劉瑞琪,王瑋瑋,屈鵬祥,馬曉楠,王勇勝,卿素珠
(西北農(nóng)林科技大學(xué)動(dòng)物醫(yī)學(xué)院,陜西楊凌 712100)
成纖維生長因子(fibroblast growth factor,F(xiàn)GF)家族,又稱為肝素親和生長因子(heparin binding growth factor,HBGF),是一類能促進(jìn)成纖維細(xì)胞生長的多肽類活性物質(zhì),約有23種,大多數(shù)與肝素結(jié)合發(fā)揮作用[1]。 FGF對(duì)于細(xì)胞生長、分化是重要的調(diào)控因子;可維持早期胚胎發(fā)育和器官形成的祖細(xì)胞,并且調(diào)節(jié)它們的生長、分化,構(gòu)成特定的組織;高度限制在特殊細(xì)胞亞型的特殊發(fā)育階段;可促進(jìn)細(xì)胞有絲分裂、趨化與血管生成、促進(jìn)中胚層和神經(jīng)外胚層細(xì)胞的存活與生長等[2]。
成纖維生長因子4是屬于FGF4亞型因子,它可分泌帶有切割的N-端信號(hào)肽的蛋白,通過旁分泌分泌到細(xì)胞外,結(jié)合和激活FGF受體(fibroblast growth factor receptors,FGFRs)引起生物反應(yīng)。研究表明,F(xiàn)GF4在小鼠早期胚胎發(fā)育過程中發(fā)揮重要作用。早在1994年,Rappolee等研究發(fā)現(xiàn)FGF4 mRNA是母源型轉(zhuǎn)錄因子[3]。近年的研究表明,在小鼠早期胚胎發(fā)育過程中,F(xiàn)GF4特異性的分布于內(nèi)細(xì)胞團(tuán)中,調(diào)控內(nèi)細(xì)胞團(tuán)分化為外胚層和原始內(nèi)胚層,決定外胚層和原始內(nèi)胚層的分布比例[4],并且調(diào)控著外胚層和胚外外胚層交流的誘導(dǎo)信號(hào)[5]。隨著研究的進(jìn)一步深入,發(fā)現(xiàn)FGF4突變的小鼠胚胎在植入前死亡,可能是因?yàn)镕GF4的異常表達(dá)干擾了早期胚胎發(fā)育過程中內(nèi)細(xì)胞團(tuán)的生長[6]。此外,有研究表明,敲除FGF4基因的小鼠也將導(dǎo)致胚胎植入后流產(chǎn)[7],分析認(rèn)為FGF4的異常表達(dá)影響了小鼠胎盤的發(fā)育及功能[8]。以上研究結(jié)果表明,F(xiàn)GF4是小鼠早期胚胎發(fā)育過程中一個(gè)重要因子,異常表達(dá)會(huì)影響早期胚胎的發(fā)育。目前,有關(guān)FGF4在牛早期胚胎發(fā)育過程中的分布及功能意義尚未見報(bào)道,本研究通過實(shí)時(shí)熒光定量PCR和免疫熒光染色技術(shù),對(duì)FGF4在牛早期胚胎發(fā)育各個(gè)階段的表達(dá)和定位規(guī)律進(jìn)行研究,為探討其在牛早期胚胎發(fā)育過程中可能的作用提供依據(jù)。
1.1.1 生物材料 試驗(yàn)所用牛卵巢,采自西安市某屠宰場(chǎng);冷凍精子,購自上海光明荷斯坦牧業(yè)有限公司。
1.1.2 主要試劑 RNA提取試劑盒Cells-to-signal Kit,Invitrogen公司產(chǎn)品;反轉(zhuǎn)錄試劑盒cDNA synthesis kit,TaKaRa公司產(chǎn)品;熒光定量試劑盒SYBR Premix ExTaq,Promega公司產(chǎn)品;兔源Anti-FGF4多克隆抗體(ab106355),Abcam公司產(chǎn)品;Alexa Fluor 488標(biāo)記山羊抗兔IgG二抗、免疫染色固定液、封閉液一抗、二抗稀釋液和DAPI等,碧云天公司產(chǎn)品。采卵液、卵母細(xì)胞成熟液、精子獲能受精液、胚胎體外培養(yǎng)液,按照文獻(xiàn)配制[9]。
1.2.1 卵母細(xì)胞的收集 采集的牛卵巢存放于含有100 mg/L鏈霉素、20 U/L青霉素的37℃生理鹽水的恒溫瓶中,4 h~6 h內(nèi)送回實(shí)驗(yàn)室。生理鹽水洗滌3次后,去除卵巢表面的附屬組織,用12號(hào)針頭注射器采用抽吸法抽吸卵巢表面的卵泡,將抽吸出的卵泡液置于直徑60 mm平皿中,體視顯微鏡下收集卵丘-卵母細(xì)胞復(fù)合體(cumulus oocyte complexes,COCs),在采卵液中洗滌3次,選取卵丘細(xì)胞包裹較好且胞質(zhì)均勻的COCs放入卵母細(xì)胞成熟液中培養(yǎng),培養(yǎng)條件為38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2。
1.2.2 體外受精胚胎的收集 COCs在培養(yǎng)22 h~24 h后,利用移液槍吹吸數(shù)次,使顆粒細(xì)胞呈松散狀,挑選帶有第一極體的成熟卵母細(xì)胞在精子獲能受精液中洗滌3次,收取10個(gè)MⅡ期(Metaphase Ⅱ)卵母細(xì)胞備用,然后將剩余卵母細(xì)胞放至精子獲能受精液的微滴中(用礦物油覆蓋)進(jìn)行后續(xù)試驗(yàn)。提前將6 mL的精子獲能受精液置于15 mL的離心管中,傾斜放置于38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱平衡8 h以上。將冷凍精子在38℃水浴中解凍,用玻璃吸管將其緩緩注入平衡好的精子獲能受精液的離心管底部,之后45°傾斜離心管,于38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2培養(yǎng)箱靜置45 min,使得精子能夠自由上浮,吸取上清液部分,置于新的15 mL離心管中1 000 r/min離心10 min,棄上清,保留其底部200 μL的液體輕輕混勻,移入含有成熟卵母細(xì)胞的微滴中,在38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2條件下培養(yǎng)10 h~14 h。將受精的卵母細(xì)胞用10 g/L透明質(zhì)酸酶完全清除顆粒細(xì)胞層后,移至胚胎體外培養(yǎng)液中洗滌3次,而后移到預(yù)先平衡4 h~6 h的胚胎體外培養(yǎng)液的微滴中,每個(gè)微滴放置約50個(gè)受精卵,在38.5℃、體積分?jǐn)?shù)為5%的CO2中培養(yǎng)。在24、48、72、120、168 h分別收取2-細(xì)胞、4-細(xì)胞、8-細(xì)胞、桑椹胚和囊胚期的胚胎。
1.2.3 總RNA提取及cDNA合成 分別收取各時(shí)期的早期胚胎10個(gè),按照RNA提取試劑盒Cells-to-signal Kit說明書提取胚胎總RNA,取不同時(shí)期胚胎的RNA 2 μg ,按照反轉(zhuǎn)錄試劑盒cDNA synthesis kit說明書反轉(zhuǎn)錄為cDNA,置-20℃保存。
1.2.4 實(shí)時(shí)熒光定量PCR 根據(jù)GenBank中公布的牛cDNA序列,利用Primer 5.0設(shè)計(jì)特異性引物(表1),由上海生工生物工程技術(shù)服務(wù)有限公司合成。
以各時(shí)期的胚胎cDNA為模板進(jìn)行實(shí)時(shí)熒光定量PCR,反應(yīng)體系:上、下游引物(0.2 mmol/L)各0.4μL,模板cDNA 2μL,SYBR○RPremix ExTaqTM Ⅱ 10μL,Passive ROX Reference Dye Ⅱ 0.4 μL, ddH2O 6.8μL,總反應(yīng)體系為20μL。每個(gè)樣品重復(fù)3次,使用Step One real-time PCR system (Step One and Step One Plus;ABI)進(jìn)行RT-PCR,反應(yīng)程序:95℃ 30 s;95℃ 5 s,60℃ 30 s,共40個(gè)循環(huán)。以GAPDH為內(nèi)參基因,通過2-△△Ct法計(jì)算FGF4的相對(duì)表達(dá)量。
表1 試驗(yàn)所用引物序列
1.2.5 免疫熒光染色 各時(shí)期胚胎經(jīng)免疫染色固定液固定2 h,用PBS-PVA洗滌5 min×3。 3 mL/L Triton X-100室溫透化30 min,PBS-PVA洗滌5 min×3。封閉液4℃過夜,PBS-PVA洗滌5 min×3。加入FGF4一抗(工作濃度1∶200),4℃過夜孵育,PBS-PVA洗滌5 min×3。加入Alexa Fluor 488標(biāo)記山羊抗兔IgG二抗(工作濃度1∶1 000),避光室溫孵育2 h~4 h,PBS-PVA洗滌5 min×3,DAPI 染5 min,PBS-PVA洗5 min×3;抗熒光淬滅封片劑封片,熒光顯微鏡下觀察并照相。
1.2.6 數(shù)據(jù)處理及分析 所有試驗(yàn)數(shù)據(jù)均重復(fù)3次,所得數(shù)據(jù)通過SPSS 19.0軟件進(jìn)行統(tǒng)計(jì)學(xué)分析,P<0.05為差異顯著,P<0.01為差異極顯著。
不同時(shí)期牛早期胚胎中FGF4 mRNA的表達(dá)情況見圖1。由圖1可知,F(xiàn)GF4 mRNA在牛MⅡ期卵母細(xì)胞及早期胚胎的各階段均有表達(dá),相比于MⅡ期卵母細(xì)胞,F(xiàn)GF4 mRNA的表達(dá)量在2-細(xì)胞胚顯著下降,隨后持續(xù)增加,但在4-細(xì)胞胚時(shí)FGF4 mRNA的表達(dá)量仍低于MⅡ期卵母細(xì)胞,8-細(xì)胞胚時(shí)FGF4 mRNA的表達(dá)量已顯著高于MⅡ期卵母細(xì)胞,至桑椹胚期FGF4 mRNA的表達(dá)量達(dá)到峰值,而后在囊胚期表達(dá)量顯著下降、但仍高于8-細(xì)胞期及之前各時(shí)期胚胎中的表達(dá)量。
FGF4陽性反應(yīng)呈綠色熒光,細(xì)胞核呈藍(lán)色熒光。不同階段牛早期胚胎FGF4的分布情況見圖2。由圖2可知,F(xiàn)GF4蛋白在牛MⅡ期卵母細(xì)胞及各時(shí)期的早期胚胎中均有表達(dá),但在不同時(shí)期胚胎的定位及反應(yīng)強(qiáng)度有所不同。在MⅡ期卵母細(xì)胞、2-細(xì)胞胚及4-細(xì)胞胚,F(xiàn)GF4在卵母細(xì)胞及卵裂球的細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中均有表達(dá)。而在8-細(xì)胞胚及桑椹胚,F(xiàn)GF4主要定位于卵裂球的胞質(zhì),而細(xì)胞核中未見陽性反應(yīng)。至囊胚階段,F(xiàn)GF4在內(nèi)細(xì)胞團(tuán)及滋養(yǎng)層細(xì)胞中均有表達(dá),尤以內(nèi)細(xì)胞團(tuán)的反應(yīng)更強(qiáng),且主要定位于細(xì)胞質(zhì)。
MⅡ.MⅡ卵母細(xì)胞;2-cell.2-細(xì)胞胚;4-cell.4-細(xì)胞胚;8-cell.8-細(xì)胞胚;M.桑椹胚;B.囊胚
MⅡ.MⅡoocytes,2-cell.2-cell stage;4-cell.4-cell stage;8-cell.8-cell stage;M.Morula;B.Blastocyst
圖1 FGF4 mRNA在牛早期胚胎中的相對(duì)表達(dá)量
Fig.1 Relative expressional amount of FGF4 mRNA in bovine early stage embryos
Rappolee D A等[3]發(fā)現(xiàn)在小鼠胚胎中FGF4從MⅡ期卵母細(xì)胞至囊胚階段均有表達(dá),其在2-細(xì)胞期表達(dá)量有所下降,在囊胚期高度表達(dá),認(rèn)為FGF4是一種母源性轉(zhuǎn)錄因子。在哺乳動(dòng)物中,精子染色質(zhì)與卵母細(xì)胞染色質(zhì)融合,形成合子基因組,合子型基因激活并轉(zhuǎn)錄,最終獲得發(fā)育的全能性[10]。而在合子型基因激活前,細(xì)胞分裂受母源性轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控,受精卵中儲(chǔ)存著大量的母源mRNA、蛋白質(zhì)、細(xì)胞器,這些物質(zhì)合成更多的細(xì)胞因子,支持并指導(dǎo)早期胚胎的發(fā)育。在此過程中母源物質(zhì)逐步消耗,直到合子型基因被激活,合子型基因的適時(shí)表達(dá)并完全取代母源基因,以實(shí)現(xiàn)胚胎發(fā)育由母源型調(diào)控向合子型調(diào)控的過渡。而缺少這一過程的動(dòng)物胚胎無法進(jìn)一步發(fā)育,胚胎發(fā)育受到阻滯,這表明母源型調(diào)控向合子型調(diào)控的轉(zhuǎn)變對(duì)胚胎發(fā)育至關(guān)重要。值得注意的是,研究表明大部分母源因子,在合子型基因轉(zhuǎn)錄激活后仍表達(dá),而且缺失這些母源因子對(duì)胚胎是致死性的[11]。然而,不同物種由母源性轉(zhuǎn)錄因子調(diào)控向合子型基因調(diào)控過渡的時(shí)期不同,小鼠的合子激活期為2-細(xì)胞胚胎晚期[12-13],牛的合子激活期為4-細(xì)胞胚晚期或8-細(xì)胞時(shí)期[14],這使得一些基因在小鼠和牛胚胎中的表達(dá)有所不同,并且同一個(gè)基因在合子激活前后表達(dá)亦有所不同。本研究通過qRT-PCR檢測(cè)FGF4在牛早期胚胎中的表達(dá)規(guī)律,結(jié)果顯示FGF4在牛的MⅡ期卵母細(xì)胞及各階段的早期胚胎均有表達(dá),與MⅡ期卵母細(xì)胞相比,2-細(xì)胞胚FGF4 mRNA表達(dá)量顯著下降,隨后持續(xù)增加,直至8-細(xì)胞期表達(dá)量顯著高于MⅡ期卵母細(xì)胞,至桑椹胚階段FGF4的表達(dá)量最高。這種表達(dá)規(guī)律可能是因?yàn)楹献有突蚣せ钋?,母源因子FGF4維持了這段時(shí)期的細(xì)胞分裂,消耗其表達(dá)。但隨著合子型基因的激活,F(xiàn)GF4的表達(dá)也得到了提高。
圖2 FGF4在不同時(shí)期牛早期胚胎的分布
胚胎中細(xì)胞的分布決定細(xì)胞命運(yùn)和極性[15],母源因子在胚胎極性形成時(shí)發(fā)揮重要作用,8-細(xì)胞期獲得極性是決定細(xì)胞命運(yùn)的關(guān)鍵時(shí)期[16]。本研究結(jié)果表明FGF4在MⅡ期卵母細(xì)胞及8-細(xì)胞期前的各階段早期胚胎的細(xì)胞質(zhì)和細(xì)胞核中均有表達(dá),而在8-細(xì)胞期及之后的桑椹胚和囊胚期FGF4只在細(xì)胞質(zhì)中表達(dá),這可能是因?yàn)镕GF4在胚胎發(fā)育中與胚胎發(fā)育極性相關(guān),然而FGF4在牛胚胎中遷移具體的機(jī)制仍需進(jìn)一步研究。在小鼠囊胚中,F(xiàn)GF4特異性表達(dá)在內(nèi)細(xì)胞團(tuán)中,是形成功能性內(nèi)細(xì)胞團(tuán)所必須的[3,17],通過影響種系特異性基因的分布,調(diào)控內(nèi)細(xì)胞團(tuán)分化原始內(nèi)胚層的過程[18]。而本研究結(jié)果表明,牛囊胚中FGF4在內(nèi)細(xì)胞團(tuán)和滋養(yǎng)層中均有表達(dá),并在內(nèi)細(xì)胞團(tuán)中表達(dá)水平較高,這與Takashi F及Manabu O的研究結(jié)果一致[19-20]。這可能是因?yàn)镕GF4是一種分泌型蛋白,內(nèi)細(xì)胞團(tuán)能夠分泌FGF4并通過旁分泌方式作用于滋養(yǎng)層細(xì)胞,其斷裂的N端信號(hào)多肽通過結(jié)合并激活FGFRs作為細(xì)胞外蛋白介導(dǎo)生物反應(yīng),可與細(xì)胞溶質(zhì)接頭蛋白和RAS-MAPK、PI3K-AKT、PLCγ和STAT胞內(nèi)信號(hào)旁路相互作用,從而進(jìn)一步影響滋養(yǎng)層的增殖。另有研究表明,在胚胎附植后FGF4將調(diào)控功能性內(nèi)細(xì)胞團(tuán)的形成,并影響滋養(yǎng)層部分發(fā)育為胎盤組織的過程[7,21-22]。
本研究從mRNA和蛋白水平觀察了FGF4在牛MⅡ卵母細(xì)胞及各階段早期胚胎的表達(dá)模式,首次確定了FGF4在牛早期胚胎發(fā)育過程中的時(shí)空表達(dá)規(guī)律,為進(jìn)一步研究FGF4基因在牛早期胚胎發(fā)育過程中的調(diào)控機(jī)制提供了依據(jù)。
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