唐夢(mèng)君,周倩,張小燕,張靜,唐修君,陸俊賢,周生,黃勝海,楊星星,高玉時(shí)
(江蘇省家禽科學(xué)研究所,江蘇揚(yáng)州 225125)
彎曲菌(Campylobacter)是全球范圍內(nèi)主要的人獸共患、細(xì)菌性腸道病原菌,導(dǎo)致人致病的彎曲菌中85%以上是空腸彎曲菌(Campylobacter jejuni,C.jejuni),其次是結(jié)腸彎曲菌(Campylobacter coli,C.coli)[1,2],主要引起人的胃腸炎,臨床癥狀從水樣腹瀉到血便,同時(shí)伴有頭疼、腹痛、發(fā)熱,偶有嘔吐[3,4]。據(jù)美國(guó)國(guó)家食品網(wǎng)監(jiān)測(cè),彎曲菌引起的人類腸道感染僅次于沙門(mén)氏菌,每年都有大量的發(fā)病率和死亡病例[5,6]。
由于彎曲菌能夠在家禽腸道內(nèi)大量定植,家禽感染后不表現(xiàn)出任何臨床癥狀,但可持續(xù)向外界排菌且終生帶菌[7]。在屠宰加工的過(guò)程中如果腸道破裂,很容易污染屠宰場(chǎng)地、設(shè)施和水,從而污染禽肉產(chǎn)品[8,9]。世界流行疾病研究指出彎曲菌主要由食品傳染,禽肉產(chǎn)品是主要的傳染源[10]。
近年來(lái),抗生素在食品源動(dòng)物生產(chǎn)上的不合理使用,導(dǎo)致彎曲菌的耐藥性逐步增強(qiáng),耐藥譜逐漸加寬。整合子作為介導(dǎo)細(xì)菌耐藥性播撒的可轉(zhuǎn)移遺傳元件之一,能夠捕獲外源耐藥基因并將其水平傳播,從而使耐藥現(xiàn)象更加嚴(yán)重[11,12]。整合子結(jié)構(gòu)主要包括5’保守區(qū) (5’-conserved segment , 5’-CS) 、 3’保 守 區(qū)(3’-conserved segment,3’-CS)以及中間的可變區(qū)(variable region,VR)。國(guó)內(nèi)外學(xué)者研究表明,在革蘭氏陰性菌中整合子的存在與多重耐藥有密切的關(guān)系,彎曲菌也有報(bào)道檢測(cè)出Ⅰ型整合子[13]。由于食品源耐藥菌和耐藥基因可以通過(guò)食物鏈傳播給人類,因此,給人類健康和食品安全構(gòu)成潛在威脅。
本研究以江蘇省雞肉產(chǎn)品中分離的 95株彎曲菌為研究對(duì)象,對(duì)其耐藥表型、Ⅰ型整合酶基因(int1)、3’-CS及攜帶的基因盒進(jìn)行檢測(cè),以便更好地了解彎曲菌耐藥性的產(chǎn)生和傳播途徑,為控制耐藥性細(xì)菌的產(chǎn)生和傳播提供科學(xué)參考。
1.1.1 菌株
2016年6月~2017年4月,從江蘇省揚(yáng)州、徐州、宿遷和鹽城等各市縣的農(nóng)貿(mào)市場(chǎng)和超市采取雞肉樣共270份,分離鑒定出空腸彎曲菌(C. jejuni)70株,結(jié)腸彎曲菌(C. coli)25株,其彎曲菌分離鑒定方法見(jiàn)文獻(xiàn)[14,15]??漳c彎曲菌標(biāo)準(zhǔn)菌株(NCTC11168)、結(jié)腸彎曲菌標(biāo)準(zhǔn)菌株(ATCC33559)由本室保存,大腸埃希氏菌ATCC25922由揚(yáng)州大學(xué)獸醫(yī)學(xué)院惠贈(zèng)。
1.1.2 培養(yǎng)基與試劑
培養(yǎng)基:Cary-Blair運(yùn)送培養(yǎng)基、CCDA培養(yǎng)基、MH培養(yǎng)基、BHI培養(yǎng)基均購(gòu)自于英國(guó)OXOID公司;彎曲菌分離用抗生素三甲氧芐氨嘧啶、頭孢哌酮、多粘菌素 B、兩性霉素 B、利福平和放線菌酮等購(gòu)自WAKO公司;脫纖維綿羊血購(gòu)買(mǎi)于青島海博生物技術(shù)有限公司;厭氧罐購(gòu)自日本MGC公司;混合氣(5%O2、10%CO2和85%N2)購(gòu)于南京特種氣體廠有限公司;試劑:Ex Taq premix、DL2000 Marker均購(gòu)自大連寶生物;細(xì)菌DNA提取試劑盒購(gòu)自上海生工;其它均為試驗(yàn)常規(guī)試劑。
表1 PCR檢測(cè)Ⅰ類整合子所用引物Table 1 Primers for amplification of class Ⅰ integron detected by PCR
1.1.3 藥敏紙片
共選擇9大類抗生素中的21種常規(guī)藥敏紙片,包括 β-內(nèi)酰胺類的氨芐西林(Ampicillin,AMP,10 μg)、阿莫西林(Amoxicillin,AML,10 μg)、第三代頭孢中的頭孢噻肟(Cefotaxime,CTX,30 μg);碳青霉烯類亞胺培南(Imipenem,IPM,10 μg)和美羅培南(Meropenem,MEM,10 μg);氨基糖苷類有鏈霉素(Streptomycin,S,10 μg)、慶大霉素(Gentamicin,CN,10 μg)、阿米卡星(Amikacin,AK,30 μg)、妥布霉素(Tobramycin,TOB,10 μg)和卡那霉素(Kanamycin,K,30 μg);喹諾酮類有萘啶酸(Nalidixic acid,N,30 μg)、環(huán)丙沙星(Ciprofloxacin,CIP,5 μg)、氧氟沙星(Ofloxacin,LEV,5 μg)和恩諾沙星(Enrofloxacin,ENR,5 μg);大環(huán)內(nèi)酯類有紅霉素(Erythromycin,E,15 μg)和阿奇霉素(Azithromycin,AZM,15 μg);四環(huán)素類有四環(huán)素(Tetracycline,TE,30 μg);潔霉素類有克林霉素(Clindamycin,DA,2 μg);酰胺醇類有氟苯尼考(Florfenicol,F(xiàn)F,30 μg)和氯霉素(Chloramphenicol,C,30 μg);多磷類有磷霉素(Fosfomycin,F(xiàn)OS,10 μg),以上藥敏紙片均購(gòu)買(mǎi)于英國(guó)OXOID公司。
1.1.4 PCR擴(kuò)增引物
Ⅰ型整合酶基因(int1)、3’-CS以及可變區(qū)擴(kuò)增引物,根據(jù)GenBank上登錄的基因序列(KC493654),利用Primer Premier 5.0軟件自行設(shè)計(jì)。引物由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成(表1)。
1.2.1 彎曲菌耐藥性表型檢測(cè)
采用WHO推薦使用的Kirby-Bauer法(紙片瓊脂擴(kuò)散法)檢測(cè)95株分離株對(duì)21種抗生素的敏感性。其操作步驟如下:用無(wú)菌棉簽從MH平板上刮取純化培養(yǎng)的細(xì)菌至500 μL PBS緩沖液中,將菌液稀釋至0.5麥?zhǔn)蠞岫龋?100 μL稀釋后的菌液均勻涂布于MH平板,用無(wú)菌鑷子貼上藥敏紙片,于42 ℃微需氧培養(yǎng)36~48 h后取出,用直尺測(cè)定抑菌圈直徑(mm),結(jié)果判定參照美國(guó)臨床實(shí)驗(yàn)室標(biāo)準(zhǔn)化協(xié)會(huì)(Clinical and Laboratory Standards Institute,CLSI,2015)的標(biāo)準(zhǔn),以抑菌圈直徑大小判斷耐藥(resistant)、中敏(intermediate)和敏感(susceptible)。數(shù)據(jù)采用Excel 2015整理分析。
1.2.2 細(xì)菌DNA模板的制備
將MH血平板純化培養(yǎng)的細(xì)菌用無(wú)菌棉簽刮下洗入PBS緩沖溶液,離心后去除上層液體,采用試劑盒提取基因組DNA。
1.2.3 Ⅰ型整合酶基因(int1)及3'-CS的檢測(cè)
采用25 μL PCR反應(yīng)體系:Ex Taq premix 12.5 μL,上下游引物(10 μM/L)各1 μL,無(wú)菌去離子水9.5 μL,模板 DNA 1 μL。
PCR反應(yīng)條件為:95 ℃預(yù)變性1 min;95 ℃變性30 s,根據(jù)不同引物選擇相應(yīng)的退火溫度,72 ℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳成像。選取PCR陽(yáng)性樣品送上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定,測(cè)序結(jié)果在NCBI上進(jìn)行BLAST分析。
1.2.4 Ⅰ型整合子可變區(qū)的檢測(cè)
采用50 μL PCR反應(yīng)體系:SpeedSTAR HS DNA Polymerase (5 units/μL) 0.25 μL,上下游引物(10 μM/L)各 2 μL,10×Fast Buffer Ⅰ或Ⅱ 5 μL,模板 DNA 2 μL,無(wú)菌去離子水38.75 μL。PCR循環(huán)參數(shù):95 ℃預(yù)變性1 min;95 ℃變性5 s,60 ℃退火15 s,72 ℃延伸1 min,共30個(gè)循環(huán);72 ℃延伸10 min。PCR產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠電泳成像。對(duì)PCR擴(kuò)增陽(yáng)性片段參照TakaRa MiniBEST DNA Fragment Purification Kit Ver.4.0進(jìn)行純化,將純化產(chǎn)物3 μL、pMD20-T載體 1 μL、連接 Buffer 5 μL、T4 DNA Ligase 1 μL,混勻后于16 ℃反應(yīng)過(guò)夜;將連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化DH5α感受態(tài)細(xì)胞,上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司進(jìn)行序列測(cè)定,測(cè)序結(jié)果在GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)中采用BLAST軟件進(jìn)行同源性分析。
圖1 彎曲菌分離株對(duì)21種抗生素的多重耐藥譜Fig.1 Multi-drug resistance profiles of Campylobacter isolates to 21 antimicrobial agents
藥敏試驗(yàn)結(jié)果顯示,從雞肉產(chǎn)品中分離的彎曲菌普遍對(duì)環(huán)丙沙星、頭孢噻肟、氧氟沙星、卡那霉素、氨芐西林、四環(huán)素、萘啶酸、阿莫西林、恩諾沙星、鏈霉素、妥普霉素和克林霉素等有一定的耐藥性(表2),特別是對(duì)環(huán)丙沙星、頭孢噻肟、卡那霉素、氨芐西林和氧氟沙星的耐藥率達(dá)到60%以上,但對(duì)磷霉素、氯霉素、美羅培南敏感。
其中,空腸彎曲菌對(duì)環(huán)丙沙星、氧氟沙星、頭孢噻肟、氨芐西林高度耐藥,其耐藥率達(dá)到70%以上。而結(jié)腸彎曲菌對(duì)頭孢噻肟、卡那霉素、鏈霉素、環(huán)丙沙星、妥布霉素高度耐藥,其耐藥率達(dá)70%以上。91株彎曲菌分離株至少耐4種以上抗生素,95.78%的分離株為多重耐藥菌株(耐3種以上抗生素),最嚴(yán)重可耐16種抗生素,大部分菌株耐7~11種抗生素(見(jiàn)圖1),分離菌株表現(xiàn)出耐藥譜型的多樣性,相同耐藥譜型較少。
表2 彎曲菌分離株對(duì)抗生素的耐藥性Table 2 Results of antimicrobial resistance testing of Campylobacter isolated from chicken meat
2.2.1 Ⅰ型整合酶基因(int1)及 3’端的檢測(cè)結(jié)果
圖2 部分菌株Ⅰ型整合酶基因PCR產(chǎn)物電泳結(jié)果Fig.2 PCR amplification electrophoresis of class Ⅰ integrase gene in Campylobacter isolates
對(duì) 95株彎曲菌進(jìn)行 PCR擴(kuò)增Ⅰ型整合酶基因(int1),檢測(cè)到預(yù)期條帶大小為892 bp(見(jiàn)圖2)。將PCR陽(yáng)性產(chǎn)物進(jìn)行測(cè)序比對(duì),與GenBank中收錄的參考序列相同(核酸序列一致性為100%),測(cè)序結(jié)果鑒定為Ⅰ型整合酶基因,共有45株彎曲菌含有Ⅰ型整合酶基因,其檢出率為47.0%,其中含有Ⅰ型整合酶基因的空腸彎曲桿菌有37株,結(jié)腸彎曲桿菌有8株。對(duì)95株彎曲菌進(jìn)行PCR擴(kuò)增3’-CS端,其中有10株彎曲菌檢測(cè)出了預(yù)期條帶,大小為642 bp,測(cè)序結(jié)果鑒定為目的片段(見(jiàn)圖3)。
圖3 彎曲菌分離株Ⅰ型整合子3’-CS端PCR擴(kuò)增結(jié)果Fig.3 PCR amplification of class Ⅰ integron 3’-CS region in Campylobacter isolates
2.2.2 Ⅰ型整合子可變區(qū)的檢測(cè)結(jié)果
圖4 彎曲菌分離株Ⅰ型整合子可變區(qū)擴(kuò)增結(jié)果Fig.4 PCR amplification of class I integron gene cassette in Campylobacter isolates
進(jìn)一步對(duì)同時(shí)具有Ⅰ型整合酶基因和3’-CS端的10株彎曲菌進(jìn)行可變區(qū)基因盒擴(kuò)增,共有5株為基因盒陽(yáng)性菌株,電泳結(jié)果見(jiàn)圖4,基因盒大小約為1800 bp,與GenBank中GQ214171.1序列的核酸序列一致性為99%,為鏈霉素耐藥的基因盒aadA1,該5株菌藥敏結(jié)果顯示對(duì)鏈霉素均具有耐藥性。
彎曲菌是一種人畜共患病原菌,可引起動(dòng)物和人類發(fā)生多種疾病。常見(jiàn)癥狀為腹瀉性腸炎,通常為自限性無(wú)需抗生素治療。但對(duì)于病情嚴(yán)重、自身免疫力低下等情況,喹諾酮類和大環(huán)內(nèi)酯類常被作為臨床治療用藥[16,17],氨基糖苷類及四環(huán)素類也可用做彎曲菌病的替代藥物。而在畜禽的生產(chǎn)過(guò)程中,抗生素的廣泛應(yīng)用促使了耐藥菌的產(chǎn)生,這些耐藥菌通過(guò)食物鏈傳遞給人類可導(dǎo)致治療失敗。
本研究中彎曲菌的多重耐藥率為95.78%,表明在江蘇地區(qū)雞源彎曲菌的多重耐藥已經(jīng)相當(dāng)普遍。在受測(cè)試的抗菌藥物中,分離株對(duì)環(huán)丙沙星具有較高的耐藥率(83.16%),其原因在于環(huán)丙沙星常用于預(yù)防和治療家禽腹瀉有關(guān)的疾病,導(dǎo)致了耐環(huán)丙沙星彎曲菌的產(chǎn)生。研究顯示不同國(guó)家彎曲菌對(duì)環(huán)丙沙星的耐藥水平并不相同(8%~97.9%)[18,19],發(fā)展中國(guó)家較為嚴(yán)重,而發(fā)達(dá)國(guó)家的耐藥率則較低。
在加拿大,Claudia Narvaez-Bravo等[20]對(duì)從雞肉產(chǎn)品中分離的彎曲菌進(jìn)行耐藥性檢測(cè),其彎曲菌對(duì)環(huán)丙沙星的耐藥率為5.5%。韓國(guó)Lim SK等[21]對(duì)從雞胴體中分離的彎曲菌進(jìn)行耐藥性檢測(cè),彎曲菌對(duì)環(huán)丙沙星、萘啶酸都具有較高的耐藥水平。在本研究中,彎曲菌對(duì)氟苯尼考和磷霉素的耐藥率分別為 0.08%和0.011%,具有很高的敏感性,與國(guó)內(nèi)外研究報(bào)道彎曲菌對(duì)氟苯尼考耐藥率普遍較低的結(jié)果一致[22,18]。Aguilar-Company J研究報(bào)道磷霉素可以有效治療耐大環(huán)內(nèi)脂類和氟喹諾酮類彎曲菌引起的腸道疾病[23]。
細(xì)菌耐藥基因的水平傳播(Horizontal gene transfer,HGT)使得耐藥基因在同種甚至不同種菌株間水平轉(zhuǎn)移,加速了多重耐藥菌株的產(chǎn)生。整合子能捕獲和整合細(xì)菌的耐藥基因,是細(xì)菌多重耐藥性形成和廣泛傳播的重要機(jī)制。近年來(lái),國(guó)內(nèi)外學(xué)者在多種耐藥細(xì)菌中均發(fā)現(xiàn)了整合子的存在[22,24,25],包括彎曲菌。彎曲菌中Ⅰ型整合子的檢出率因地區(qū)差異而不同,O’Halloran F等在愛(ài)爾蘭分離到的彎曲菌中,具有完整整合子結(jié)構(gòu)的菌株檢出率為 16.4%(62/378)[13],而Alessandra Piccirillo等從意大利家禽分離的彎曲菌中未檢出Ⅰ型和Ⅱ型整合子[26]。Ⅰ型整合子中把int1陽(yáng)性、可變區(qū)陽(yáng)性及3’-CS陽(yáng)性的稱之為典型Ⅰ型整合子,只有int1陽(yáng)性的稱之為非典型1類整合子。本研究對(duì)95株彎曲菌進(jìn)行Ⅰ型整合子的PCR檢測(cè),典型Ⅰ型整合子檢測(cè)出10株,非典型Ⅰ型整合子35株。對(duì)典型Ⅰ型整合子的可變區(qū)進(jìn)行基因擴(kuò)增,有5株分離株擴(kuò)增出大小相同的條帶,測(cè)序鑒定為對(duì)氨基糖苷類耐藥的基因盒aadA1,該基因盒也存在于大腸桿菌、沙門(mén)氏菌等細(xì)菌的整合子中[27,28],說(shuō)明該基因盒可以在不同細(xì)菌間傳播,有可能通過(guò)食品源動(dòng)物傳遞給人類,造成耐藥性增加。
本試驗(yàn)顯示分離株呈現(xiàn)多重耐藥性,耐藥譜寬,而檢出的耐藥基因盒比較單一只有氨基糖苷類耐藥基因盒,說(shuō)明在江蘇地區(qū)Ⅰ型整合子存在于雞肉產(chǎn)品彎曲菌中,但并不是彎曲菌產(chǎn)生多重耐藥的主要因素,很有可能存在其他途徑造成耐藥,如攜帶耐藥基因的質(zhì)粒、轉(zhuǎn)座子以及基因島等。
[1]Gillespie I A, O'Brien S J, Frost J A, et al. A case-case comparison of Campylobacter coli and Campylobacter jejuni infection: a tool for generating hypotheses [J]. Emerg. Infect.Dis., 2002, 8(9): 937-942
[2]Scallan E, Hoekstra R M, Angulo F J, et al. Foodborne illness acquired in the United States-major pathogens [J]. Emerg.Infect. Dis., 2011, 17(1): 7-15
[3]Snelling W J, Matsuda M, Moore J E, et al. Campylobacter jejuni [J]. Lett. Appl. Microbiol., 2005, 41(4): 297-302
[4]Black R E, Levine M M, Clements M L, et al. Experimental Campylobacter jejuni infection in humans [J]. J Infect. Dis.,1988, 157(3): 472-479
[5]CDC. Foodborne disease active surveillance network(FoodNet): foodnet surveillance report for 2014(Final Report). U.S. Department of Health and Human Services,CDC, Atlanta, Georgia. 2016
[6]Nyachuba D G. Foodborne illness: is it on the rise? [J]. Nutr.Rev., 2010, 68: 257-269
[7]Lin J. Novel approaches for Campylobacter control in poultry [J]. Foodborne Pathog. Dis., 2009, 6(7): 755-765
[8]Gripp E, Hlahla D, Didelot X, et al. Closely related Campylobacter jejuni strains from different sources reveal a generalist rather than a specialist lifestyle [J]. BMC Genomics, 2011, 12: 584
[9]Rasschaert G, Houf K, Van Hende J, et al. Campylobacter contamination during poultry slaughter in Belgium [J]. J Food Prot, 2006, 69(1): 27-33
[10]Hermans D, Pasmans F, Messens W, et al. Poultry as a host for the zoonotic pathogen Campylobacter jejuni [J]. Vector Borne Zoonotic Dis, 2012, 12(2): 89-98
[11]Chen B, Liang X, Nie X, et al. The role of class I integrons in the dissemination of sulfonamide resistance genes in the Pearl River and Pearl River Estuary, South China [J]. J Hazard Mater, 2015, 282(5): 61-67
[12]Rao S, Maddox C W, Hoien-Dalen P, et al. Diagnostic accuracy of class 1 integron PCR method in detection of antibiotic resistance in Salmonella isolates from swine production systems [J]. J Clin. Microbiol., 2008, 46(3):916-920
[13]O'Halloran F, Lucey B, Cryan B, et al. Molecular characterization of class 1 integrons from Irish thermophilic Campylobacter spp [J]. J Antimicrob Chemother, 2004, 53(6):952-957
[14]周倩,唐夢(mèng)君,張小燕,等.江蘇省禽源空腸彎曲桿菌的分離鑒定及耐藥性研究[J].中國(guó)人獸共患病學(xué)報(bào),2017,33(6):495-500 ZHOU Qian, TANG Meng-jun, ZHANG Xiao-yan, et al.Isolation, identification and antimicrobial resistance of Campylobacter Jejuni isolates from poultry in jiangsu province [J]. Chinese Journal of Zoonoses, 2017, 33(6): 495-500
[15]唐夢(mèng)君,周倩,張小燕,等.雞源結(jié)腸彎曲菌耐藥性分析[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2017,38(9):18-22 TANG Meng-jun, ZHOU Qian, ZHANG Xiao-yan, et al.Antimicrobial resistance of Campylobacter coli isolated from chickens [J]. Progress in Veterinary Medicine, 2017, 38(9):18-22
[16]Allos B M. Campylobacter jejuni infections: update on emerging issues and trends [J]. Clin Infect Dis, 2001, 32:1201-1206
[17]Engberg J, Aarestrup F M, Taylor D E, et al. Quinolone and macrolide resistance in Campylobacter jejuni and C.coli:resistance mechanisms and trends in human isolates [J].Emerg. Infect. Dis., 2001, 7: 24-34
[18]Kos V N, Keelan M, Taylor D E, et al. Antimicrobial susceptibilities of campylobacter jejuni isolates from poultry from Alberta, Canada [J]. Antimicrob Agents Chemother,2006, 50(2): 778-780
[19]Sierra-Arguello Y M, Perdoncini G, Morgan R B, et al.Fluoroquinolone and macrolide resistance in Campylobacter jejuni isolated from broiler slaughterhouse in southern Brazil[J]. Avian Pathol, 2016, 45: 66-72
[20]Claudia N B, Eduardo N T, Steven K, et al. Epidemiology of antimicrobial resistant Campylobacter spp. isolated from retail meats in Canada [J]. International Journal of Food Microbiology, 2017, 253: 43-47
[21]Lim S K, Moon D C, Chae M H, et al. Macrolide resistance mechanisms and virulence factors in erythromycin-resistant Campylobacter species isolated from chicken and swine feces and carcasses [J]. J Vet. Med. Sci., 2017, 78(12):1791-1795
[22]胡欣潔,韓新鋒,朱冬梅.等.肉雞源多重耐藥空腸、結(jié)腸彎曲菌的耐藥分子特征[J].中國(guó)人獸共患病學(xué)報(bào),2015,31(8):694-699 HU Xin-jie, HAN Xin-feng, ZHU Dong-mei, et al.Molecular characteristics of multidrug resistant Campylobacter jejuni and Campylobacter coli isolated from broilers [J]. Chinese Journal of Zoonoses, 2015, 31(8): 694-699
[23]Auilar-Company J, Los-Arcos I, Pigrau C, et al. Potential use of fosfomycin-tromethamine for treatment of recurrent campylobacter species enteritis [J]. Antimicrob Agents Chemother, 2016, 60(7): 4398-4400
[24]Meng X, Zhang Z, Wang Y, et al. Antibiotic susceptibility and molecular screening of class Ⅰ integron in Salmonella isolated recovered from retail raw chicken carcasses in china[J]. Microb. Drug Resist., 2017, 23(2): 230-235
[25]Oliveira-Pinto C, Diamantiano C, Oliveria P L, et al.Occurrence and characterization of class 1 integrons in Escherichia coli from healthy individuals and those with urinary infection [J]. J Med. Microbiol., 2017, 66(5): 577-583
[26]Alessandra Piccirillo, Giorgia Dotto, Cristiano Salata, et al.Absence of class Ⅰ and class Ⅱ integrons among Campylobacter jejuni and Campylobacter coli isolated from poultry in Italy [J]. J Antimicrob Chemother, 2013, 68(11):2683-2685
[27]Kheiri R, Akhtari L. Antimicrobial resistance and integron gene cassette arrays in commensal Escherichia coli from human and animal sources in IRI [J]. Gut Pathog, 2016, 8(1):40-44
[28]Canal N, Meneghetti K L, De Almeida C P, et al.Characterization of the variable region in the class 1 integron of antimicrobial-resistant Escherichia coli isolated from surface water [J]. Braz. J Microbiol., 2016, 47(2): 337-344