李 超, 劉 敏, 劉志華
(中山大學(xué)附屬第六醫(yī)院結(jié)直腸外科, 廣東省胃腸病學(xué)研究所, 廣東 廣州 510655)
目前腸屏障功能調(diào)節(jié)的研究主要集中在益生菌及其活性成分、致病菌及相關(guān)成分和炎癥介質(zhì)等方面[1-2],對(duì)于其機(jī)制的研究仍有一定的局限[3]。微小RNA(microRNA,miRNA,miR)近幾年的研究主要集中在腫瘤[4-6]、心血管疾病[7]以及神經(jīng)系統(tǒng)疾病[8]等,而其對(duì)腸屏障功能的影響研究較少[9]。研究表明,miR-21可激活腸上皮細(xì)胞內(nèi)的絲裂原激活蛋白激酶(mitogen-activated protein kinase,MAPK)/細(xì)胞外信號(hào)調(diào)節(jié)激酶(extracellular signal-regulated kinase,ERK)信號(hào)通路,抑制第10號(hào)染色體缺失的磷酸酶-張力蛋白同源物(phosphatase and tensin homolog deleted on chromosome 10,PTEN)/磷脂酰肌醇3-激酶(phosphatidylinositol 3-kinase,PI3K)信號(hào)通路,且PTEN/PI3K信號(hào)通路活化被認(rèn)為參與了腸上皮機(jī)械屏障的調(diào)節(jié)[10]。miR-21是否通過其它途徑影響腸上皮機(jī)械屏障仍不明確。生物信息學(xué)分析表明,miR-21的預(yù)測(cè)靶基因包括Rho蛋白家族中的一些成員,如ROCK1。有研究表明,Rho蛋白家族中ROCK1參與調(diào)節(jié)緊密連接(tight junction,TJ)相關(guān)蛋白——閉合蛋白(occludin)的表達(dá)與沉積[11]。腸上皮機(jī)械屏障主要包括腸上皮細(xì)胞及細(xì)胞間緊密連接蛋白,occludin是重要的細(xì)胞間緊密連接蛋白。據(jù)此,我們假設(shè)miR-21可能通過靶向調(diào)控ROCK1而調(diào)節(jié)腸屏障功能相關(guān)蛋白o(hù)ccludin。在此基礎(chǔ)上,我們擬通過細(xì)胞水平上調(diào)或下調(diào)miR-21觀察腸上皮細(xì)胞的功能表型改變,進(jìn)而采用生物信息學(xué)方法預(yù)測(cè)miR-21的靶基因,并通過螢光素酶報(bào)告基因進(jìn)行驗(yàn)證。從而明確miR-21對(duì)腸屏障功能的影響,推測(cè)可能的機(jī)制。
人正常結(jié)腸上皮細(xì)胞系NCM460購于INCELL;人胚腎細(xì)胞株293T由中山大學(xué)附屬第六醫(yī)院胃腸病研究所提供。
NanoDrop 2000超微量分光光度計(jì)、CO2培養(yǎng)箱和生物安全柜(Thermo);ABI 7500熒光定量PCR儀和普通PCR儀(Applied Biosystems);Model 680酶標(biāo)儀和蛋白轉(zhuǎn)印系統(tǒng)(BIO-RAD);DMI4000B自動(dòng)智能數(shù)字相差熒光倒置顯微鏡(Leica);G:BOX/HR-E-M自動(dòng)凝膠成像系統(tǒng)(Syngene);倒置相差生物顯微鏡(Nikon);螢光素酶分析儀(BMG Labtech)。
胎牛血清(fetal bovine serum,F(xiàn)BS)和DMEM高糖培養(yǎng)基(Gibco);Lipofectamine 2000 Reagent、Opti-MEM培養(yǎng)基、TRIzol、RevertAid First Strand cDNA Synthesis Kit、miRNA qPCR Kit、Platinum PCR SuperMix-UDG、TaqMan MicroRNA Reverse Transcription Kit、PowerUpTMSYBR? Green Master Mix、高保真DNA聚合酶和T4 DNA鏈接酶(Invitrogen);兔抗ROCK1、 occludin和β-actin 多克隆抗體(CST); II抗和Wizard?基因組DNA純化試劑盒(弗德生物);Dual-Luciferase Reporter Assay System、EcoR V、NheI、HindIII、EcoR I和DpnI(Promega);DNA凝膠回收試劑盒(Tiangen);質(zhì)粒提取試劑盒(MN);KOD -Plus- Neo DNA Polymerase(TOYOBO);miR-21 mimics和inhibitors(廣州銳博生物)。所用引物及測(cè)序由Invitrogen公司根據(jù)設(shè)計(jì)合成。
3.1hsa-miR-21慢病毒載體的構(gòu)建 表達(dá)載體pGIPZ的酶切采用BamH I和XhoI完成。對(duì)酶切產(chǎn)物電泳,隨后回收產(chǎn)物片段,長(zhǎng)度約11 kb。擴(kuò)增目的基因所用引物設(shè)計(jì)如下,hsa-miR-21-BamH I-R: 5’-ATTCTGATCAGGATCCCTAAGTGCCACCAGACAGAAG-3’;hsa-miR-21-XhoI-F: 5’-CAACAGAAGGCTCGAGGATCTTAACAGGCCAGAAATG-3’;miR30-F: 5’-ATGAGGCTTCAGTACTTTACAG-3’;WPRE-R: 5’-CATAGCGTAAAAGGAGCAACA-3’。隨后PCR擴(kuò)增目的基因片段,將擴(kuò)增的目的基因與線性載體進(jìn)行同源重組,再將連接產(chǎn)物與DH5α細(xì)胞進(jìn)行轉(zhuǎn)化,最終獲得陽性克隆送測(cè)序。最終將包裝好的慢病毒感染NCM460細(xì)胞,構(gòu)建穩(wěn)定轉(zhuǎn)染細(xì)胞株,熒光顯微鏡下觀察可見到細(xì)胞發(fā)出綠色熒光,表示感染成功。
3.2miR-213’UTR載體構(gòu)建 在NCBI上選取并分析目的基因序列,擴(kuò)增引物序列如下,ROCK1XhoI: 5’-ccgctcgagGCCTGCTTTCGCCTGCTGTC-3’; ROCK1NotI-R:5’-ataagaatgcggccgcTCTATGGGAGTAGTATTT-
TTATTATTCCAATTG-3’。隨后在人基因組上通過PCR 釣取目的基因,再將PCR產(chǎn)物切膠回收并純化,將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化,平板選取單克隆提取質(zhì)粒酶切后送測(cè)序,BLAST比對(duì)測(cè)序結(jié)果。采用同樣方法構(gòu)建ROCK1 3’UTR突變載體。
3.3miRNA與目的質(zhì)粒共同轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞 陽離子脂質(zhì)體法行細(xì)胞轉(zhuǎn)染:轉(zhuǎn)染的前 1 d,將NCM460細(xì)胞按照每孔2×104在24孔板上鋪板;轉(zhuǎn)染當(dāng)天,NCM460細(xì)胞生長(zhǎng)融合度應(yīng)為50%~60%。轉(zhuǎn)染前1 h棄去舊培養(yǎng)基,PBS洗2次,每孔加入300 μL Opti-MEM培養(yǎng)基,放回CO2培養(yǎng)箱;每孔加入1 μL Lipofectamine 2000,加入Opti-MEM培養(yǎng)基至終體積50 μL,在室溫下靜置約5 min;每個(gè)孔用加入20 μmol/L的miR-21 mimic 1 μL、miR-21 inhibitor 2 μL和0.5 μg質(zhì)粒,再加入Opti-MEM至總體積50 μL,室溫下靜置5 min;混勻,室溫靜置20 min;將轉(zhuǎn)染混合液按每孔100 μL加入24孔板,輕輕混勻孔板;放回細(xì)胞培養(yǎng)箱中孵育約5 h后,丟棄原培養(yǎng)基,替換為新鮮的完全培養(yǎng)基。
3.4雙螢光素酶報(bào)告基因檢測(cè) 轉(zhuǎn)染48 h后,棄去培養(yǎng)基,PBS洗2次,按每孔100 μL加入PLB(passive lysis buffer),搖床中輕微振搖,室溫15 min后收集細(xì)胞裂解液。隨后使用螢光素酶分析儀檢測(cè)熒光強(qiáng)度:設(shè)置程序:首先預(yù)讀2 s,然后讀值10 s,LAR II和Stop & Glo? Reagent進(jìn)樣量設(shè)定為每次100 μL。分別將已加入細(xì)胞裂解液的發(fā)光板(每樣品20 μL)、Stop & Glo? Reagent和 LAR II放入螢光素酶分析儀中。按照螢光素酶分析儀操作說明書運(yùn)行程序,讀取數(shù)值并保存數(shù)據(jù)。
3.5細(xì)胞RNA提取及qPCR TRIzol提取細(xì)胞RNA,NanoDrop 2000檢測(cè)A260、A280及其比值,確定RNA的濃度及純度。PCR 引物設(shè)計(jì)通過軟件Primer 5并參考相關(guān)文獻(xiàn),并在NCBI Primer BLAST進(jìn)行比對(duì)。β-actin 上游引物:5’-TCAAGATCATTGCTCCTCCTGAG-3’;β-actin 下游引物:5’-ACATCTGCTGGAAGGTGGACA-3’; ROCK1 上游引物:5’-GGTGGTCGGTTGGGGTATTTT-3’;ROCK1 下游引物:5’-CGCCCTAACCTCACTTCCC-3’;occludin 上游引物:5’-TTGAAAGTCCACCTCCTTACAGA-3’;occludin 下游引物:5’-CCGGATAAAAAGAGTACGCTGG-3’。將提取RNA進(jìn)行反轉(zhuǎn)錄合成cDNA后,按照20 μL反應(yīng)體系步驟加樣,依說明程序進(jìn)行qPCR反應(yīng)(嚴(yán)格按照說明書進(jìn)行)。以β-actin為內(nèi)參照,每個(gè)樣本設(shè)3個(gè)復(fù)孔檢測(cè)。結(jié)果用公式2-ΔΔCt計(jì)算差異值,以對(duì)空白對(duì)照組細(xì)胞為校正樣本,將內(nèi)參照表達(dá)值設(shè)為1,其余樣本與之相比得出的數(shù)值即為差異值。
3.6Western blot 檢測(cè)蛋白表達(dá)水平 收集細(xì)胞,采用細(xì)胞裂解液提取蛋白,BCA法測(cè)定蛋白濃度,根據(jù)樣品蛋白濃度計(jì)算上樣量,Marker上樣3 μL。經(jīng)SDS-PAGE后,用電轉(zhuǎn)儀轉(zhuǎn)膜至硝酸纖維素膜上。室溫5% BSA封閉2 h,I 抗孵育過夜,TBST漂洗3次,加入標(biāo)記 II 抗稀釋液室溫孵育1 h,TBST漂洗4次,化學(xué)發(fā)光顯像后分析結(jié)果。
用SPSS 22.0統(tǒng)計(jì)軟件進(jìn)行分析。數(shù)據(jù)均采用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(mean±SD)表示,兩組間比較采用t檢驗(yàn)。以P<0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
采用miR-21過表達(dá)慢病毒轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞,使用嘌呤霉素篩選得到miR-21過表達(dá)細(xì)胞株,穩(wěn)定轉(zhuǎn)染的NCM460細(xì)胞表達(dá)綠色熒光蛋白,可發(fā)出綠色熒光。采用qPCR檢測(cè)各組細(xì)胞的miR-21相對(duì)表達(dá)量,結(jié)果顯示,miR-21過表達(dá)的NCM460細(xì)胞株中miR-21的表達(dá)量顯著高于對(duì)照組(P<0.05),表明miR-21在miR-21過表達(dá)NCM460細(xì)胞株中的表達(dá)顯著上調(diào),見圖1A。同時(shí)采用Western blot檢測(cè)2組細(xì)胞中occludin的蛋白表達(dá)水平發(fā)現(xiàn),miR-21過表達(dá)細(xì)胞株中occludin蛋白的表達(dá)顯著高于對(duì)照組(P<0.01),提示在NCM460細(xì)胞中過表達(dá)miR-21可上調(diào)occludin蛋白表達(dá),見圖1B。
Figure 1. The expression levels of miR-21 and occludin in miR-21-overexpressing NCM460 cells. A: the expression of miR-21 determined by qPCR; B: the result of Western blot for determining the protein level of occludin. Mean±SD.n=3 .*P<0.05vscontrol group.
圖1miR-21過表達(dá)的NCM460細(xì)胞miR-21表達(dá)水平及occludin蛋白表達(dá)水平
根據(jù)TargetScan(http://www.targetscan.org/)、 PicTar(http://pictar.mdc-berlin.de/)、miRmap(http://mirmap.ezlab.org/)、miRanda(http://www.microrna.org/microrna/)和miRbase(http://www.mirbase.org/)5個(gè)數(shù)據(jù)庫預(yù)測(cè)hsa-miR-21作用的靶基因。通過生物信息學(xué)分析,根據(jù)不同軟件預(yù)測(cè)的靶基因的差異與miR-21和對(duì)應(yīng)基因3’非編碼區(qū)配對(duì)種子序列的保守性,對(duì)靶基因進(jìn)行打分排序,結(jié)果發(fā)現(xiàn)Reck、Tgfbi、Ntf3、Arhgap24、Arhgap27、ROCK1、Cdc42和PTEN等靶基因得分較高。同時(shí)文獻(xiàn)分析表明,Rho激酶相關(guān)蛋白家族Rho-ROCK在腸屏障損傷中作用較為明確,而ROCK蛋白為同時(shí)作為Rho蛋白的重要底物且ROCK1分布于神經(jīng)以外組織。因此,擬選取ROCK1作為miR-21的潛在靶基因。
采用miR-21 mimic轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞24 h后用qPCR分別檢測(cè)miR-21及ROCK1的相對(duì)表達(dá)水平,結(jié)果顯示,與對(duì)照組相比,miR-21 mimic轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞24 h后miR-21相對(duì)表達(dá)水平顯著升高(P<0.05), 而此時(shí)miR-21 mimics轉(zhuǎn)染組ROCK1的mRNA相對(duì)水平顯著降低(P<0.01), 表明miR-21過表達(dá)可在細(xì)胞水平顯著下調(diào)ROCK1的mRNA水平,見圖2A、B。48 h后,miR-21 mimics轉(zhuǎn)染組NCM460細(xì)胞的ROCK1蛋白表達(dá)水平亦顯著下調(diào)(P<0.01),見圖2C。
Figure 2. The expression levels of miR-21 (A), ROCK1 mRNA (B) and ROCK1 protein (C) in NCM460 cells transfected with miR-21 mimic. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vscontrol group.
圖2轉(zhuǎn)染miR-21mimic的NCM460細(xì)胞中miR-21和ROCK1mRNA及蛋白的表達(dá)水平
采用miR-21 inhibitor轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞24 h后,用qPCR分別檢測(cè)miR-21及ROCK1的mRNA的相對(duì)表達(dá)水平,結(jié)果顯示miR-21 inhibitor轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞24 h后miR-21相對(duì)表達(dá)水平明顯降低(P<0.05), 而此時(shí)miR-21 inhibitor轉(zhuǎn)染組ROCK1的mRNA相對(duì)水平上升(P<0.05), 表明在NCM460細(xì)胞中抑制miR-21表達(dá)可在細(xì)胞水平顯著上調(diào)ROCK1的mRNA水平,見圖3A。48 h后,miR-21 inhibitor轉(zhuǎn)染組NCM460細(xì)胞的ROCK1蛋白表達(dá)水平亦顯著上調(diào)(P<0.01),見圖3B。
Figure 3. The expression levels of miR-21, ROCK1 mRNA (A) and ROCK1 protein (B) in NCM460 cells transfected with miR-21 inhibitor. Mean±SD.n=3.*P<0.05,**P<0.01vscontrol group.
圖3轉(zhuǎn)染miR-21inhibitor的NCM460細(xì)胞miR-21和ROCK1mRNA及蛋白的表達(dá)水平
利用miRBase查找miR-21(miR-21-5p)的序列,在NCBI上查詢ROCK1的mRNA序列(NM_005406.2)并選取其3’UTR序列部分,將兩者采用NCBI的BLAST進(jìn)行比對(duì),預(yù)測(cè)miR-21在ROCK1 mRNA的3’UTR上的可能結(jié)合序列,結(jié)果可見ROCK1 mRNA的3’UTR中42~48 nt含有miR-21的調(diào)控位點(diǎn),見圖4A。通過RT-PCR方法將含有該調(diào)控位點(diǎn)的片段以及調(diào)控位點(diǎn)突變的片段克隆至psiCHECK-2表達(dá)載體,在NCM460細(xì)胞中過表達(dá)miR-21,利用雙螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)分析miR-21對(duì)調(diào)控位點(diǎn)的作用,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-21通過調(diào)控該位點(diǎn)進(jìn)而顯著影響了報(bào)告基因的表達(dá),同時(shí)對(duì)ROCK1突變3’UTR片段無明顯調(diào)控作用,證明內(nèi)源性miR-21可以有效抑制報(bào)告基因表達(dá),即ROCK1為miR-21的靶基因,見圖4B。
Figure 4.ROCK1 was verified as the target gene of miR-21. A: the predicted binding site of miR-21 on ROCK1 3’UTR; B: dual-luciferase reporter assay. Mean±SD.n=3.*P<0.05vscontrol group.
圖4驗(yàn)證ROCK1為miR-21靶基因
本課題組既往研究發(fā)現(xiàn),某些miRNA參與了腸道屏障功能的調(diào)節(jié)[12]。在本研究中,我們提出假說miR-21通過靶向調(diào)控ROCK1進(jìn)而調(diào)節(jié)TJ相關(guān)蛋白o(hù)ccludin,是腸屏障功能的保護(hù)因素。為驗(yàn)證假說,我們首先通過體外實(shí)驗(yàn)檢測(cè)miR-21對(duì)細(xì)胞腸屏障相關(guān)表型是否影響加以驗(yàn)證,為此選擇了NCM460細(xì)胞系作為我們的實(shí)驗(yàn)對(duì)象。NCM460和FHC細(xì)胞等是較為常見的人正常結(jié)腸上皮細(xì)胞系,可排除腸道腫瘤細(xì)胞、未成熟或分化不夠的原代上皮或永生化細(xì)胞系帶來的干擾。通過構(gòu)建hsa-miR-21過表達(dá)慢病毒載體轉(zhuǎn)染NCM460細(xì)胞系得到miR-21過表達(dá)NCM460細(xì)胞,通過qPCR檢測(cè)發(fā)現(xiàn)其miR-21表達(dá)情況較對(duì)照組顯著升高約為對(duì)照組的4倍以上,證明miR-21過表達(dá)NCM460細(xì)胞系構(gòu)建成功,進(jìn)而通過Western blot檢測(cè)其TJ相關(guān)蛋白o(hù)ccludin表達(dá)情況,結(jié)果發(fā)現(xiàn)miR-21過表達(dá)NCM460細(xì)胞其occludin表達(dá)上調(diào),與假設(shè)一致,說明miR-21能夠上調(diào)TJ蛋白表達(dá)進(jìn)而維持腸屏障正常功能。該實(shí)驗(yàn)存在一定的局限性,一是未構(gòu)建miR-21抑制表達(dá)細(xì)胞系,二是只檢測(cè)了主要的TJ蛋白,其它TJ蛋白以及腸上皮細(xì)胞凋亡情況未進(jìn)行檢測(cè)。針對(duì)第一點(diǎn),后續(xù)我們將通過在體實(shí)驗(yàn)進(jìn)一步補(bǔ)充完善。Occludin是經(jīng)典的腸上皮細(xì)胞間緊密連接蛋白,在腸屏障功能維持方面起了較為重要重要的作用,其它的TJ蛋白還有ZO-1、ZO-2和ZO-3,20種異構(gòu)體以上的claudin蛋白以及其它一些非典型蛋白。進(jìn)一步通過生物信息學(xué)分析與文獻(xiàn)查找,選取ROCK1作為miR-21的靶基因進(jìn)行下一步研究。生物信息學(xué)分析方法可參考前述。miRNA的調(diào)控特點(diǎn)是“多對(duì)多”,事實(shí)上生物信息學(xué)方法可以預(yù)測(cè)出相當(dāng)數(shù)量的靶基因,而動(dòng)物miRNA的互補(bǔ)程度低,因此程序算法的預(yù)測(cè)結(jié)果理論上也會(huì)較多。結(jié)合打分情況,我們發(fā)現(xiàn)Rho-ROCK蛋白家族[13]在預(yù)測(cè)結(jié)果中出現(xiàn)概率較高,包括(1)Rho-GTP酶超家族成員:Rho、Rac以及Cdc42等;(2)GTP酶活化蛋白(GTPase activating protein, GAP):Arhgap22和Arhgap24等;(3)Rho亞家族下游效應(yīng)分子:Rho激酶1即ROCK1。GAP是Rho-GTP酶的負(fù)調(diào)因子,通過加速Rho-GTP酶水解,使其失活。參與Rho-GTP酶活性調(diào)節(jié)的還有:鳥苷酸交換因子(guanine-nucleotide exchanging factors,GEFs)以及GDP解離抑制因子(GDP dissociation inhibitor,GDI),其中前者為正向調(diào)節(jié),后者為負(fù)向調(diào)節(jié)抑制Rho-GTP酶活性。而ROCK1作為Rho蛋白家族的下游底物,顯然其作用較為明確,而ROCK的底物包括肌球蛋白輕鏈以及內(nèi)收蛋白[11]等,參與細(xì)胞骨架調(diào)整、細(xì)胞收縮和腫瘤細(xì)胞浸潤(rùn),同時(shí)參與了微管以及F-actin的極化調(diào)節(jié)[14]。有研究證實(shí)ROCK通過影響IECs的F-actin結(jié)構(gòu)引起腸上皮通透性增加,也有研究發(fā)現(xiàn)Rho信號(hào)通路的激活通過磷酸化肌球蛋白,可使腸上皮細(xì)胞間TJ蛋白ZO-1及occludin發(fā)生改變,繼而引起腸屏障通透性增加與功能紊亂[15]。因此,我們選取ROCK的異構(gòu)體ROCK1作為miR-21的靶基因進(jìn)行研究。通過在細(xì)胞水平轉(zhuǎn)染miR-21 mimic及inhibitor上調(diào)和下調(diào)NCM460細(xì)胞系的miR-21水平,qPCR及Western blot檢測(cè)發(fā)現(xiàn)miR-21過表達(dá)引起ROCK1的mRNA降解,蛋白水平表達(dá)下調(diào);相反miR-21表達(dá)抑制引起ROCK1 mRNA與蛋白表達(dá)上調(diào),可以看出miR-21能影響ROCK1的表達(dá)。為確定其是否為miR-21的靶基因,我們采用螢光素酶報(bào)告基因?qū)嶒?yàn)進(jìn)行驗(yàn)證,發(fā)現(xiàn)相比較于轉(zhuǎn)染克隆有ROCK1突變型3’UTR的序列,在轉(zhuǎn)染克隆有野生型ROCK1 3’UTR質(zhì)粒中,miR-21組的螢光素酶相對(duì)活性較對(duì)照組低。因此我們得出結(jié)論,miR-21在細(xì)胞水平對(duì)腸屏障的結(jié)構(gòu)起到維持作用,而ROCK1是miR-21的靶基因,miR-21可能通過Rho-ROCK1通路進(jìn)而影響腸屏障相關(guān)蛋白o(hù)ccludin的表達(dá)。
[參考文獻(xiàn)]
[1] Liu ZH, Huang MJ, Zhang XW, et al. The effects of perioperative probiotic treatment on serum zonulin concentration and subsequent postoperative infectious complications after colorectal cancer surgery: a double-center and double-blind randomized clinical trial[J]. Am J Clin Nutr, 2013, 97(1):117-126.
[2] 姜海平, 劉春安, 王達(dá)安. 谷氨酰胺強(qiáng)化的腸外營(yíng)養(yǎng)對(duì)普外科全身炎癥反應(yīng)綜合征的影響[J]. 中國病理生理雜志, 2003, 19(6):847-848.
[3] Whelan K, Myers CE. Safety of probiotics in patients receiving nutritional support: a systematic review of case reports, randomized controlled trials, and nonrandomized trials[J]. Am J Clin Nutr, 2010, 91(3):687-703.
[4] He L, Thomson JM, Hemann MT, et al. A microRNA polycistron as a potential human oncogene[J]. Nature, 2005, 435(7043):828-833.
[5] O’Donnell KA, Wentzel EA, Zeller KI, et al. c-Myc-regulated microRNAs modulate E2F1 expression[J]. Nature, 2005, 435(7043):839-843.
[6] Qian D, Chen K, Deng H, et al. MicroRNA-374b suppresses proliferation and promotes apoptosis in T-cell lymphoblastic lymphoma by repressing AKT1 and Wnt-16[J]. Clin Cancer Res, 2015, 21(21):4881-4891.
[7] Chen JF, Murchison EP, Tang R, et al. Targeted deletion of Dicer in the heart leads to dilated cardiomyopathy and heart failure[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2008, 105(6):2111-2116.
[8] Maes OC, Chertkow HM, Wang E, et al. MicroRNA: implications for Alzheimer disease and other human CNS disorders[J]. Curr Genomics, 2009, 10(3):154-168.
[9] Kalla R, Ventham NT, Kennedy NA, et al. MicroRNAs: new players in IBD[J]. Gut, 2015 64(3):504-517.
[10] Mihaescu A, Santen S, Jeppsson B, et al. p38 mitogen-activated protein kinase signalling regulates vascular inflammation and epithelial barrier dysfunction in an experimental model of radiation-induced colitis[J]. Br J Surg, 2010, 97(2):226-234.
[11] Marchiando AM, Shen L, Graham WV, et al. The epithelial barrier is maintained byinvivotight junction expansion during pathologic intestinal epithelial shedding[J]. Gastroenterology, 2011, 140(4):1208-1218.
[12] Zhang B, Tian Y, Jiang P, et al. MicroRNA-122a regulates zonulin by targeting EGFR in intestinal epithelial dysfunction[J]. Cell Physiol Biochem, 2017, 42(2):848-858.
[13] 朱 正, 梁英銳, 邱紅明. Rho蛋白家族的生物活性[J]. 國外醫(yī)學(xué): 生理、病理科學(xué)與臨床分冊(cè), 2002, 22(3):251-254.
[14] Nakahara S, Tsutsumi K, Zuinen T, et al. FilGAP, a Rho-ROCK-regulated GAP for Rac, controls adherens junctions in MDCK cells[J]. J Cell Sci, 2015, 128(11):2047-2056.
[15] Segain JP, Raingeard DLBD, Sauzeau V, et al. Rho kinase blockade prevents inflammation via nuclear factor kappa B inhibition: evidence in Crohn's disease and experimental colitis[J]. Gastroenterology, 2003, 124(5):1180-1187.