熱處理對(duì)紫山藥淀粉理化和消化特性的影響

李　濤, 安鳳平,2, 宋洪波,2, 王藝偉,2, 劉燦燦, 萬　成

(1.福建農(nóng)林大學(xué)食品科學(xué)學(xué)院;2.福建省特種淀粉品質(zhì)科學(xué)與加工技術(shù)重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室，福建 福州 350002)

紫山藥(DioscoreaalataL.)又稱紫蒔藥、紫人參等，為一年或多年生藤本蔓性植物，在我國南方地區(qū)廣泛種植[1].淀粉是紫山藥中的主要成分，約占新鮮塊莖生物總量的16%～20%.

原淀粉因具有某些天然缺陷，大大限制了其應(yīng)用范圍[2].改性處理改善了原淀粉的加工性能和營養(yǎng)價(jià)值，使之廣泛應(yīng)用于肉類制品、烘焙制品、奶制品以及冷凍等食品中[3-4].淀粉改性主要包括物理法、化學(xué)法和酶法，其中物理法因具有方法簡(jiǎn)便、產(chǎn)品安全性好等優(yōu)點(diǎn)而受到廣泛關(guān)注.韌化法、濕熱法和壓熱法是物理改性淀粉的主要方法，是一類低成本、環(huán)保并能改善淀粉性能的方法[5].

淀粉的溶解特性、熱焓特性與食品加工過程設(shè)計(jì)以及產(chǎn)品設(shè)計(jì)密切相關(guān)，消化特性是淀粉類食品營養(yǎng)和功能性的重要組成部分[6-8].近年來，關(guān)于紫山藥的研究多集中于小分子生物活性成分的功能性研究與利用[9-10]，而關(guān)于紫山藥淀粉加工利用的研究鮮有報(bào)道.因此，本試驗(yàn)開展韌化、濕熱和壓熱3種物理方法對(duì)紫山藥淀粉溶解、熱焓等理化性質(zhì)和消化特性影響的研究，并分析導(dǎo)致這些差異的原因，旨在為紫山藥淀粉的加工利用提供參考.

1　材料與方法

1.1　材料

紫山藥產(chǎn)自福建省三明市建寧縣，品種為紫玉淮山.

D-葡萄糖檢測(cè)試劑盒由愛爾蘭Megazyme公司提供；檸檬酸、氯化鈉、異抗壞血酸鈉、無水乙醇、磷酸氫二鈉和氫氧化鈣均為國產(chǎn)分析純.

主要儀器與設(shè)備有200F3型差示掃描量熱儀(德國NETZSCH公司)、JSM-6380 LV型掃描電鏡(日本JEOL公司)、MiniFlex 600型X-射線衍射儀(日本Rigaku公司)、Nicolet-460型傅立葉變換紅外光譜掃描儀(美國Thermo Scientific公司)和UV-1100型紫外可見分光光度計(jì)(上海美譜達(dá)儀器有限公司).

1.2　方法

1.2.1紫山藥淀粉的制備以新鮮紫山藥為原料，去皮、切片，置于復(fù)配護(hù)色劑(含0.05%檸檬酸、0.10%氯化鈉、0.35%異抗壞血酸鈉和0.06%氫氧化鈣)中室溫護(hù)色30 min.取出瀝干，加入3倍的蒸餾水，用攪拌機(jī)打漿.將漿液依次過紗布、100絹目和200絹目后，靜置沉降6 h.取下層沉淀并用蒸餾水反復(fù)清洗，每次清洗后室溫靜置4 h，棄去上清液，直到上清液澄清為止，置離心機(jī)中于4 000 r·min-1離心15 min，刮去上層雜質(zhì)，反復(fù)離心除雜，乙醇真空抽濾沉淀物后置烘箱中，于40 ℃烘至含水量為(10±0.2)%，粉碎后過100目篩，得紫山藥淀粉.

1.2.2基本成分的測(cè)定樣品中的淀粉、蛋白質(zhì)、脂肪、灰分和粗纖維含量按照文獻(xiàn)[11]的方法測(cè)定，重復(fù)3次，取平均值.

1.2.3熱處理方法韌化處理：參考杜雙奎等[12]的方法.取含水量為75%的紫山藥淀粉乳，60 ℃下恒溫振蕩水浴24 h，于4 000 r·min-1離心10 min，烘干、粉碎，過100目篩.

濕熱處理：參考Xia et al[13]的方法.取紫山藥淀粉加水至水分含量為20%，放入密閉耐高溫的反應(yīng)釜中進(jìn)行濕熱處理(溫度100 ℃，時(shí)間10 h)，烘干、粉碎，過100目篩.

壓熱處理：參考張麗芳等[14]的方法并稍作修改.取紫山藥淀粉，加水配成25%的乳液，于高壓滅菌鍋(120 ℃)中處理30 min，烘干、粉碎，過100目篩.

1.2.4顆粒形貌觀察將少量樣品用雙面膠固定在制樣臺(tái)上，在真空條件下進(jìn)行噴金處理，采用掃描電鏡觀察淀粉顆粒形貌.

1.2.5傅立葉變換紅外光譜分析將干燥的淀粉樣品與溴化鉀以1∶100～1∶150的比例進(jìn)行混合，充分研磨.將研磨好的粉末倒入模具中抽真空壓片，于12 MPa壓力下保持30 s，壓至透明.傅立葉變換紅外光譜掃描儀掃描范圍為4 000～400 cm-1，分辨率為4 cm-1，掃描次數(shù)16～32.

1.2.6結(jié)晶特性的測(cè)定采用X-射線衍射儀測(cè)定.參數(shù)設(shè)定為：管壓40 kV，電流200 mA，在2θ=5°～35°的范圍內(nèi)進(jìn)行連續(xù)掃描.采用MDI Jade 5.0軟件處理試驗(yàn)數(shù)據(jù).

1.2.7溶解特性的測(cè)定溶解特性包括溶解度和膨脹度，參考Gani et al[15]的方法測(cè)定.

1.2.8熱焓特性的測(cè)定準(zhǔn)確稱取3.4 mg淀粉樣品置耐高壓坩堝中，加入6.6 μL去離子水，鎖緊壓蓋后室溫平衡24 h.采用差示掃描量熱儀(DSC)進(jìn)行測(cè)定，掃描溫度范圍為20～200 ℃，加溫速率為10 ℃·min-1.起始溫度(To)、峰值溫度(Tp)、終止溫度(Tc)和糊化焓由差示掃描量熱儀曲線得出，糊化溫度范圍(R)=Tc-To.

1.2.9體外消化特性的測(cè)定參考Englyst et al[16]的方法測(cè)定，有部分改動(dòng).取0.2 g淀粉樣品置錐形瓶中，添加15 mL 0.2 mol·L-1醋酸鈉緩沖液(pH 5.2)，混勻后加入10 mL混合酶液(含290 U·mL-1豬胰α-淀粉酶和15 U·mL-1糖化酶)，置37 ℃恒溫水浴中振蕩120 min.于20、120 min各取0.5 mL酶解液，加入4 mL無水乙醇，于4 000 r·min-1離心10 min.取離心上清液，采用D-葡萄糖檢測(cè)試劑盒測(cè)定葡萄糖含量，根據(jù)公式(1)、(2)和(3)分別計(jì)算樣品中快速消化淀粉(ready digestible starch, RDS)、緩慢消化淀粉(slowly digestible starch, SDS)、抗消化淀粉(resistant starch, RS)的含量.

(1)

(2)

RS/%=100-RDS-SDS

(3)

式中：G0—淀粉酶解前的葡萄糖質(zhì)量(mg)；G20—酶解20 min時(shí)的葡萄糖質(zhì)量(mg)；G120—酶解120 min時(shí)的葡萄糖質(zhì)量(mg)；W—樣品的質(zhì)量(mg).

1.2.10數(shù)據(jù)統(tǒng)計(jì)應(yīng)用DPS V7.65軟件分析處理間的差異顯著性(P<0.05)，采用OriginPro 8.0軟件繪圖.

2　結(jié)果與分析

2.1　紫山藥淀粉的基本成分組成

從表1可以看出，紫山藥淀粉樣品中的蛋白質(zhì)、脂肪、灰分和粗纖維含量低，淀粉含量高達(dá)97.26%，表明制備紫山藥淀粉的方法是合理的，淀粉樣品具有較高的純度.

表1　紫山藥淀粉樣品的基本成分(干基)1)Table 1　Basic components of purple yam starch sample (dry basis)

1)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3).

2.2　紫山藥淀粉的顆粒形貌

圖1顯示：紫山藥原淀粉顆粒大多呈不規(guī)則的卵形，且表面光滑、輪廓清晰；韌化處理對(duì)淀粉顆粒形貌影響較小，顆粒表面僅發(fā)生少許形變；經(jīng)濕熱處理的改性淀粉，顆粒表面有部分糊化引起的凹坑現(xiàn)象；經(jīng)壓熱處理的改性淀粉，由于高溫、高壓導(dǎo)致顆粒原有形貌已不存在，形成不規(guī)則的塊狀顆粒.

A：原淀粉;B：韌化改性淀粉;C：濕熱改性淀粉;D：壓熱改性淀粉.圖1　紫山藥原淀粉和改性淀粉的掃描電鏡圖Fig.1　Scanning electronic micrographs of native starch and modified starches prepared from purple yam

2.3　紫山藥淀粉的紅外光譜掃描

1 047/1 022和1 022/995 cm-1處吸收峰的比值可作為淀粉雙螺旋短程結(jié)構(gòu)有序度的指數(shù)，1 047/1 022 cm-1處吸收峰強(qiáng)度的比值越大，表明結(jié)晶度越高；1 022/995 cm-1處吸收峰強(qiáng)度的比值越小，表明淀粉顆粒中雙螺旋的分子有序度越高[17].從圖2可得出，原淀粉及韌化改性、濕熱改性、壓熱改性淀粉在1 047/1 022 cm-1處吸收峰的比值分別為0.628、0.642、0.589和0.518.與原淀粉相比，韌化改性淀粉的結(jié)晶度有所增大，濕熱改性淀粉則有所減小，壓熱改性淀粉的結(jié)晶度最小；原淀粉及韌化改性、濕熱改性、壓熱改性淀粉在1 022/995 cm-1處吸收峰的比值分別為1.17、1.05、1.26和1.43，表明淀粉顆粒中雙螺旋分子的有序度與結(jié)晶度呈正相關(guān).

2.4　紫山藥淀粉的結(jié)晶特性

從圖3可見，紫山藥原淀粉的特征峰出現(xiàn)在5.7°、17.3°、22.4°和24.1°處，表明原淀粉的結(jié)晶類型為B型，這與Nadia et al[18]得出的結(jié)論一致.原淀粉經(jīng)濕熱處理后，淀粉在23.3°處出現(xiàn)了新的吸收峰，在5.7°、22.4°和24.1°處消失，晶型由B型轉(zhuǎn)變?yōu)镃型；經(jīng)韌化和壓熱處理后，淀粉衍射特征峰的位置未改變，依然表現(xiàn)為B型.對(duì)原淀粉及韌化改性、濕熱改性、壓熱改性淀粉的X-射線衍射圖譜進(jìn)行處理，得結(jié)晶度分別為24.75%、25.90%、22.43%和15.36%.表明經(jīng)濕熱和壓熱改性處理后，淀粉的結(jié)晶度均較原淀粉降低，而韌化改性淀粉的結(jié)晶度升高，與紅外光譜掃描所得的結(jié)果一致.有文獻(xiàn)報(bào)道，采用壓熱或濕熱處理的淮山藥淀粉[19]和馬鈴薯淀粉[20]也出現(xiàn)了結(jié)晶度降低的現(xiàn)象.

圖2　紫山藥原淀粉和改性淀粉的紅外光譜掃描圖Fig.2　Fourier transform infrared spectra of native starch and modified starches prepared from purple yam

2.5　紫山藥淀粉的溶解特性

從表2可以看出，經(jīng)改性后，淀粉的溶解度均小于原淀粉，文獻(xiàn)[21]亦報(bào)道熱處理可導(dǎo)致淀粉溶解度減小.與原淀粉相比，韌化改性淀粉在溶解度為50～80 ℃的范圍內(nèi)均減小，僅在90 ℃時(shí)溶解度與原淀粉相當(dāng)；當(dāng)溫度為50 ℃時(shí)濕熱改性淀粉的溶解度與原淀粉相當(dāng)，隨著溫度的升高，溶解度小于原淀粉的溶解度，且溫度越高，差異越大；盡管壓熱改性淀粉的溶解度較原淀粉低，但總體上表現(xiàn)良好.可見，韌化改性淀粉的溶解性較差，濕熱改性淀粉的溶解度不佳，壓熱改性淀粉的溶解度較好.

表2　溫度對(duì)紫山藥原淀粉和改性淀粉溶解度的影響1)Table 2　Effect of temperature on solubility of native starch and modified starch prepared from purple yam

1)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3)；同列數(shù)據(jù)后附不同字母者表示差異顯著(P<0.05)，附相同字母者表示差異不顯著(P>0.05).

表3顯示：各淀粉樣品的膨脹度均隨溫度的升高而增大；溫度為50～60 ℃時(shí)，改性淀粉膨脹度均較原淀粉顯著增大；溫度為80～90 ℃時(shí)，改性淀粉的膨脹度均顯著低于原淀粉(P<0.05).總體而言，韌化改性淀粉的膨脹性較差，濕熱改性淀粉的膨脹性不佳，壓熱改性淀粉的膨脹性較好.

表3　溫度對(duì)紫山藥原淀粉和改性淀粉膨脹度的影響1)Table 3　Effect of temperature on swelling capacity of native starch and modified starch prepared from purple yam

1)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3)；同列數(shù)據(jù)后附不同字母者表示差異顯著(P<0.05)，附相同字母者表示差異不顯著(P>0.05).

各淀粉樣品的溶解度和膨脹度隨溫度的升高而增大，這主要與加熱過程中被破壞的淀粉晶體結(jié)構(gòu)等因素有關(guān)[22].韌化處理促進(jìn)了淀粉中直鏈淀粉分子鏈與支鏈淀粉分子鏈的相互作用，致使分子結(jié)構(gòu)重排，提高了淀粉顆粒結(jié)晶的完美性及分子有序化，導(dǎo)致淀粉溶出率降低及顆粒水合能力下降[23]，因此，溶解度和膨脹度與原淀粉相比較低；濕熱作用下的水分子吸收了強(qiáng)輻射熱，變成高能水分子，使淀粉結(jié)晶結(jié)構(gòu)改變形成小的網(wǎng)絡(luò)結(jié)構(gòu)，晶型由B型轉(zhuǎn)變?yōu)镃型，同時(shí)，直鏈淀粉與直鏈淀粉、直鏈淀粉與脂質(zhì)之間的相互作用更加緊密，極大地限制淀粉的溶解和膨脹[24]；與濕熱處理不同的是，高壓與過量的水分促使原淀粉顆粒破碎，鏈段部分裂解，重新取向、結(jié)晶[25]，使得結(jié)晶區(qū)中被切斷的氫鍵數(shù)目增多、雙螺旋結(jié)構(gòu)破壞，游離的水分子更容易滲透到淀粉分子內(nèi)部，因此具有良好的吸水膨脹性和溶解性.

2.6　紫山藥淀粉的熱焓特性

由表4可知，改性淀粉糊化的To、Tp和Tc均顯著高于原淀粉(P<0.05)，其中，壓熱改性淀粉的糊化溫度最高，濕熱改性淀粉次之，韌化改性淀粉相對(duì)較小.與原淀粉相比，濕熱和壓熱處理導(dǎo)致淀粉糊化焓顯著降低(P<0.05)，其中，壓熱改性淀粉糊化焓大幅度降低.

表4　紫山藥原淀粉和改性淀粉的熱力學(xué)特性參數(shù)1)Table 4　Thermal properties of native starch and modified starch prepared from purple yam

1)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3)；同列數(shù)據(jù)后附不同字母者表示差異顯著(P<0.05)，附相同字母者表示差異不顯著(P>0.05).

糊化溫度(To、Tp和Tc)與淀粉顆粒內(nèi)部晶體部分的結(jié)晶狀況密切相關(guān)，內(nèi)部晶體結(jié)構(gòu)的破壞會(huì)引起低熔點(diǎn)結(jié)晶向高熔點(diǎn)結(jié)晶轉(zhuǎn)變[26].韌化過程通過對(duì)結(jié)晶層雙螺旋鏈的作用使淀粉顆粒的完整度增加，晶體結(jié)構(gòu)更趨完美化[27]，提高了淀粉自身的結(jié)晶度，導(dǎo)致韌化改性淀粉To、Tp和Tc增大；相對(duì)于韌化改性淀粉對(duì)原有結(jié)晶結(jié)構(gòu)的調(diào)整，濕熱，特別是壓熱處理致使淀粉原有結(jié)晶遭到破壞，結(jié)晶度降低，部分晶體重新締合形成新的高熔點(diǎn)結(jié)晶，導(dǎo)致To、Tp和Tc較原淀粉顯著增大.

糊化焓指雙螺旋結(jié)構(gòu)分離所需能量，與雙螺旋短程結(jié)構(gòu)有序性密切相關(guān)[28].韌化溫度的適宜及水分的過量，加速了水化速率和葡聚糖鏈的流動(dòng)，導(dǎo)致雙螺旋鏈在一定范圍內(nèi)的并排移動(dòng)形成完美的晶型結(jié)構(gòu)[29]，規(guī)則的雙螺旋結(jié)構(gòu)解旋需要更多能量，因此與原淀粉相比糊化焓升高；淀粉顆粒中存在的雙螺旋結(jié)構(gòu)隨劇烈的熱能而發(fā)生降解，同時(shí)水分的存在促使?jié)駸崽幚磉^程中淀粉分子鏈間相互作用，限制了非結(jié)晶區(qū)的移動(dòng)性[25]，導(dǎo)致了淀粉糊化焓降低；高溫和高壓作用，迫使淀粉內(nèi)部結(jié)構(gòu)發(fā)生斷裂，雙螺旋結(jié)構(gòu)無序度增加，表現(xiàn)出壓熱改性淀粉的糊化焓顯著降低.

2.7　紫山藥淀粉的消化特性

表5　紫山藥原淀粉和改性淀粉中的RDS、SDS和RS含量1)Table 5　Content of RDS, SDS and RS in native starch and modified starches prepared from purple yam

1)數(shù)據(jù)為平均值±標(biāo)準(zhǔn)差(n=3)；同列數(shù)據(jù)后附不同字母者表示差異顯著(P<0.05)，附相同字母者表示差異不顯著(P>0.05).

表5顯示，紫山藥原淀粉中RDS和SDS的含量較少，RS的含量最高，表明生淀粉難以消化利用.與原淀粉相比，韌化改性淀粉的RDS含量降低，SDS含量顯著增加，RS含量為75.87%，可利用性仍然很差；濕熱改性淀粉的可消化淀粉(RDS+SDS)大幅度增加，特別是SDS含量增幅最大，表現(xiàn)出良好的慢速消化特性；壓熱改性淀粉的RDS和SDS含量均明顯增大，特別是RDS含量很高，而RS含量很低，因此具有很好的快速消化特性.

淀粉的酶解速率與淀粉顆粒形貌、結(jié)晶類型以及雙螺旋結(jié)構(gòu)等因素有關(guān).完整的顆粒表面抑制淀粉酶浸入顆粒內(nèi)部，可提高淀粉的抗酶解性[30]；有序的雙螺旋結(jié)構(gòu)、完整且致密的結(jié)晶結(jié)構(gòu)較難酶解[31].在韌化溫和的作用條件下，淀粉基本保持原有的顆粒形貌，形成較高的結(jié)晶度以及有序的分子結(jié)構(gòu)抑制了淀粉的酶解，因此韌化改性淀粉的消化性不佳.在濕熱蒸汽的作用下，氫鍵受到破壞導(dǎo)致淀粉的雙螺旋結(jié)構(gòu)發(fā)生解旋，淀粉顆粒不再致密，水分子進(jìn)入顆粒內(nèi)部，使顆粒結(jié)構(gòu)發(fā)生改變，反應(yīng)在淀粉顆粒外部的現(xiàn)象就是淀粉顆粒表面的凹坑，結(jié)晶度和雙螺旋結(jié)構(gòu)的有序度較低，因此濕熱改性淀粉的消化性得以明顯改善.高溫和壓力的協(xié)同作用伴隨著部分分子鏈的斷裂、瓦解，顆粒內(nèi)部結(jié)晶區(qū)氫鍵破壞，結(jié)晶度和雙螺旋結(jié)構(gòu)的有序度最低，同時(shí)淀粉顆粒結(jié)構(gòu)破碎增大了與酶接觸的表面積，更易被淀粉酶結(jié)合利用[32]，因此，壓熱改性淀粉的可消化性最好.

3　結(jié)論

不同熱處理?xiàng)l件，如溫度、時(shí)間和水分等導(dǎo)致紫山藥淀粉表面結(jié)構(gòu)受到不同程度的破壞，同時(shí)引起淀粉內(nèi)部雙螺旋分子的有序度和晶體結(jié)構(gòu)發(fā)生變化，致使改性淀粉溶解與膨潤特性、熱焓和消化特性均明顯不同，擴(kuò)大了紫山藥淀粉在食品工業(yè)及其他行業(yè)的應(yīng)用范圍.其中，韌化改性淀粉表現(xiàn)出較差的溶解度、膨脹度和消化性，糊化溫度為76.25～84.42 ℃，糊化焓最高(7.84 J·g-1)；濕熱改性淀粉具有良好的緩慢消化特性，糊化溫度較高(89.20～106.83 ℃)，糊化焓較低(6.06 J·g-1)，溶解度和膨脹度最差；壓熱改性淀粉具有較好的溶解、膨潤以及快速消化的特性，其糊化溫度為98.72～120.52 ℃，糊化焓為1.96 J·g-1.

[1] YIN J M, YAN R X, ZHANG P T, et al. Anthocyanin accumulation rate and the biosynthesis related gene expression inDioscoreaalata[J]. Biologia Plantarum, 2015,59(2):325-330.

[2] LAWAL O S. Starch hydroxypropylation: Physicochemical properties and enzymatic digestibility of native and hydroxypropylated finger millet (Eleusinecoracana) starch [J]. Food Hydrocolloids, 2009,23:415-425.

[3] 張微,趙凱.改性淀粉在焙烤制品中的應(yīng)用[J].農(nóng)產(chǎn)品加工·學(xué)刊,2011,6:79-80.

[4] 李素云,鮑彤華.變性淀粉在肉制品中的應(yīng)用及發(fā)展[J].肉類研究,2008(5):22-24.

[5] JAYAKODY L, HOOVER H, LIU Q, et al. Studies on tuber starches Ⅲ. Impact of annealing on the molecular structure, composition and physicochemical properties of yam (Dioscoreasp.) starches grown in Sri Lanka [J]. Carbohydrate Polymers, 2009,76(1):145-153.

[6] JAYAKODY L, HOOVER R. Effect of annealing on the molecular structure and physicochemical properties of starches from different botanical origins—A review [J]. Carbohydrate Polymers, 2008,74(3):691-703.

[7] SILVA W M F, BIDUSKI B, LIMA K O, et al. Starch digestibility and molecular weight distribution of proteins in rice grains subjected to heat-moisture treatment [J]. Food Chemistry, 2017,219:260-267.

[8] DUNDAR A N, GOCMEN D. Effects of autoclaving temperature and storing time on resistant starch formation and its functional and physicochemical properties [J]. Carbohydrate Polymers, 2013,97(2):764-771.

[9] MORIYA C, HOSOYA T, AGAWA S, et al. New acylated anthocyanins from purple yam and their antioxidant activity [J]. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2015,79(9):1 484-1 492.

[10] GUO X X, SHA X H, CAI S B, et al. Chinese purple yam (DioscoreaalataL.) extracts inhibit diabetes-related enzymes and protect HepG2 cells against oxidative stress and insulin resistance induced by FFA [J]. Food Science and Technology International, 2015,21(5):677-683.

[11] 汪穎.蓮子抗性淀粉制備、性質(zhì)及其對(duì)雙歧桿菌增殖效應(yīng)的研究[D].福州:福建農(nóng)林大學(xué),2013.

[12] 杜雙奎,王華,趙佳,等.韌化處理對(duì)不同玉米淀粉理化特性的影響[J].食品科學(xué),2012,33(17):78-81.

[13] XIA H P, LI Y Y, GAO Q Y. Preparation and properties of RS4 citrate sweet potato starch by heat-moisture treatment [J]. Food Hydrocolloids, 2016,55:172-178.

[14] 張麗芳,宋洪波,安鳳平,等.淮山藥淀粉及其抗性淀粉理化性質(zhì)的比較[J].中國糧油學(xué)報(bào),2014,29(3):24-29.

[15] GANI A, BASHIR M, WANI S M, et al. Modification of bean starch by c-irradiation: Effect on functional and morphological properties [J]. LWT-Food Science and Technology, 2012,49(1):162-169.

[16] ENGLYST H N, KINGMAN S M, CUMMINGS J H. Classification and measurement of nutritionally important starch fractions [J]. European Journal of Clinical Nutrition, 1992,46(2):30-50.

[17] WANG S, WANG J, ZHANG W, et al. Molecular order and functional properties of starches from three waxy wheat varieties grown in China [J]. Food Chemistry, 2015,181:43-50.

。[18] NADIA L, WIRAKARTAKUSUMAH M A, ANDARWULAN N, et al. Characterization of physicochemical and functional properties of starch from five yam (Dioscoreaalata) cultivars in Indonesia [J]. International Journal of Chemical Engineering and Applications, 2014,5(6):489-496.

[19] WANG S J, WANG J R, WANG S K, et al. Annealing improves paste viscosity and stability of starch [J]. Food Hydrocolloids, 2017,62:203-211.

[20] VERMEYLEN R, GODERIS B, DELCOUR J A. An X-ray study of hydrothermally treated potato starch [J]. Carbohydrate Polymers, 2006,64(2):364-375.

[21] JACOBS H, MISCHENKON, KOCH M H J, et al. Evaluation of the impact of annealing on gelatinisation at intermediate water content of wheat and potato starches: A differential scanning calorimetry and small angle X-ray scattering study [J]. Carbohydrate Research, 1998,306(1-2):1-10.

[22] CORREIA P R, NUNES M C, BEIRAO-DA-COSTA M L. The effect of starch isolation method on physical and functional properties of Portuguese nuts starches. Ⅰ. Chestnuts (CastaneasativaMill. var. Martainha and Longal) fruits [J]. Food Hydrocolloids, 2012,27(1):256-263.

[23] OLUWATOOYIN F O, KUDIRAT T S, RUDOLF M. Dynamic rheological and physicochemical properties of annealed starches from two cultivars of cassava [J]. Carbohydrate Polymers, 2011,83(4):1 916-1 921.

[24] LI S L, WARD R, GAO Q Y. Effect of heat-moisture treatment on the formation and physicochemical properties of resistant starch from mung bean (Phaseolusradiatus) starch [J]. Food Hydrocolloids, 2011,25(7):1 702-1 709.

[25] 趙凱.淀粉非化學(xué)改性技術(shù)[M].北京:化學(xué)工業(yè)出版社,2008:99-100.

[26] MIAO M, ZHANG T, MU W M, et al. Effect of controlled gelatinization in excess water on digestibility of waxy maize starch [J]. Food Chemistry, 2010,119:41-48.

[27] SENAY S, MARIBEL O, KRISTIN W, et al. Effect of acetylation, oxidation and annealing on physicochemical properties of bean starch [J]. Food Chemistry, 2012,134 (4):1 796-1 803.

[28] ZENG F, ZHU S M, CHEN F Q, et al. Effect of different drying methods on the structure and digestibility of short chain amylose crystals [J]. Food Hydrocolloids, 2016,52:721-731.

[29] TESTER R F, DEBON S J J, DAVIES H V, et al. Effect of temperature on the synthesis, composition and physical properties of potato starch [J]. Journal of the Science of Food and Agriculture, 1999，79:2 045-2 051.

[30] 賀永朝,吳梟锜,宋洪波,等.高壓均質(zhì)改性淮山藥淀粉及其消化性的研究[J].現(xiàn)代食品科技,2016,32(4):227-233.

[31] MIAO M, ZHANG T, MU W, et al. Structural characterizations of waxy maize starch residue followinginvitropancreatin and amyloglucosidase synergistic hydrolysis [J]. Food Hydrocolloids, 2011,25(2):214-220.

[32] 趙娜.陰米淀粉的理化性質(zhì)、體外消化性以及老化動(dòng)力學(xué)研究[D].武漢:華中農(nóng)業(yè)大學(xué),2010.