基于植物DNA條形碼技術(shù)對杏仁露中花生源性成分的鑒別研究

韓晴，王贊，章晶晶，李月華，楊嵐，周巍，張巖，張志勝

（1.河北農(nóng)業(yè)大學(xué)食品科技學(xué)院，河北保定 071000）（2.河北省食品檢驗研究院，河北省食品安全重點實驗室，河北石家莊 050071）

DNA條形碼類似于商品條形碼，可以有效的辨別各種動物、植物[1～3]。它是現(xiàn)今可用于生物多樣性、生態(tài)學(xué)、食品檢測、生物檢驗檢疫等方面的一種新興技術(shù)。其在動物源性食品中的應(yīng)用已相對成熟，目前常用于動物DNA條形碼的基因為COI。而在植物源性食品中的應(yīng)用正在迅猛發(fā)展[4～9]，常用于植物DNA條形碼的基因組有ITS、matK、rbcL、trnH-psbA，它們被認為是潛在的優(yōu)秀的植物 DNA條形碼候選序列[10～12]。DNA條形碼技術(shù)雖多在動植物分類學(xué)上有所應(yīng)用[13,14]，但在國外該技術(shù)也成功的應(yīng)用在了某些食品中植物源性成分的鑒定[15,16]。

杏仁露作為植物蛋白飲料中的一種，老少皆宜。同時也是一種深加工食品，有著復(fù)雜的加工工藝，使它失去了本身的性狀，應(yīng)用傳統(tǒng)的分類學(xué)無法對其辨別。這就給了不法商家可乘之機，進行摻假造假，損害消費者的利益。找到行之有效的鑒別方法，對保護廣大消費者的權(quán)益意義重大。

目前對于工藝復(fù)雜的深加工食品摻假檢測常采用設(shè)計特異性引物對提取的樣品總基因組 DNA進行PCR擴增的方法，但需要根據(jù)可能摻入的物種去設(shè)計不同的特異性引物，如魏曉璐等[17]對核桃露中花生和大豆源性成分進行檢測，分別設(shè)計了核桃、花生、大豆的特異性引物；覃芳芳等[18]用了大豆和杏仁的內(nèi)源基因設(shè)計引物對杏仁產(chǎn)品中杏仁成分檢測。而應(yīng)用植物DNA條形碼技術(shù)設(shè)計的通用引物可以達到一次檢測出結(jié)果的目的，更加方便快捷、檢測效率更高。在以上研究基礎(chǔ)上，本研究利用植物DNA條形碼技術(shù)對杏仁露中花生源性成分進行鑒別，建立一種檢測方法，同時也為相關(guān)領(lǐng)域檢測提供一定的參考。

1 材料與方法

1.1 材料與試劑

杏仁、花生、核桃、大豆、芝麻、榛子，力興源杏仁露、熱河杏仁露、太平洋杏仁露、樺維杏仁露、露美達杏仁露、露露杏仁露、哈露杏仁露、樂野杏仁露：石家莊農(nóng)貿(mào)市場、超市。

深加工食品DNA提取試劑盒：天根公司；酚:氯仿:異戊醇(25:24:1)：北京酷來博科技有限公司；異丙醇(分析純)：天津市光復(fù)科技發(fā)展有限公司；無水乙醇(分析純)：天津歐博凱化工有限公司；Premix TaqTM：TaKaRa；2xSuperReal PreMix(Probe)：天根公司；杏仁、花生特異性引物和探針的合成、PCR擴增所用通用引物合成、PCR產(chǎn)物測序：上海生工公司；GelRedTM：Biotium；50x TAE Buffe：生工公司；瓊脂糖：Vivantis；100 bp、1 kb DNA Ladder：Thermo。

1.2 儀器與設(shè)備

1.3 方法

1.3.1 基因組DNA的提取

樣本基因組DNA的提取方法，均采用優(yōu)化后的試劑盒法進行提?。?1)取經(jīng)液氮充分研磨后的樣本組織約100 mg至滅菌離心管中，加入500 μL緩沖液GMO1 和 20 μL 的 Proteinase K(20 mg/μL)，渦旋震蕩1 min；(2)56 ℃孵育1 h，其間每隔15 min將其上下顛倒震蕩一次；(3)等體積加入酚:氯仿:異戊醇(25:24:1)，充分混勻，12000 r/min離心5 min；(4)將上層水相轉(zhuǎn)移至新的離心管中，加入200 μL的緩沖液GMO2，充分混勻，渦旋震蕩1 min，靜置10 min；(5)12000 r/min離心5 min，將上清轉(zhuǎn)移至新的離心管中；(6)向上清液中加入0.7倍體積的異丙醇，充分混勻，-20 ℃靜置30 min，12000 r/min離心3 min，棄上清，保留沉淀；(7)加入700 μL 的70%乙醇，渦旋震蕩5 s，12000 r/min離心2 min，棄上清；(8)重復(fù)(7)；(9)開蓋，室溫放置至徹底晾干殘留的乙醇；(10)加入50 μL的洗脫緩沖液TE，渦旋震蕩1 min，即為提取的基因組DNA溶液。杏仁露樣品的提取方法：先對杏仁露進行預(yù)處理（1）取2 mL樣品于離心管中，加入等體積異丙醇，混勻后靜置15 min，12000 r/min離心10 min，棄上清；（2）重復(fù)步驟（1）；其余步驟同上述提取過程。

1.3.2 樣本準確性的測定

為保證樣本準確性，利用NanoDrop Lite測定提取的基因組DNA的A260/A280值和濃度。以提取的基因組DNA為模板，以杏仁、花生、核桃、大豆、芝麻、榛子的特異性引物和探針(參見標準 SN/T 1961.9-2013、SN/T 1961.2-2007、SN/T 1961.6-2013、SN/T 1961.19-2013、SN/T 1961.12-2013和 SN/T 1961.8-2013)進行實時熒光PCR擴增，觀察增幅情況，以確定樣本的準確性。采用25 μL的擴增體系中添加12.5 μL 2xSuperReal PreMix(Probe)、0.75 μL 上游引物(10 μmol/L)、0.75 μL 下游引物(10 μmol/L)、0.5 μL 探針(10 μmol/L)、2.0 μL DNA 模板(30 μg/mL～100 μg/mL)、8.5 μL ddH2O。反應(yīng)程序為95 ℃預(yù)變性15 min；95 ℃變性3 s，60 ℃退火/延伸20 s采集熒光信號，共40個循環(huán)。

1.3.3 引物設(shè)計

引物 ITS2-1、ITS2-2、ITS2-3、matK-2、matK-3、rbcL-1、trnH-psbA-1、trnH-psbA-2：參考于文獻[19～24]，其中引物trnH-psbA-1參考于對陸生植物DNA條形碼的相關(guān)研究，引物rbcL-1適用于除早熟禾、萵苣屬、佩蘭屬、櫟屬、蒲黃、樺木屬外物種的研究，引物ITS2-1、ITS2-2、ITS2-3、matK-2、matK-3、trnH-psbA-2分別為對蕓香科植物、杜鵑屬植物、蒲黃、萹蓄、茄屬茄科、苦苣菜屬和石榴這些物種的研究。引物序列見表 1。引物 matK-1、rbcL-2：通過 BOLD 數(shù)據(jù)庫(http://www.barcodinglife.org)引物檢索篩選Primer，引 物序列見表1。

表1 基因引物序列Table 1 Primer sequences of genes

1.3.4 PCR擴增

雖然現(xiàn)金流動性較強，但其盈利能力并不高。Jenson（1986）提出的自由現(xiàn)金流量假說認為，如果公司持有過多不必要的現(xiàn)金，管理者會不知不覺地實施現(xiàn)金濫用，從而盲目地進行投資項目，這在無形之間增加了企業(yè)經(jīng)營期間的財務(wù)風(fēng)險，也是對股東權(quán)益損害較大的一種自私自利的行為。由此可知，董事會需要抑制這種惡性投資行為來提高現(xiàn)金配置效率。但是當前現(xiàn)狀是不論出于什么樣的原因，很多公司都愿意超額持有現(xiàn)金量以滿足自己的財務(wù)報表的需求。

利用設(shè)計的各引物與各樣本進行 PCR擴增，50 μL 的擴增體系中添加25 μL Premix TaqTM、2 μL 上游引物(10 μmol/L)、2 μL 下游引物(10 μmol/L)、4 μL DNA 模板(30 μg/mL～100 μg/mL)、17 μL ddH2O。反應(yīng)程序為95 ℃預(yù)變性5 min；然后進入循環(huán)：95 ℃變性30 s、50 ℃ (ITS2-1、ITS2-3、matK-1、matK-2、matK-3、rbcL-1)或 55 ℃ (ITS2-2、rbcL-2、trnH-psbA-1、trnH-psbA-2)退火30 s、72 ℃延伸40 s，共40個循環(huán)；最后72 ℃總延伸10 min。待反應(yīng)完成后取7 μL PCR擴增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠進行電泳檢測。

1.3.5 PCR產(chǎn)物測序及比對

將擴增后的PCR產(chǎn)物置于-20 ℃冷凍，然后裝入提前加入冰袋的保溫箱中送上海生工公司進行雙向測序，測序引物同于擴增引物。所得的測序結(jié)果刪除兩端引物序列，在NCBI上進行BLAST比對，同時結(jié)合BOLD數(shù)據(jù)庫(http://www.boldsystems.org)對樣品的序列進行鑒定分析。

2 結(jié)果與分析

圖1 實時熒光PCR檢測提取的杏仁基因組DNA結(jié)果Fig.1 Almond genome DNA by real time fluorescence PCR

2.1 樣本準確性的測定

圖2 實時熒光PCR檢測提取的花生基因組DNA結(jié)果Fig.2 Peanut genome DNA by real time fluorescence PCR

圖3 實時熒光PCR檢測提取的核桃基因組DNA結(jié)果Fig.3 Walnut genome DNA by real time fluorescence PCR

對提取的基因組DNA的A260/A280值和濃度進行測定，A260/A280值為 1.7～2.0，濃度控制在 30 μg/mL～100 μg/mL，有利于試驗后續(xù)進行[24]。為保證樣本的準確性，利用實時熒光 PCR技術(shù)對提取的杏仁、花生、核桃、大豆、芝麻和榛子基因組DNA進行鑒定，結(jié)果見圖1～6所示。

根據(jù)標準當Ct值<30.0(杏仁、芝麻)、Ct值≤35.0(核桃、大豆、榛子)、Ct值≤40.0（花生），則判定為陽性，由圖1和圖6顯示Ct值均小于30.0，陰性和空白對照均無起跳，證明本試驗的樣本均準確，可用于后續(xù)試驗。

圖4 實時熒光PCR檢測提取的大豆基因組DNA結(jié)果Fig.4 Soybean genome DNA by real time fluorescence PCR

圖5 實時熒光PCR檢測提取的芝麻基因組DNA結(jié)果Fig.5 Sesame genome DNA by real time fluorescence PCR

圖6 實時熒光PCR檢測提取的榛子基因組DNA結(jié)果Fig.6 Hazelnut genome DNA by real time fluorescence PCR

2.2 PCR擴增效果

分別以文獻和BLOD提供的引物與六類物種的基因組DNA進行PCR擴增，并以無菌雙蒸水作為空白對照[25]，擴增產(chǎn)物用瓊脂糖凝膠電泳進行檢測。試驗條件經(jīng)過多次優(yōu)化后，結(jié)果表明引物ITS2-1、ITS2-3、matK-1、matK-2、matK-3、rbcL-1不能完全擴增出六個物種，這幾對引物通用性較差，在后續(xù)實驗中被排除。引物 ITS2-2、rbcL-2、trnH-psbA-1、trnH-psbA-2能全部擴增出六個物種，經(jīng)過瓊脂糖凝膠電泳檢測后結(jié)果見圖7～10。

圖7 引物ITS2-2與六個樣本DNA擴增的結(jié)果Fig.7 Result of primer ITS2-2 in six samples

圖8 引物rbcL-2與六個樣本DNA擴增的結(jié)果Fig.8 Result of primer rbcL-2 in six samples

圖9 引物trnH-psbA-1與六個樣本DNA擴增的結(jié)果Fig.9 Result of primer trnH-psbA-1 in six samples

圖10 引物trnH-psbA-2與六個樣本DNA擴增的結(jié)果Fig.10 Result of primer trnH-psbA-2 in six samples

2.3 PCR產(chǎn)物測序及分析

將引物ITS2-2、rbcL-2、trnH-psbA-1、trnH-psbA-2與六個樣本擴增后 PCR產(chǎn)物送上海生工公司進行雙向測序，測序結(jié)果刪除兩端引物序列，提交NCBI進行BLAST比對，同時使用BOLD數(shù)據(jù)庫比對分析[26]。

結(jié)果表明比對結(jié)果均成功，其中引物trnH-psbA-2比對結(jié)果相似度在90%以下，其余引物比對結(jié)果相似度均在97%及以上，后續(xù)試驗排除引物trnH-psbA-2；因引物rbcL-2擴增的目的片段較長，超過1000 bp，不便于測序工作進行，故后續(xù)試驗中也被排除。經(jīng)過以上試驗過程與結(jié)果分析，引物ITS2-2、trnH-psbA-1可應(yīng)用于六類物種的鑒別。

2.4 摻假模型的建立

因試驗不可能完全模擬實際生產(chǎn)，試驗所用樣品量較少，若直接通過原料水平摻假必然造成很大的誤差，所以本試驗中采取DNA水平摻假，再經(jīng)換算得到原料水平摻假。

在杏仁基因組 DNA中人為摻入花生基因組DNA，其中花生基因組DNA占總基因組DNA的比例分別為90%、80%、70%、60%、50%、40%、30%、20%和 10%[27]。

分別提取125 mg、100 mg、75 mg、50 mg 和25 mg杏仁和花生基因組DNA，提取方法參照1.3.1所述方法，不同質(zhì)量的樣本均按比例添加各試劑。通過對樣本提取率的計算，可從DNA水平推算到原料水平。根據(jù)公式1，計算各樣本的提取率T。

式中：T為提取率；mDNA為提取的樣本總DNA量；m為樣本質(zhì)量。

對不同質(zhì)量的杏仁和花生提取基因組DNA時，均做三組平行試驗，提取率見表2所示。

由表 2可知在該方法下對杏仁和花生的基因組DNA 進行提取，所得杏仁提取率為 5.91×10-4、花生的提取率為8.81×10-4。

根據(jù)杏仁、花生的提取率和公式1進行DNA水平到原料水平的換算，換算公式見公式2：

式中：T杏仁為杏仁提取率；mDNA杏仁為提取的杏仁樣本總DNA量；m杏仁為杏仁質(zhì)量；T花生為花生提取率；mDNA花生為提取的花生樣本總DNA量；m花生為花生質(zhì)量。

其中杏仁的提取率為5.91×10-4、花生的提取率為8.81×10-4，將二者帶入公式2得到公式3。

將DNA水平的各摻假比例換算到原料水平后的比例，見表3。

由篩選出的通用引物分別與不同水平摻假的基因組DNA模型進行PCR擴增，擴增產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳檢測，將擴增出清晰明亮條帶的樣品送測序公司進行測序。

表2 杏仁、花生基因組DNA提取率Table 2 Extraction rate of peanut genome DNA and almond genome DNA

1 0 7 0 3 7.5 0 9 5 5 1 2.5 0 1 0 3 6 5 0.0 0 9 2 2 6 5.0 0 1 0 2 0 6 6.6 7 1 2 5 8.1 7×1 0-2 9 5 8 0 6.6 7 1 0 0 9.5 8×1 0-2 8 9 8 7 5.0 0花生1 0 5 2 8 0.0 0 6 2 1 9 0.0 0 6 1 8 1 1.2 5 7 5 8.2 4×1 0-2 6 3 1 8 3.7 5 8.8 1×1 0-2 6 0 0 6 0.0 0 3 7 5 9 5.0 0 4 1 7 4 6.6 7 5 0 8.3 5×1 0-2 4 3 9 7 5.0 0 4 3 6 7 0.0 0 2 3 0 4 2.5 0 2 4 2 4 5.8 3 2 5 9.7 0×1 0-2 2 7 4 4 7.5 0 2 2 2 4 7.5 0

表3 DNA水平到原料水平換算和引物ITS2-2、trnH-psbA-1檢測結(jié)果Table 3 Conversion of DNA level to raw material level and test results of primes ITS2-2 and trnH-psbA-1

結(jié)果見表3，由表3可知用引物ITS2-2檢測摻入90%及以下花生基因組DNA(85.80%及以下花生原料)時測序結(jié)果為杏仁，雖然該引物與單一一個物種均能擴增成功，但摻假后對花生的檢測靈敏度低，出現(xiàn)這樣的結(jié)果可能是杏仁較花生對該引物競爭性更強，該引物更容易與杏仁進行擴增；

用引物trnH-psbA-1檢測摻入10%及以上花生基因組 DNA (6.94%及以上花生原料)時測序結(jié)果為花生，說明此引物對花生檢測的靈敏度高，即對杏仁產(chǎn)品中摻入花生原料時檢出限為 6.94%，可用于對杏仁產(chǎn)品中花生源性成分的檢測。為保證試驗的準確性，采用引物ITS2-2、trnH-psbA-1二者組合作為通用引物使用，提高結(jié)果的可信度。

2.5 采樣進行檢測及分析

對采集的 11個不同批次杏仁露待測樣品進行基因組DNA的提取，以真核生物18S rRNA基因?qū)μ崛〉男尤事痘蚪MDNA進行實時熒光PCR擴增，結(jié)果見圖11，由圖可知各樣品均發(fā)生起跳，且Ct值<30.0，說明樣品基因組DNA符合PCR擴增要求。

分別以引物ITS2-2、trnH-psbA-1與提取的杏仁露基因組DNA進行擴增，無菌雙蒸水做空白對照[17]。PCR產(chǎn)物經(jīng)瓊脂糖凝膠電泳進行檢測，結(jié)果見圖12～13。

由圖12～13可知11個樣品與兩對引物分別擴增出清晰明亮的條帶，其中樣品2～11與引物trnH-psbA-1擴增兩個條帶，其余樣品均擴增出一個條帶。將PCR擴增產(chǎn)物送上海生工公司進行雙向測序并分析測序結(jié)果。測序結(jié)果見表4。

由表4可知引物ITS2-2、trnH-psbA-1與各樣品擴增產(chǎn)物測序結(jié)果一致，其中樣品2～11檢測結(jié)果均為杏仁，說明這幾個批次杏仁露沒有摻假與產(chǎn)品標示相符。樣品1檢測結(jié)果均為花生，與產(chǎn)品標示不符，屬于欺瞞消費者行為。

分析產(chǎn)生這種結(jié)果可能有以下原因：不同品牌的杏仁露加工工藝不同，對原料的破壞程度不同，使得在相同方法下提取的基因組DNA有所差異；不同批次的產(chǎn)品均一性不好；所測杏仁露中不含杏仁源性成分或者含量極少，添加了其他成分代替杏仁露的口感或者摻雜了除杏仁和花生外的其他物種欺瞞消費者。

圖11 實時熒光PCR檢測提取的杏仁露基因組DNA結(jié)果Fig.11 Almond genome DNA by real time fluorescence PCR

圖12 引物ITS2-2對不同杏仁露樣品DNA擴增的結(jié)果Fig.12 PCR result of primer ITS2-2 in different almond juice

圖13 引物trnH-psbA-1對不同杏仁露樣品DNA擴增的結(jié)果Fig.13 PCR result of primer trnH-psbA-1 in different almond juice

表4 采樣產(chǎn)品鑒定結(jié)果Table 4 Identification results of samples

3 結(jié)論

3.1 隨著DNA條形碼技術(shù)的發(fā)展，在植物界的研究范圍越來越廣，目前有一些應(yīng)用較多的基因序列，如ITS、matK、rbcL和trnH-psbA等，但仍未達到成熟階段。本試驗針對杏仁和花生兩個物種，通過參考文獻和數(shù)據(jù)庫下載的10對引物分別對它們進行PCR擴增，其中有兩對引物ITS2-2、trnH-psbA-1對它們的擴增成功率與測序成功率較高，可作為通用引物使用。

3.2 目前對于植物蛋白飲料鑒定真?zhèn)蔚南嚓P(guān)技術(shù)報道較少，該類產(chǎn)品因加工工藝導(dǎo)致難以用常規(guī)的分類學(xué)手段辨別，而利用植物DNA條形碼技術(shù)應(yīng)用到此類食品的檢測上，可有效地辨識出所含物種。本試驗?zāi)M人為在杏仁中摻入花生，利用引物ITS2-2檢測摻入90%及以下花生基因組DNA (85.80%及以下花生原料)時測序結(jié)果為杏仁；用引物trnH-psbA-1檢測摻入10%及以上花生基因組 DNA(6.94%及以上花生原料)時測序結(jié)果為花生，可將二者結(jié)合應(yīng)用于杏仁露產(chǎn)品中花生源性成分摻假的檢測。

3.3 本試驗雖找到兩對引物，但對于某些含杏仁、花生源性成分很低的產(chǎn)品的檢測靈敏度仍然不夠，有待繼續(xù)研究，找到靈敏度更高的通用引物。同時二者作為過敏原對于某些人群來說誤食將有損身體健康，該研究也可為相關(guān)食品檢測其中的過敏原成分提供一定的理論基礎(chǔ)。

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