青稞麩皮阿拉伯木聚糖的提取工藝優(yōu)化及結(jié)構(gòu)分析

徐中香，胡 浩，李季楠，吳 艷*

青稞（Hordeum vulgare Linn. var. nudum Hook. F.），又稱裸大麥、元麥，禾本科大麥屬，是我國西北高寒地區(qū)極為重要的一種高原谷類作物[1-2]。青稞營養(yǎng)價值豐富，富含β-葡聚糖和阿拉伯木聚糖（arabinoxylan，AX）等非淀粉多糖，具有高蛋白質(zhì)、高維生素、高纖維、低糖、低脂等特點[2-3]。AX主要存在于谷物麩皮中，質(zhì)量分數(shù)可達干基的20%～25%，而胚乳及籽粒中含量相對較低，質(zhì)量分數(shù)分別為1.5%～2.5%及4%～8%[4]。麩皮AX因與纖維素、木質(zhì)素等存在共價結(jié)合[5]，水法提取效果較差，多采用堿法NaOH溶液、飽和Ba(OH)2、Ca(OH)2溶液等提取[6-9]，而使用阿拉伯木聚糖酶法亦可提高AX提取率[6]。李雪等[10]比較了不同堿性提取劑對小麥麩皮水不溶性AX的提取效果，發(fā)現(xiàn)以NaOH溶液為提取溶劑時，AX得率雖然不如飽和Ba(OH)2溶液提取得率高，但是提取時間短、成本低、工藝簡單。Wang Jing等[11]采用超聲波輔助酶法優(yōu)化了小麥麩皮AX的提取工藝，其中得率為14.26%，超聲波提高了酶處理效率，進而得率提高。Gong等[12]研究了3 種青稞麩皮中AX質(zhì)量分數(shù)分別為14.21%、18.18%及21.06%，阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值分別為0.83、0.76及0.58。國內(nèi)外對AX的研究多集中于小麥、大麥及其加工副產(chǎn)物，而對青稞乃至青稞麩皮AX的研究還較少。

本研究采用堿法提取青稞麩皮AX，研究料液比、提取溫度、提取時間、NaOH質(zhì)量濃度對青稞麩皮AX提取的影響，通過響應(yīng)面法優(yōu)化AX的最佳提取工藝。采用高效凝膠滲透色譜（high-performance gel permeation chromatography，HPGPC）對青稞麩皮AX進行純度鑒定，紫外吸收光譜、紅外吸收光譜和高效陰離子色譜法對其結(jié)構(gòu)進行初步分析，旨在為青稞麩皮AX的進一步開發(fā)應(yīng)用提供理論依據(jù)。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

青稞麩皮（品種：肚里黃）產(chǎn)地為青海省貴南市，青稞麩皮粉碎后過40 目篩備用。

考馬斯亮藍試劑盒、耐高溫α-淀粉酶、透析袋上海源葉生物科技有限公司；氫氧化鈉、乙酸鈉、硝酸鈉、鹽酸、硫酸、苯酚、三氟乙酸、乙醇、葡萄糖均為國產(chǎn)分析純。

1.2 儀器與設(shè)備

SF-2000高速粉碎機 上海市藥材有限公司；R206B旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)儀 上海申生科技有限公司；SHB-III循環(huán)水式真空泵 上海誠育儀器設(shè)備有限公司；TD5A-WS臺式低速離心機 湖南湘儀實驗室儀器開發(fā)有限公司；U1810紫外-可見分光光度計 北京普析通用儀器有限責(zé)任公司；HWS24型電熱恒溫水浴鍋 上海恒科學(xué)儀器有限公司；冷凍干燥機 上海比朗儀器制造有限公司；MDF-U52V超低溫冰箱 日本Sanyo公司；Mili-Q超純水系統(tǒng) 美國Millipore公司；PL203電子天平梅特勒-托利多儀器（上海）有限公司；ICS-5000離子色譜儀 美國戴安公司；Waters E2695高效液相色譜儀美國沃特世公司。

1.3 方法

1.3.1 青稞麩皮預(yù)處理

青稞麩皮粉中加入10 倍體積的體積分數(shù)95%乙醇溶液，不斷攪拌，浸泡1 d，除去小分子、低聚糖、揮發(fā)油等物質(zhì)[13]。將除去乙醇的青稞麩皮于60 ℃烘箱中過夜干燥。向脫脂后的青稞麩皮去離子水體系中（料液比1∶10（g/mL））加入耐高溫α-淀粉酶，95 ℃水浴30 min[14]。60 ℃烘箱中過夜干燥得到脫脂除淀粉的青稞麩皮粉。

1.3.2 堿提工藝

青稞麩皮預(yù)處理粉→加入NaOH溶液→水浴振蕩→離心→等電點除蛋白[15]→旋轉(zhuǎn)蒸發(fā)濃縮→去離子水透析→乙醇沉淀→離心后水復(fù)溶→冷凍干燥→青稞麩皮AX。

1.3.3 AX得率計算

采用苯酚-硫酸比色法測定多糖的含量[16]，以葡萄糖制作標準曲線，測得提取液中多糖含量后，按下式計算樣品中多糖得率（以預(yù)處理粉計）：

式中：C為提取液中多糖質(zhì)量濃度/（μg/mL）；V為提取液體積/mL；n為提取液稀釋倍數(shù)；m為預(yù)處理粉質(zhì)量/g。

1.3.4 單因素試驗

固定基本提取參數(shù)為料液比1∶15（g/mL）、提取溫度25 ℃、提取時間2 h、NaOH質(zhì)量濃度10 g/L。在基本提取參數(shù)下，分別考察料液比（1∶10、1∶15、1∶20、1∶25、1∶30（g/mL））、提取溫度（25、35、45、55、65 ℃）、提取時間（1、2、3、4、5 h）、NaOH質(zhì)量濃度（1、5、10、15、25 g/L）4 個單因素對AX得率的影響。

1.3.5 響應(yīng)面試驗

在單因素試驗的基礎(chǔ)上，以料液比、提取溫度、提取時間、NaOH質(zhì)量濃度為自變量，以AX得率為響應(yīng)值，采用Box-Behnken響應(yīng)面設(shè)計原理[17]，以青稞麩皮AX得率為指標，采用SAS V8.0分析軟件設(shè)計四因素三水平響應(yīng)面組合設(shè)計，對堿法提取AX工藝參數(shù)進行優(yōu)化。試驗因素與水平設(shè)計見表1。

表1 AX提取工藝優(yōu)化響應(yīng)面分析試驗因素與水平Table 1 Independent variables and their coded values tested in response surface analysis

1.3.6 青稞麩皮AX純度鑒定

青稞麩皮AX經(jīng)過多次乙醇沉淀后，采用HPGPC法對其進行純度鑒定。色譜條件：Ultrahydrogel liner柱（7.8 mm×300 mm），示差折光檢測器，柱溫、檢測器溫度35 ℃，0.10 mol/L NaNO3溶液為流動相，流速0.6 mL/min。流動相溶解樣品，配制青稞麩皮AX溶液2 mg/mL，過0.45 μm微孔過濾膜后，供進樣分析。

1.3.7 青稞麩皮AX紫外光譜分析

配制青稞麩皮AX溶液0.5 mg/mL，于紫外-可見分光光度計中進行波長190～400 nm范圍內(nèi)紫外光譜掃描。

1.3.8 青稞麩皮AX紅外光譜分析

將2.0 mg多糖干燥樣品，與200 mg KBr研磨后壓片，在4 000～400 cm－1區(qū)域內(nèi)進行紅外光譜掃描。

1.3.9 青稞麩皮AX單糖組成分析

采用帶有脈沖安培檢測器的高效離子交換色譜系統(tǒng)測定單糖組成[18]。取多糖樣品5 mg于具塞管中，加入2 mol/L的三氟乙酸溶液2 mL于121 ℃水解2 h，氮吹除去過量的三氟乙酸，加水溶解定容后過0.45 μm微孔過濾膜，供進樣分析[19]。

色譜柱：CarboPac PA20；流動相A：H2O；B：250 mmol/L NaOH溶液；C：1 mol/L CH3COONa溶液，三元梯度洗脫程序見表2；流速：0.5 mL/min；積分脈沖安培檢測器。

表2 AX單糖組成分析梯度淋洗程序Table 2 Gradient elution procedure for monosaccharide composition analysis of AX

2 結(jié)果與分析

2.1 青稞麩皮AX提取單因素試驗結(jié)果

2.1.1 料液比對青稞麩皮AX得率的影響

圖1 料液比對青稞麩皮AX得率的影響Fig. 1 Effect of solid to solvent ratio on the extraction efficiency of AX

由圖1可知，低溶劑用量時料液呈糊狀，不利于AX的溶出，因而AX得率較低。隨著溶劑用量的增加，麩皮粉與溶劑充分接觸，加速AX的溶出。料液比1∶20（g/mL）前，AX得率隨著溶劑用量的提高快速增大，料液比1∶20（g/mL）后得率增加趨于平緩，提高不再明顯。鑒于后續(xù)旋蒸濃縮的易操作性及經(jīng)濟角度，確定最佳料液比為1∶20（g/mL）。

2.1.2 提取溫度對青稞麩皮AX得率的影響

圖2 提取溫度對青稞麩皮AX得率的影響Fig. 2 Effect of extraction temperature on the extraction efficiency of AX

由圖2可知，青稞AX得率對提取溫度依賴性較高，提取溫度的升高顯著提高了AX得率，低于55 ℃前隨著溫度的升高得率快速上升，高于55 ℃后得率趨于平緩。雖然較高溫度利于AX的提取，但高溫下得到的AX顏色明顯加深，其中色素等雜質(zhì)較高，不利于后續(xù)的純化，此外，高溫會導(dǎo)致多糖的降解。因此確定最佳提取溫度為55 ℃。

2.1.3 提取時間對青稞麩皮AX得率的影響

圖3 提取時間對青稞麩皮AX得率的影響Fig. 3 Effect of extraction time on the extraction efficiency of AX

由圖3可知，提取時間較短時，青稞麩皮中的AX尚未充分溶解出來，隨著提取時間的延長，AX得率總體呈現(xiàn)上升趨勢，但3 h后增速較慢，漸趨于平緩。因此從提取周期及能耗角度，確定最佳提取時間為3 h。

2.1.4 NaOH質(zhì)量濃度對青稞麩皮AX得率的影響

圖4 NaOH質(zhì)量濃度對青稞麩皮AX得率的影響Fig. 4 Effect of sodium hydroxide concentration on the extraction efficiency of AX

由圖4可知，AX作為植物細胞壁多糖，不僅與材料中的木質(zhì)素、纖維素等存在復(fù)雜的物理纏繞，與多糖、蛋白質(zhì)之間還存在著以阿魏酰相連的共價鍵[20]，因而在極低的堿濃度下，絕大部分AX無法溶出，得率極低，這也是AX一般均采用堿提法提取的主要原因。NaOH的質(zhì)量濃度為1～5 g/L時，AX得率增速較低，質(zhì)量濃度為15 g/L時，得率顯著提高，此后得率有所提高但較平緩。雖然溶劑濃度越大越利于物質(zhì)的溶出，但因麩皮中含有較多色素物質(zhì)，AX得率提高的同時也伴隨著其他雜質(zhì)（色素、蛋白、木質(zhì)素等）的溶出。因此從后續(xù)除雜及經(jīng)濟角度，確定最佳NaOH質(zhì)量濃度為15 g/L。

2.2 青稞麩皮AX提取的響應(yīng)面分析

2.2.1 響應(yīng)面試驗設(shè)計與結(jié)果

響應(yīng)面試驗設(shè)計及結(jié)果見表3，共27 個試驗點，其中包括24 個析因試驗點，其自變量取值在各因素構(gòu)成三維頂點，3 個中心試驗點，用于估計試驗誤差。采用SAS V8.0軟件對試驗數(shù)據(jù)進行分析，得到青稞麩皮AX得率與各變量的二次多項方程的數(shù)學(xué)回歸模型為：Y=14.256 67＋1.810 833X1＋0.22X2＋0.695X3＋0.269 167X4－2.138 333X12－0.307 083X22－0.932 083X32－0.858 333X42－0.122 5X1X2－0.137 5X1X3＋0.217 5X1X4－0.145X2X3－0.137 5X2X4－0.242 5X3X4。

由表4可知，該回歸模型P值小于0.000 1，說明該模型極顯著，其響應(yīng)值與各試驗因素之間存在顯著的線性相關(guān)性；R2值為0.998 3，R2Adj值為0.996 3，說明該模型與試驗值擬合較好，能很好地表述青稞麩皮AX提取過程中其得率隨提取條件的變化規(guī)律；失擬項P值為0.332 4，不顯著，同樣確定了模型的可行性；自變量X1、X2、X3、X4的P值均小于0.000 1，說明它們對AX得率都有極顯著的影響，而據(jù)自變量的F值可判斷各因素對AX得率的影響由大到小依次為：X1＞X3＞X4＞X2；交互項X1X2、X1X3、X1X4、X2X3、X2X4、X3X4P值小于0.05，均影響顯著，說明各因素對AX得率均有顯著的交互作用。

表3 青稞麩皮AX提取工藝優(yōu)化響應(yīng)面分析試驗設(shè)計及結(jié)果Table 3 Experimental design and corresponding results for response surface analysis

表4 響應(yīng)面模型方差分析Table 4 Analysis of variance (ANOVA) for response surface quadratic regression model

2.2.2 響應(yīng)面交互作用分析

響應(yīng)面及等高線圖可分析因素對AX得率的交互作用并確定最佳提取參數(shù)。等高線形狀可反映各因素間交互作用的強弱，橢圓形表示兩因素交互作用顯著，圓形則相反[11]。

圖5 兩因素交互作用對提取效果影響的響應(yīng)面及等高線圖Fig. 5 Response surface and contour plots showing the interactive effects of factors on extraction efficiency

選取3 組交互作用作響應(yīng)面圖，其他兩因素水平取0。由圖5a可知，AX得率隨著料液比和提取時間水平的增大而提高，但當兩者達到一定組合后，AX得率趨于平緩，兩者交互作用顯著?？赡苁钱斄弦罕群吞崛r間達到一定值后，AX得到了充分提取，再之后水平提高AX得率增加不再顯著。由圖5b可知，在一定范圍內(nèi)，AX得率隨著料液比及NaOH質(zhì)量濃度水平的增加顯著提高，而當兩者達到一定組合后，AX得率隨著組合條件的提高而呈緩慢下降趨勢?？赡苁沁^高的NaOH質(zhì)量濃度造成了部分多糖的降解。由圖5c可知，在一定范圍內(nèi)，隨著提取時間的延長，AX得率不斷增加，當提取時間超過3.5 h后，AX得率趨于穩(wěn)定；此條件下NaOH質(zhì)量濃度對AX得率的影響與圖5b類似，兩者交互作用顯著。

2.2.3 最佳工藝條件的確定及模型驗證

回歸模型預(yù)測的青稞麩皮AX最佳提取工藝參數(shù)為料液比1∶25（g/mL）、提取溫度55 ℃、提取時間3 h、NaOH質(zhì)量濃度15 g/L，在此條件下，AX得率可達14.27%。以確定的最佳工藝參數(shù)進行3 次青稞麩皮AX提取的平行實驗，得到AX得率平均值為14.31%，接近回歸方程所得AX得率的預(yù)測值。說明回歸方程能較真實地反映各因素對青稞麩皮AX得率的影響，采用響應(yīng)面分析方法優(yōu)化得到的提取工藝參數(shù)準確可靠。

2.3 青稞麩皮AX的純度鑒定

HPGPC因其快速、簡便和高分辨率等優(yōu)點，是目前多糖純度鑒定最常用的方法。青稞麩皮AX的高效液相色譜圖如圖6所示，在其純度檢測中，只有一個對稱的信號峰，可見其均一性較好，可以認為該青稞麩皮AX為單一組分的多糖聚合物。

圖6 青稞麩皮AX HPGPC法純度測定Fig. 6 HPGPC analysis of AX

2.4 青稞麩皮AX的紫外光譜分析

圖7 青稞麩皮AX紫外吸收光譜圖Fig. 7 UV absorption spectrum of AX

由圖7可知，青稞麩皮AX在192 nm波長處有一個較強的吸收峰，這是多糖的特征吸收峰，在280 nm波長處有微弱的吸收，說明青稞麩皮AX中含有少量蛋白質(zhì)，而在260 nm波長處無吸收峰，說明該多糖中不含核酸[20]。

2.5 青稞麩皮AX的紅外光譜分析

圖8 青稞麩皮AX紅外吸收光譜圖Fig. 8 Fourier transform infrared spectrum of AX

由圖8可知，3 429 cm－1處的吸收峰是—OH的伸縮振動吸收峰，寬吸收峰說明存在分子內(nèi)和分子間氫鍵；2 927 cm－1處的吸收峰是—CH的伸縮振動吸收峰；1 647 cm－1處的吸收峰是—C＝O的伸縮振動；1 448 cm－1、1 399 cm－1處吸收峰是—CH2的變形吸收峰；1 340 cm－1處吸收峰是—CH彎曲振動吸收峰；1 038 cm－1處的則是醇羥基—OH的變角振動吸收峰。在893 cm－1處存在β-糖苷鍵的特征吸收峰，該多糖結(jié)構(gòu)中存在β-多糖[12,21-24]，在864 cm－1處存在α-糖苷鍵的特征吸收峰，該多糖結(jié)構(gòu)中存在α-多糖[25-26]。而據(jù)文獻報道，AX結(jié)構(gòu)的主鏈是由β-D-吡喃木糖殘基經(jīng)β-（1→4）糖苷鍵連接而成的木聚糖，在C2和C3位β-D-木糖殘基可被α-L-呋喃阿拉伯糖取代，形成多分支結(jié)構(gòu)[27]。說明青稞麩皮中提取的多糖符合AX的結(jié)構(gòu)特征。

2.6 青稞麩皮AX的單糖組成

圖9 AX的高效陰離子交換色譜Fig. 9 High performance anion exchange chromatogram of AX

根據(jù)各單糖標樣與多糖樣品的保留時間確定其單糖的種類，根據(jù)各峰面積計算樣品中各單糖的物質(zhì)的量比。由圖9可得，青稞麩皮AX主要由阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖、木糖4 種單糖組成，單糖對應(yīng)的物質(zhì)的量比為11.61∶1∶3.62∶18，可以確定提取的青稞麩皮多糖中主要物質(zhì)為AX，且雜質(zhì)糖含量較低，阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值為0.645。Izydorczyk等[28]對一種加拿大蠟質(zhì)裸大麥糊粉層組織中AX的研究顯示，阿拉伯糖-半乳糖-葡萄糖-木糖物質(zhì)的量比為13.43∶1∶12.86∶20.33，阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值為0.66，該實驗中阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值與本實驗比值相近，但其中葡萄糖含量較高。Skendi等[29]發(fā)現(xiàn)，小麥中提取的多糖阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值在0.57～0.71之間，而Rattan等[30]發(fā)現(xiàn)，小麥粉中阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值在0.61～0.68之間，可見來源不同時其值會有不同。

3 結(jié) 論

本實驗通過Box-Behnken試驗設(shè)計建立了料液比、提取溫度、提取時間及NaOH質(zhì)量濃度4個影響因素與響應(yīng)值青稞麩皮AX得率相互作用的數(shù)學(xué)模型，并對試驗結(jié)果進行了模擬和預(yù)測，優(yōu)化后的最佳提取工藝為料液比1∶25（g/mL）、提取溫度55 ℃、提取時間3 h、NaOH質(zhì)量濃度15 g/L。在此條件下AX得率為14.31%，與理論值14.27%無顯著差異。提取工藝的優(yōu)化為青稞麩皮AX的進一步理化研究奠定了基礎(chǔ)。對青稞麩皮AX的結(jié)構(gòu)做了初步分析，HPGPC結(jié)果表明青稞麩皮AX均一性較好，可認為其為單一組分的多糖聚合物；紫外光譜檢測結(jié)果表明青稞麩皮AX中含有微量蛋白質(zhì)，不含核酸；紅外光譜分析結(jié)果表明該多糖具有多糖特征吸收，并且含有α、β-糖苷鍵結(jié)構(gòu)；高效離子交換色譜結(jié)果表明青稞麩皮AX的主要單糖組成為阿拉伯糖、半乳糖、葡萄糖、木糖，阿拉伯糖-半乳糖-葡萄糖-木糖物質(zhì)的量比為11.61∶1∶3.62∶18，阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值為0.645。阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值一定程度上反映了多糖結(jié)構(gòu)分支程度，谷物中該比值在0.3～1.1之間，而大麥糊粉層中阿拉伯糖與木糖物質(zhì)的量比值在大麥AX提取物中最低，在0.56～0.66之間，反映了大麥糊粉層AX的分支度低[31]。本實驗中青稞麩皮AX主要單糖組成為阿拉伯糖和木糖，分支度較低，與前人對大麥中AX的研究結(jié)果基本一致。

參考文獻：

[1] 姚豪穎葉. 青稞中β-葡聚糖與阿拉伯木聚糖的分離純化與結(jié)構(gòu)表征[D].南昌: 南昌大學(xué), 2016.

[2] 呂遠平, 熊茉君, 賈利蓉, 等. 青稞特性及在食品中的應(yīng)用[J]. 食品科學(xué), 2005, 26(7): 266-270. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2005.07.065.

[3] 姜忠杰, 李國明, 周明, 等. 青稞麩皮可溶性粗多糖的提取及其抗氧化性研究[J]. 中國食品添加劑, 2012(6): 70-77. DOI:10.3969/j.issn.1006-2513.2012.06.002.

[4] 蘇東民, 李雪, 蘇東海, 等. 小麥阿拉伯木聚糖及其功能性質(zhì)研究進展[J]. 河南工業(yè)大學(xué)學(xué)報(自然科學(xué)版), 2012(4): 85-90.

[5] IZYDORCZYK M S. 23-Arabinoxylans[M]//Woodhead Publishing Series in Food Science, Technology and Nutrition. Woodhead Publishing, 2009: 653-692. DOI:10.1533/9781845695873.653.

[6] 張曉娜, 王世平, 周素梅, 等. 小麥麩皮阿拉伯木聚糖堿提工藝條件優(yōu)化研究[J]. 核農(nóng)學(xué)報, 2008(1): 60-64.

[7] ZHANG Z, SMITH C, LI W. Extraction and modification technology of arabinoxylans from cereal by-products: a critical review[J].Food Research International, 2014, 65: 423-436. DOI:10.1016/j.foodres.2014.05.068.

[8] 牟振坤. 不同小麥品種阿拉伯木聚糖基本構(gòu)成及性能的研究[D].內(nèi)蒙古: 內(nèi)蒙古農(nóng)業(yè)大學(xué), 2010.

[9] 周素梅, 王強, 張曉娜. 小麥中功能性多糖-阿拉伯木聚糖研究進展[J].核農(nóng)學(xué)報, 2009(2): 297-301.

[10] 李雪, 蘇東民, 蘇東海, 等. 不同堿性提取劑對小麥麩皮水不溶性阿拉伯木聚糖提取效果的比較研究[J]. 中國農(nóng)學(xué)通報, 2012(21): 272-276. DOI:10.3969/j.issn.1000-6850.2012.21.049.

[11] WANG J, SUN B, LIU Y, et al. Optimisation of ultrasoundassisted enzymatic extraction of arabinoxylan from wheat bran[J]. Food Chemistry, 2014, 150: 482-488. DOI:10.1016/j.foodchem.2013.10.121.

[12] GONG L, JIN C, WU X, et al. Determination of arabinoxylans in Tibetan hull-less barley bran[J]. Procedia Engineering, 2012, 37: 218-222. DOI:10.1016/j.proeng.2012.04.230.

[13] PAVLOVICH-ABRIL A, ROUZAUD-SáNDEZ O, CARVAJALMILLáN E, et al. Molecular characterization of water extractable arabinoxylans isolated from wheat fine bran and their effect on dough viscosity[J]. LWT-Food Science and Technology, 2016, 74: 484-492.DOI:10.1016/j.lwt.2016.08.007.

[14] AGUEDO M, FOUGNIES C, DERMIENCE M, et al. Extraction by three processes of arabinoxylans from wheat bran and characterization of the fractions obtained[J]. Carbohydrate Polymers, 2014, 105: 317-324. DOI:10.1016/j.carbpol.2014.01.096.

[15] 王珊, 黃勝陽. 植物多糖提取液脫蛋白方法的研究進展[J]. 食品科技, 2012(9): 188-191.

[16] WU Y, CUI S W, TANG J, et al. Optimization of extraction process of crude polysaccharides from boat-fruited sterculia seeds by response surface methodology[J]. Food Chemistry, 2007, 105(4): 1599-1605.DOI:10.1016/j.foodchem.2007.03.066.

[17] 馬棟, 鄒妍, 龔倩云, 等. 響應(yīng)面法優(yōu)化青稞β-葡聚糖提取條件的研究[J]. 食品工業(yè)科技, 2012(1): 204-206.

[18] 牟世芬, 于泓, 蔡亞岐. 糖的高效陰離子交換色譜-脈沖安培檢測法分析[J]. 色譜, 2009, 27(5): 667-674. DOI:10.3321/j.issn:1000-8713.2009.05.019.

[19] 戴軍, 梁麗娜, 尹鴻萍, 等. 高效陰離子交換色譜法分析杜氏鹽藻多糖的單糖組成[J]. 食品與發(fā)酵工業(yè), 2006, 32(11): 131-135.DOI:10.3321/j.issn:0253-990X.2006.11.033.

[20] FAUROT A, SAULNIER L, BéROT S, et al. Large scale isolation of water-soluble and water-insoluble pentosans from wheat flour[J].LWT-Food Science and Technology, 1995, 28(4): 436-441.DOI:10.1016/0023-6438(95)90028-4.

[21] CHEN R, LI H, LI S, et al. Extraction optimization, preliminary characterization and immunological activity of polysaccharides from figs[J]. International Journal of Biological Macromolecules, 2015, 72:185-194. DOI:10.1016/j.ijbiomac.2014.08.021.

[22] 王海, 李里特, 石波. 玉米芯木聚糖和樺木木聚糖組成成分及結(jié)構(gòu)的研究[J]. 食品科學(xué), 2004, 25(S1): 38-44. DOI:10.3321/j.issn:1002-6630.2004.z1.008.

[23] ESCARNOT E, AGUEDO M, AGNEESSENS R, et al. Extraction and characterization of water-extractable and water-unextractable arabinoxylans from spelt bran: study of the hydrolysis conditions for monosaccharides analysis[J]. Journal of Cereal Science, 2011, 53(1):45-52. DOI:10.1016/j.jcs.2010.09.002.

[24] SáROSSY Z, TENKANEN M, PITK?NEN L, et al. Extraction and chemical characterization of rye arabinoxylan and the effect of β-glucan on the mechanical and barrier properties of cast arabinoxylan films[J]. Food Hydrocolloids, 2013, 30(1): 206-216. DOI:10.1016/j.foodhyd.2012.05.022.

[25] 夏朝紅, 戴奇, 房韋, 等. 幾種多糖的紅外光譜研究[J]. 武漢理工大學(xué)學(xué)報, 2007(1): 45-47. DOI:10.3321/j.issn:1671-4431.2007.01.012.

[26] SUN Y, CUI S W, GU X, et al. Isolation and structural characterization of water unextractable arabinoxylans from Chinese black-grained wheat bran[J]. Carbohydrate Polymers, 2011, 85(3): 615-621.DOI:10.1016/j.carbpol.2011.03.021.

[27] COELHO E, ROCHA M A M, MOREIRA A S P, et al. Revisiting the structural features of arabinoxylans from brewers’ spent grain[J].Carbohydrate Polymers, 2016, 139: 167-176. DOI:10.1016/j.carbpol.2015.12.006.

[28] IZYDORCZYK M S, DEXTER J E. Barley β-glucans and arabinoxylans: molecular structure, physicochemical properties, and uses in food products: a review[J]. Food Research International, 2008,41(9): 850-868. DOI:10.1016/j.foodres.2008.04.001.

[29] SKENDI A, BILIADERIS C G, IZYDORCZYK M S, et al. Structural variation and rheological properties of water-extractable arabinoxylans from six Greek wheat cultivars[J]. Food Chemistry, 2011, 126(2): 526-536. DOI:10.1016/j.foodchem.2010.11.038.

[30] RATTAN O, IZYDORCZYK M S, BILIADERIS C G. Structure and rheological behaviour of arabinoxylans from Canadian bread wheat flours[J]. LWT-Food Science and Technology, 1994, 27(6): 550-555.DOI:10.1006/fstl.1994.1108.

[31] IZYDORCZYK M S. Variations in content and molecular structure of barley nonstarch polysaccharides associated with genotypic and cellular origin[J]. Cereal Chemistry, 2010, 87(4): 376-384.DOI:10.1094/CCHEM-87-4-0376.