劉超,韋蘇,張琨瑋,祝倩,李燁儀,榮玉美,趙俊玉,李無(wú)為,尚曼,宋君秋,吳燕娜,劉艷霞
(天津醫(yī)科大學(xué)藥理學(xué)系,天津300070)
目前臨床上治療心肌梗死的方法有經(jīng)皮冠狀動(dòng)脈介入治療、心臟冠狀動(dòng)脈搭橋術(shù)、血栓溶解療法等。缺血的心肌組織在短時(shí)間內(nèi)獲得血液再灌注和氧氣供應(yīng)的同時(shí)也加重了心肌損傷即缺血/再灌注(ischemia/reperfusion,I/R)損傷,其損傷的主要原因是缺血導(dǎo)致的細(xì)胞缺氧和細(xì)胞酸中毒等[1]。心肌缺血預(yù)適應(yīng)(ischemic preconditioning,IPC)是治療心肌I/R損傷的最具前景的方法[2]。目前心肌IPC作用的分子機(jī)制仍有待進(jìn)一步完善。微囊泡(microvesicles,MVs)是由質(zhì)膜直接脫落的直徑在100~1 000 nm的微小囊泡。當(dāng)細(xì)胞自身生理發(fā)生改變或受到外來(lái)刺激,如組織缺血、氧化損傷、剪切力、細(xì)胞蛋白復(fù)合物的改變等,導(dǎo)致細(xì)胞內(nèi)鈣超載,質(zhì)膜失去平衡,細(xì)胞膜褶皺形成MVs釋放到細(xì)胞外[3-4]。本實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn),大鼠IPC處理后,循環(huán)血中總MVs的含量明顯增加,且IPC-MVs通過(guò)線粒體和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)兩種途徑顯著減輕心肌I/R損傷,MVs中內(nèi)皮來(lái)源的MVs(EMVs)明顯增加,但內(nèi)皮來(lái)源的MVs在IPC對(duì)心肌的作用是未知的[5]。由于動(dòng)物水平的IPC模型受到多種體內(nèi)體外因素的影響,造成了在體模型的不穩(wěn)定,不能準(zhǔn)確的反映生物活性物質(zhì)的作用機(jī)制。因此本實(shí)驗(yàn)體外細(xì)胞HPC模型模擬體內(nèi)IPC,進(jìn)一步探討EMVs對(duì)于心肌細(xì)胞的影響,了解IPC的作用機(jī)制,為臨床治療缺血性損傷提供策略。
1.1材料人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞(HUVECs,中國(guó)科學(xué)院細(xì)胞庫(kù)),H9c2心肌細(xì)胞系 (ATCC),胎牛血清,DMEM(高糖),青鏈霉素混合液,MTT(Solarbio),BCA法蛋白定量檢測(cè)試劑盒(Solarbio),Hoechst33258試劑盒,Caspase 3檢測(cè)試劑盒 (江蘇碧云天生物技術(shù)研究所),LDH測(cè)定試劑盒 (南京建成生物工程研究所),Bcl-2 抗體 (Santa Cruz),Bax、β-actin 抗體(Cell Signaling Technology)。
1.2實(shí)驗(yàn)方法
1.2.1HUVECs缺氧預(yù)適應(yīng)(HPC)模型的建立細(xì)胞培養(yǎng)與實(shí)驗(yàn)分組:HUVECs細(xì)胞以6×104個(gè)/mL的密度接種于96孔板中,于95%O2-5%CO2、37℃的孵箱中培養(yǎng)24 h,HUVECs分為3組,對(duì)照組、缺氧/復(fù)氧組(H/R)和HPC組。Control組棄去上清后加入200 μL pH 7.4的對(duì)照液,于95%O2-5%CO2、37℃孵箱中培養(yǎng)16h25min。H/R組和HPC組棄去上清后均加入100 μL pH 6.8的缺氧液,H/R組在于95%O2-5%CO2、37℃孵箱中培養(yǎng)25 min,與H/R組不同是,HPC組做短暫缺氧/復(fù)氧處理,即預(yù)先將細(xì)胞置于缺氧裝置中以20 L/min的流速通95%N2-5%CO2混合氣10 min,隨后將HPC組細(xì)胞放置于95%O2-5%CO2、37℃的孵箱培養(yǎng)15 min。H/R組和HPC組同時(shí)進(jìn)行長(zhǎng)時(shí)間的缺氧12 h/復(fù)氧4 h處理,即加入100 μL pH 5.8缺氧液,置于缺氧裝置中以20 L/min的流速通95%N2-5%CO2混合氣15 min達(dá)到平衡狀態(tài)后,于37℃的恒溫孵箱中進(jìn)行長(zhǎng)時(shí)間缺氧12 h的處理,處理完成后取出兩組細(xì)胞置于95%O2-5%CO2、37℃孵箱中復(fù)氧4 h。隨后采用MTT法檢測(cè)各組細(xì)胞存活率。
1.2.2HPC-EMVs的分離提取HUVECs接種于6孔板中,HPC處理后收集細(xì)胞及上清,采用兩步離心法收集HPC-EMVs:4℃,1 800 r/min,離心20 min去除細(xì)胞碎片;收集上清液于13.2 mL超速離心管中,4℃、33 000 r/min,超速離心150 min,得到的沉淀即為 HPC-EMVs,D-hank’s重選后于-20℃保存?zhèn)溆谩?/p>
1.2.3HPC-EMVs的蛋白定量采用BCA蛋白定量法對(duì)HPC-EMVs進(jìn)行蛋白含量的測(cè)定。將HPCEMVs樣品放置于冰上融化后混勻,取15 μL HPCEMVs加入30 μL的裂解液,冰上裂解30 min后混勻。參照試劑盒說(shuō)明書對(duì)HPC-EMVs蛋白含量進(jìn)行檢測(cè)。
1.2.4透射電鏡觀察HPC-EMVs的形態(tài)將HPC-EMVs樣本置于冰上自然融化,待其完全融化后混勻,取40 μL HPC-EMVs懸液滴在銅網(wǎng)上,室溫靜置2 min,將多余的液體用濾紙從側(cè)面吸去。滴入等量的2%磷鎢酸染色液到未完全干的載網(wǎng),室溫放置2 min,將多余的液體用濾紙從側(cè)面吸去。白熾燈照射使其干燥,并在透射電鏡下觀察,選擇合適的視野和放大倍數(shù)進(jìn)行拍照。
1.2.5HPC-EMVs和正常H9c2細(xì)胞共孵育將H9c2細(xì)胞以1×105個(gè)/mL的密度分別接種于培養(yǎng)板中,于95%O2-5%CO2、37℃孵箱中培養(yǎng)24 h。棄去培養(yǎng)液,對(duì)照組換用無(wú)FBS高糖DMEM培養(yǎng)基,HPC-EMVs各組換用預(yù)先用DMEM培養(yǎng)基配制的濃度為 10、30、60 μg/mL 的 HPC-EMVs 懸液,于95%O2-5%CO2、37 ℃孵箱中孵育 4 h。
1.2.6MTT法檢測(cè)細(xì)胞存活率取各組處理完成的細(xì)胞,每孔加入0.5%MTT溶液10μL,放入37℃培養(yǎng)箱中繼續(xù)培養(yǎng)4 h后取出,吸凈孔中液體,每孔加入150 μL DMSO,將培養(yǎng)板置于酶標(biāo)儀中,調(diào)節(jié)波長(zhǎng)為490 nm,震蕩10min,檢測(cè)各孔吸光度。按照OD檢測(cè)組/OD對(duì)照組×100%的公式計(jì)算細(xì)胞存活率。
1.2.7比色法測(cè)定培養(yǎng)液中LDH活性分別取各組H9c2細(xì)胞培養(yǎng)液,參照試劑盒說(shuō)明書采用比色法對(duì)培養(yǎng)液中LDH活力進(jìn)行檢測(cè),LDH活性(U/L)=(測(cè)定孔吸光度-對(duì)照孔吸光度)/(標(biāo)準(zhǔn)孔吸光度-空白孔吸光度)×標(biāo)準(zhǔn)品濃度(0.2 mmol/L)×1 000。
1.2.8Hoechst 33258染色法檢測(cè)細(xì)胞凋亡DHank’s洗滌各組H9c2細(xì)胞2次,每孔加入Hoechst 33258 染色液 1 mL,室溫染色 30 min,D-Hank’s洗2~3次以去除染液,設(shè)置顯微鏡激發(fā)波長(zhǎng)為340 nm,選擇合適的視野觀察細(xì)胞形態(tài)并拍照。
1.2.9比色法測(cè)定Caspase 3活性吸取各組細(xì)胞培養(yǎng)液,備用。收集細(xì)胞于離心管中。在4℃的條件下,400 r/min,離心5 min,小心吸去上清,用D-Hank’s洗滌1次后再次離心。吸盡上清后,6孔板每孔加入含1 mmol PMSF的裂解液100 μL,混勻后,冰上裂解30 min。4℃,8 000 r/min,離心15 min提取蛋白,Bradford法測(cè)定蛋白濃度,參照試劑盒說(shuō)明書使用微量酶標(biāo)儀讀取405 nm處吸光度,繪制標(biāo)準(zhǔn)曲線,計(jì)算樣品中Caspase 3活性。
1.2.10Western blot檢測(cè)Bcl-2/Bax蛋白的表達(dá)收集H9c2細(xì)胞后加入Western及IP裂解液100 μL,混勻后于冰上裂解30min。4℃,8000r/min,離心15min收集蛋白,蛋白定量后取適量蛋白電泳并轉(zhuǎn)移至PVDF膜。5%脫脂奶粉室溫封閉2 h,并在其中加入Bcl-2(1∶1 000)、Bax 抗兔一抗(1∶1 000)和 β-actin(1∶1 000)抗兔一抗,4℃孵育過(guò)夜,一抗孵育結(jié)束后用TBST于搖床上洗膜,每次10 min,共3次。將PVDF膜封于新的雜交袋中,并加入辣根過(guò)氧化物酶標(biāo)記的羊抗兔二抗IgG(1∶1 000),室溫?fù)u動(dòng)孵育2 h,孵育結(jié)束再次洗膜。加入Bcl-2和Bax抗兔一抗(1∶1000),化學(xué)發(fā)光成像儀拍攝蛋白條帶,圖像利用Image J軟件計(jì)算Bcl-2、Bax灰度值,并計(jì)算兩者比值。
1.3統(tǒng)計(jì)學(xué)處理使用SPSS 17.0軟件對(duì)測(cè)定結(jié)果進(jìn)行分析,組間比較使用單因素方差分析檢驗(yàn),對(duì)于單因素方差分析,方差齊時(shí),采用多組間比較LSD法;方差不齊時(shí),采用Tamhane’s T2法。檢驗(yàn)以P<0.05為有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。結(jié)果以±s表示。
2.1成功建立HUVECs HPC模型與對(duì)照組相比,H/R組細(xì)胞存活率在70%左右,說(shuō)明H/R造成細(xì)胞損傷且損傷程度適中,與H/R組相比,HPC組細(xì)胞存活率較H/R組顯著升高(94.83%±2.55%vs 75.98%±4.54%,P<0.01)(圖 1),說(shuō)明 HPC 發(fā)揮了抗H/R損傷的作用,實(shí)驗(yàn)結(jié)果穩(wěn)定且重復(fù)性好,故成功建立HUVECs的HPC模型。
圖1 H/R和HPC模型中HUVECs存活率(n=6,±s)Fig 1 The cells viability of HUVECs in H/R and HPC model(n=6,±s)
2.2HPC-EMVs的蛋白含量和形態(tài)HPC-EMVs的蛋白定量:通過(guò)BCA法標(biāo)準(zhǔn)曲線的公式計(jì)算出HPC-EMVs的蛋白含量為(0.298±0.045)μg/μL。HPC-EMVs的形態(tài):負(fù)染法處理MVs后,在透射電鏡下,選定放大倍數(shù)為6 000倍,結(jié)果發(fā)現(xiàn)HPCEMVs直徑在100~1 000 nm,形狀為圓或橢圓形,且具有和細(xì)胞相似的膜結(jié)構(gòu),有完整的包膜,未見明顯細(xì)胞器結(jié)構(gòu)(圖2)。
圖2 透射電鏡下HPC-EMVs的結(jié)構(gòu)(負(fù)染法,×6.0 K)Fig 2 The structure of HPC-EMVs under transmission electron microscopy(negative dyeing method,×6.0 K)
2.3HPC-EMVs對(duì)H9c2細(xì)胞的損傷作用MTT檢測(cè)發(fā)現(xiàn),與對(duì)照組(100%±0%)相比,HPC-EMVs 30組(90.43%±1.21%)和HPC-EMVs 60組(73.19%±2.11%)細(xì)胞存活率明顯下降(P<0.001),但 HPCEMVs 10組的細(xì)胞存活率(96.31%±1.84%)并無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異;與HPC-EMVs 10組相比,HPC-EMVs 30和60組細(xì)胞存活率顯著下降 (P<0.01或P<0.001);與 HPC-EMVs 30組相比,HPC-EMVs 60 組細(xì)胞存活率亦顯著下降(P<0.001)。由此可見,隨HPC-EMVs濃度增大,H9c2細(xì)胞存活率逐漸下降,且差異具有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義,見圖3A。
LDH檢測(cè)顯示,與對(duì)照組(116.23 U/L±6.88 U/L)相比,HPC-EMVs 30 組(132.97 U/L±4.92 U/L)、60組(157.38 U/L±6.94 U/L)LDH活性顯著升高(P<0.01或P<0.001),但HPC-EMVs10組的LDH水平(114.25U/L±6.31 U/L)略有降低并無(wú)統(tǒng)計(jì)學(xué)差異;與HPCEMVs 10組相比,HPC-EMVs 30和60組LDH活性顯著增加(P<0.001);與HPC-EMVs 30組相比,HPC-EMVs 60組LDH活性亦顯著增加(P<0.001)。LDH活性隨HPC-EMVs濃度的增加呈劑量依賴性顯著性增加,見圖3B。2.4HPC-EMVs對(duì)H9c2細(xì)胞的促凋亡作用及相關(guān)機(jī)制Hoechst33258染色結(jié)果顯示,對(duì)照組細(xì)胞形態(tài)規(guī)則完整,細(xì)胞核染色均勻一致。HPC-EMVs處理后,HPC-EMVs 10組H9c2細(xì)胞可見個(gè)別細(xì)胞核出現(xiàn)固縮凝聚,呈致密濃染;HPC-EMVs 30組凝聚的細(xì)胞核稍增多;HPC-EMVs 60組細(xì)胞核固縮濃染明顯增多,細(xì)胞核分裂成碎片,胞核致密濃染,即凋亡細(xì)胞數(shù)目增加,見圖4A。
Caspase 3活性檢測(cè)結(jié)果顯示,與對(duì)照組(140.04 U/μg±10.37 U/μg) 比較,HPC-EMVs 60 組Caspase 3 活性顯著升高(307.29 U/μg±9.25 U/μg,P<0.001);與 HPC-EMVs 10(142.51 U/μg±10.55 U/μg)和 HPC-EMVs 30 組(182.78 U/μg ±6.58 U/μg)比,HPC-EMVs60組Caspase3活性也有顯著增高(P<0.001),見圖4B;Western blot檢測(cè)顯示,與對(duì)照比,HPCEMVs各組隨MVs濃度增大,Bcl-2的條帶逐漸變淺,HPC-EMVs 60組條帶幾乎消失,Bax的條帶逐漸加深,Bcl-2/Bax比值降低,見圖4C。
圖3 A.HPC-EMVs對(duì)正常H9c2細(xì)胞存活率的影響(n=6,±s)B.HPC-EMVs對(duì)正常H9c2細(xì)胞培養(yǎng)上清液LDH活性的影響(n=6,±s)Fig 3 A.Effects of HPC-EMVs on normal H9c2 cell viability(n=6,±s)B.Effects of HPC-EMVs on LDH activity in supernatant of normal H9c2 cells(n=6,±s)
圖4 A.HPC-EMVs對(duì)正常H9c2細(xì)胞Hoechst染色的影響(×200);B.HPC-EMVs對(duì)正常H9c2細(xì)胞Caspase 3活性的影響(n=6,±s);C.HPC-EMVs對(duì)正常H9c2細(xì)胞Bcl-2/Bax蛋白表達(dá)的影響(n=3,±s)Fig 4 A.Effects of HPC-EMVs on Hoechst staining in normal H9c2 cells (×200);B.Effects of HPC-EMVs on the activity of Caspase 3 in normal H9c2 cells(n=6,±s);C.Effects of HPCEMVs on the protein of Bcl-2/Baxin normal H9c2 cells(n=6,±s)
血管內(nèi)皮功能紊亂作為心肌缺血損傷的起始環(huán)節(jié),其與IHD的發(fā)生發(fā)展密切相關(guān)。IPC指的是短暫的剝奪特定器官或組織的血液供應(yīng)后,給予短時(shí)間的再灌注的處理,進(jìn)而對(duì)后續(xù)的長(zhǎng)時(shí)間的缺血/再灌注損傷發(fā)揮保護(hù)作用[6]。心肌缺血/再灌注損傷常伴發(fā)嚴(yán)重的心肌損傷,心肌細(xì)胞出現(xiàn)不可逆性的凋亡和壞死。實(shí)驗(yàn)室前期發(fā)現(xiàn),來(lái)自H/R處理的人臍靜脈內(nèi)皮細(xì)胞的微泡促進(jìn)H9c2心肌細(xì)胞的凋亡和氧化應(yīng)激[7]。本研究證實(shí)HPC-EMVs對(duì)正常H9c2心肌細(xì)胞有損傷作用,并發(fā)現(xiàn)其通過(guò)降低H9c2細(xì)胞的抗凋亡蛋白Bcl-2和促凋亡蛋白Bax的比值,增加Caspase 3活性發(fā)揮作用。
將細(xì)胞進(jìn)行缺氧處理,是最接近在體缺血過(guò)程及機(jī)制的細(xì)胞模型[8-9]。本實(shí)驗(yàn)室前期在細(xì)胞水平選用酸性的缺氧液模擬I/R損傷時(shí)的細(xì)胞酸中毒以及通入N2-CO2混合氣模擬細(xì)胞缺氧時(shí)的無(wú)氧環(huán)境建立了I/R損傷模型并達(dá)到了良好的損傷程度和重復(fù)性,為內(nèi)皮細(xì)胞的HPC模型提供了前提[7]。因此本實(shí)驗(yàn)采用體外的細(xì)胞缺氧預(yù)適應(yīng)模型,探索內(nèi)皮細(xì)胞來(lái)源的MVs在HPC過(guò)程中的作用機(jī)制。
Caspase家族主要在凋亡的執(zhí)行階段起主要作用,凋亡的發(fā)生是一系列Caspase家族成員共同參與完成的。其中,Caspase 3被認(rèn)為是各種凋亡刺激因子激活的Caspase家族中的關(guān)鍵蛋白酶。Caspase 3可被該家族其他成員活化,引起DNA損傷修復(fù)酶降解,同時(shí)激活核酸內(nèi)切酶,從而使細(xì)胞凋亡[10]。Bcl-2家族是細(xì)胞凋亡基因之一,其中Bcl-2是原癌基因,Bcl-2可抑制細(xì)胞凋亡,而Bax的作用正好相反,Bax的表達(dá)或過(guò)表達(dá),可促使細(xì)胞凋亡,Bcl-2/Bax的比值將決定細(xì)胞是否發(fā)生凋亡[11]。本實(shí)驗(yàn)室前期研究發(fā)現(xiàn)IPC-MVs對(duì)I/R大鼠心肌具有保護(hù)作用,并證明其機(jī)制為上調(diào)I/R心肌組織中Bcl-2的蛋白表達(dá),下調(diào)Bax的蛋白表達(dá),降低Caspase 3活力[12];本研究進(jìn)一步證實(shí)HPC-EMVs同樣通過(guò)下調(diào)H9c2心肌細(xì)胞中Bcl-2的蛋白表達(dá),上調(diào)Bax的蛋白表達(dá),下調(diào)Bcl-2/Bax的比值,升高Caspase 3活力發(fā)揮促凋亡作用。
本研究發(fā)現(xiàn)HPC-EMVs對(duì)正常培養(yǎng)的H9c2有促進(jìn)凋亡的作用,原因有如下幾點(diǎn):首先,在MV的提取時(shí)間方面,本研究對(duì)HUVECs進(jìn)行短暫缺氧/復(fù)氧后又進(jìn)行了長(zhǎng)時(shí)間的缺氧/復(fù)氧處理,最終提取的MVs,不排除在長(zhǎng)時(shí)間的缺氧/復(fù)氧中,產(chǎn)生了損害性的MVs的可能。其次,在MVs的作用效果方面,本實(shí)驗(yàn)前期發(fā)現(xiàn)IPC-MVs對(duì)于正常的H9c2細(xì)胞有促進(jìn)凋亡的作用,但對(duì)于H/R損傷的心肌細(xì)胞有保護(hù)作用,即MVs發(fā)揮了雙向的作用。總之,血管內(nèi)皮功能障礙是與缺血性心臟病密切相關(guān)的決定因素。然而內(nèi)皮MVs對(duì)心肌損傷的潛在貢獻(xiàn)尚不清楚,探索MVs的作用機(jī)制成為目前的重點(diǎn)。
參考文獻(xiàn):
[1]Fr?hlich G M,Meier P,White S K,et al.Myocardial reperfusion injury:looking beyond primary PCI[J].Eur Heart J,2013,34(23):1714
[2]Robertson F P,Fuller B J,Davidson B R.An evaluation of ischaemic preconditioning as a method of reducing ischaemia reperfusion injury in liver surgery and transplantation[J].J Clin Med,2017,6(7):pii:E69
[3]Curtis A M,Edelberg J,Jonas R,et al.Endothelial microparticles Sophisticated vesicles modulating vascular function[J].Vasc Med,2013,18(4):204
[4]Mao S S,Sun Q Q,Xiao H H,et al.Secreted miR-34a in astrocytic shedding vesicles enhanced the vulnerability of dopaminergic neurons to neurotoxins by targeting Bcl-2[J].Protein Cell,2015,6(7):529
[5]Liu M,Wang Y L,Shang M,et al.Flow cytometric analysis of circulatingmicrovesiclesderivedfrommyocardialIschemic preconditioning and cardioprotection of Ischemiareperfusi[J].Chin J Appl Physiol,2015,31(6):524
[6]Bystrom P,Foley N,Toledo-Pereyra,et al.Ischemic preconditioning modulates ROS to conferprotectioninliverischemia and reperfusion[J].EXCLI J,2017,6:483
[7]Zhang Q,Shang M,Zhang M X,et al.Microvesicles derived from hypoxia/reoxygenation-treatedhumanumbilicalveinendothelialcells promote apoptosis and oxidative stress in H9c2 cardiomyocytes[J].BMC Cell Biol,2016,17(1):25
[8]Tian Y,Daoud A,Shang J.Effects of bpV(pic)and bpV(phen)on H9c2 cardiomyoblasts during both hypoxia/reoxygenation and H2O2-induced injuries[J].Mol Med Rep,2012,5(3):852
[9]Sakamoto K,Nakahara T,Ishii K.Rho-Rho kinase pathway is involved in the protective effect of early ischemic preconditioning in the rat heart[J].Biol Pharm Bull,2011,34(1):156
[10]Bodiga V L,Thokala S,Vemuri P K,et al.Zinc pyrithione inhibits caspase-3 activity,promotes ErbB1-ErbB2 heterodimerization and suppresses ErbB2 downregulation in cardiomyocytes subjected to ischemia/reperfusion[J].J Inorg Biochem,2015,153:49
[11]Tian X,Shi Y,Liu N,et al.Upregulation of DAPK contributes to homocysteine-induced endothelial apoptosis via the modulation of Bcl2/Bax and activation of caspase 3[J].Mol Med Rep,2016,14(5):4173
[12]王藝璐,劉淼,尚曼,等.心肌缺血預(yù)適應(yīng)循環(huán)血中微囊泡對(duì)大鼠心肌I/R損傷的作用[J].中國(guó)應(yīng)用生理學(xué)雜志,2016,32(2):97
天津醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào)2018年2期