)雜志,2014,30(11):1273-1275.
[13]PEDERSEN K S,OKHOLM E,JOHANSEN M,et al. Clinical utility and performance of sock sampling in weaner pig diarrhoea[J]. Prev Vet Med,2015,120(3-4):313-320.
[14]YOU Y,YAO H,YOU B,et al. Clinical significance of HAX-1 expression in laryngeal carcinoma[J]. Auris Nasus Larynx,2015,42(4):299-304.
[15]M A S T O R A K I S,C H I M O N I D O U M,DIMITRAKOPOULOS L,et al. A rapid and accurate closed-tube methylation-sensitive high resolution melting analysis assay for the semi-quantitative determination of SOX17 promoter methylation in clinical samples[J]. Clin Chim Acta,2015,444:303-309.