梅 晨,李淑芳,徐玉智,張培君,龔玉梅,王宏俊
(北京市農(nóng)林科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所/畜禽疫病防控技術(shù)北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室,北京 100097)
副雞禽桿菌(Avibacteriumparagallinarum,Apg)是雞傳染性鼻炎的致病菌,該菌培養(yǎng)條件較為苛刻,需要在培養(yǎng)基中加入煙堿腺嘌呤二核苷酸(nicotinamide adenine dinucleotide,NAD)和血清,培養(yǎng)時(shí)需厭氧環(huán)境或在體積分?jǐn)?shù)為3%~10%的CO2環(huán)境。本病廣泛分布于世界各地,潛伏期短,傳播迅速,短時(shí)間內(nèi)便可波及全群[1]。目前對(duì)該菌鑒定常用的靶基因是16 S rRNA,聚合酶鏈反應(yīng)(polymerase chain reaction,PCR)已成為病原菌檢測(cè)和鑒定的一種強(qiáng)有力工具。副雞禽桿菌的生化反應(yīng)復(fù)雜,不同毒力的菌株會(huì)有不同的結(jié)果;間接血凝試驗(yàn)雖是目前最準(zhǔn)確有效的方法,但此方法用時(shí)較長(zhǎng);PCR雖然特異性強(qiáng),但是需要的PCR擴(kuò)增儀昂貴。2000年Notomi T等[2]發(fā)明了環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)(loop-mediated isothermal amplification,LAMP),其特點(diǎn)是針對(duì)靶基因的6個(gè)區(qū)域設(shè)計(jì)4種特異引物,利用鏈置換型DNA聚合酶,能在等溫條件下 (60℃~65℃ ),1 h內(nèi)特異地?cái)U(kuò)增出109~1010拷貝靶序列,擴(kuò)增結(jié)果可直接對(duì)擴(kuò)增副產(chǎn)物焦磷酸鎂沉淀通過(guò)肉眼進(jìn)行判斷或檢測(cè)其濁度,也可用結(jié)合雙鏈的熒光染料優(yōu)選 SYBR Green Ⅰ染色,即可通過(guò)肉眼判定。在保持傳統(tǒng)PCR優(yōu)點(diǎn)的基礎(chǔ)上,進(jìn)一步提高了反應(yīng)的特異性,同時(shí)縮短了檢測(cè)時(shí)間。環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)在疾病的快速檢測(cè)方面發(fā)展迅速,已廣泛用于對(duì)細(xì)菌、病毒、寄生蟲的檢測(cè)和動(dòng)物胚胎性別鑒定等領(lǐng)域[3-11],是很有發(fā)展前景的快速診斷方法之一。
本研究針對(duì)副雞禽桿菌保守基因16 S rRNA設(shè)計(jì)LAMP引物,優(yōu)化LAMP反應(yīng)條件,建立了檢測(cè)副雞禽桿菌的LAMP,并對(duì)該方法的特異性和靈敏度進(jìn)行分析比較。
副雞禽桿菌3個(gè)血清型的標(biāo)準(zhǔn)株,A型的0083、B型的0222、C型的Modsto以及10株國(guó)內(nèi)分離株,北京市農(nóng)林科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所保存,參考天根生物公司基因組DNA提取試劑盒說(shuō)明書提取該菌基因組用作后續(xù)試驗(yàn)的模板;14株非副雞禽桿菌病原微生物如表1所示。
1.2.1 引物 根據(jù)GenBank數(shù)據(jù)庫(kù)副雞禽桿菌16 S rRNA基因(GenBank:BG577820.1)參考序列,用Clustal W進(jìn)行多重比對(duì),對(duì)保守區(qū)域序列進(jìn)行分析,確保擴(kuò)增的特異性。用LAMP引物設(shè)計(jì)軟件Primer Explorer V4.0設(shè)計(jì)特異引物序列,引物由生工生物工程(北京)有限公司合成。設(shè)計(jì)2組引物,外引物F3:5′-CAAGCGGTGGAGCATGTG-3′,B3:5′-ATCACTGGCAGTCTCCTTTG-3′;內(nèi)引物FIP:5′-CTAAGCTCCCGAAGGCACTCCGATGCAACGCGAAGAACCT-3′,BIP:5′-TGTCGTCAGCTCGTGTTGTGAACGAAGTGCTGGCAACAAAG-3′。
表1 菌(毒)株及其編號(hào)
1.2.2 LAMP反應(yīng)體系的建立 不同反應(yīng)溫度的優(yōu)化,25 μL LAMP反應(yīng)體系包括:Apg基因組DNA 2 μL~3 μL,20 mmol/L Tris-HCl(pH8.8,25℃),10 mmol/L KCl,10 mmol/L (NH4)2SO4,1 mL/L的TritonR X-100,0.8 mol/L甜菜堿(betaine),8 mmol/L MgSO4,1.4 mmol/L dNTPs,8 000 U/mLBstDNA polymerase 1.0 μL,加入的引物量為5 pmol F3和B3,40 pmol FIP和BIP;參照文獻(xiàn)資料[12-14],反應(yīng)條件為分別置于61.0、62.0、63.0、64.0、65.0、 66.0、67.0℃的恒溫環(huán)境中60 min,并在80℃持續(xù)10 min,用20 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
1.2.3 LAMP靈敏度的評(píng)價(jià) 將培養(yǎng)后的細(xì)菌提取DNA ( 原始核酸含量為1.7×106pg) 進(jìn)行10倍梯度稀釋,分別進(jìn)行LAMP和PCR檢測(cè),其中PCR引物為L(zhǎng)AMP的外引物(F3和B3)。LAMP反應(yīng)體系為:10×LAMP buffer 2.5 μL,F(xiàn)3(5 pmol/μL)1 μL,B3(5 pmol/μL)1 μL,F(xiàn)IP(40 pmol/μL)1 μL,BIP(40 pmol/μL)1 μL,BstDNA聚合酶1 μL,dNTPs(10 mmol/L)3.5 μL,待檢樣品DNA 2 μL,無(wú)菌去離子水12 μL。上述反應(yīng)體系配制于PCR管中,同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照;LAMP反應(yīng)條件:將上述配置完成的含反應(yīng)體系的PCR管混勻后瞬時(shí)離心,置于水浴鍋中65℃反應(yīng)60 min,并在80℃持續(xù)10 min,用20 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè);PCR反應(yīng)體系為:2×TaqPCR star Mix(GenStar)12.5 μL,F(xiàn)3(10 mmol/L)1 μL,B3(10 mmol/L)1 μL,待檢DNA樣品2 μL,無(wú)菌去離子水8.5 μL。上述反應(yīng)體系配制于PCR管中,同時(shí)設(shè)置陽(yáng)性對(duì)照和陰性對(duì)照;PCR反應(yīng)條件:將上述配置完成的含反應(yīng)體系的PCR管混勻后離心,PCR檢測(cè)體系擴(kuò)增參數(shù)具體為:94℃ 5 min;94℃ 20 s,55℃ 15 s,72℃ 15 s,共32個(gè)循環(huán);72℃ 10 min,4℃結(jié)束反應(yīng),用20 g/L瓊脂糖凝膠電泳檢測(cè)。
1.2.4 LAMP的特異性 用上述LAMP對(duì)14株非副雞禽桿菌的病原微生物進(jìn)行特異性評(píng)估,將試驗(yàn)菌株復(fù)蘇培養(yǎng)后提取基因組DNA,按上述LAMP進(jìn)行檢測(cè),65℃反應(yīng)60 min。
設(shè)置了7個(gè)溫度梯度,由圖1可以看出,陽(yáng)性都呈現(xiàn)出典型的特異性梯狀條帶,說(shuō)明61.0℃~67.0℃溫度下都能進(jìn)行反應(yīng),而陰性則無(wú)此現(xiàn)象,所以選擇65.0℃作為后續(xù)試驗(yàn)的反應(yīng)溫度。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 5 000;1~7.61.0、62.0、63.0、64.0、65.0、66.0、67.0℃;8.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 5 000;1-7.61.0,62.0,63.0,64.0,65.0,66.0,67.0℃;8.Negative control
圖1 LAMP最佳溫度篩選
Fig.1 The best temperature screening of LAMP reaction system
設(shè)置了不同濃度的DNA梯度,LAMP的電泳檢測(cè)結(jié)果見圖2,呈現(xiàn)出典型的特異梯形條帶,在第9條泳道可看到較清晰的條帶,所對(duì)應(yīng)DNA濃度為0.17 pg/管,而第10條泳道之后完全看不到擴(kuò)增條帶;PCR的電泳檢測(cè)結(jié)果見圖3,在第7條泳道可以看到略暗的條帶,所對(duì)應(yīng)DNA濃度為56 pg/管,而第8條泳道完全看不到擴(kuò)增條帶。綜上結(jié)果,本試劑盒的LAMP最低檢出限0.17 pg/反應(yīng),PCR的最低檢出限56 pg/反應(yīng),說(shuō)明本檢測(cè)方法具有較高的靈敏度和應(yīng)用價(jià)值。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 5 000;1.陽(yáng)性對(duì)照;2~10.1.7×106、1.7×105、1.7×104、1.7×103、1.7×102、1.7×101、1.7×100、1.7×10-1、1.7×10-2pg/管;11.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 5 000;1.Positive control;2-10.1.7×106,1.7×105,1.7×104,1.7×103,1.7×102,1.7×101,1.7×100,1.7×10-1,1.7×10-2pg/tube;11.Negative control
圖2 LAMP內(nèi)引物靈敏度試驗(yàn)
Fig.2 The sensitivity test of LAMP by using inner primer
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 5 000;1~8.1.7×106、1.7×105、1.7×104、1.7×103、1.7×102、1.7×101、1.7×100pg/管;9.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 5 000;1-8.1.7×106,1.7×105,1.7×104,1.7×103,1.7×102,1.7×101,1.7×100pg/tube;9.Negative control
圖3 LAMP外引物靈敏度試驗(yàn)
Fig.3 The sensitivity test of LAMP by using outer primer
選取了14株非副雞禽桿菌病原微生物和10株副雞禽桿菌分離株、3株標(biāo)準(zhǔn)株進(jìn)行特異性評(píng)估試驗(yàn),結(jié)果見圖4和圖5,只有副雞禽桿菌顯示出特異性擴(kuò)增,非副雞禽桿菌無(wú)特異性條帶。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 5 000;1~10.分離株;11.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 5 000;1-10.Avibacteriumparagallinarumisolates;11.Negative control
圖4不同副雞禽桿菌分離株LAMP產(chǎn)物電泳結(jié)果
Fig.4 Electrophoresis of LAMP products of different strains ofAvibacteriumparagallinarum
LAMP作為一種新型的恒溫檢測(cè)技術(shù),具有靈敏度高、特異性強(qiáng)、檢測(cè)時(shí)間短、操作簡(jiǎn)便、不需要特殊試劑和儀器設(shè)備等優(yōu)點(diǎn),所以在臨床疾病診斷、微陣列基因芯片的開發(fā)及食品衛(wèi)生質(zhì)量檢驗(yàn)等領(lǐng)域具有廣闊的應(yīng)用前景[13-15]。目前,在LAMP反應(yīng)不開蓋的前提下,其結(jié)果判定方式有目視檢查渾濁、目視檢查染料顏色變化和濁度儀對(duì)LAMP反應(yīng)進(jìn)行實(shí)時(shí)監(jiān)控這3種方法[16]。其中目視檢查渾濁法主要依據(jù)LAMP反應(yīng)產(chǎn)生大量的副產(chǎn)物焦磷酸鎂白色沉淀而使反應(yīng)液呈現(xiàn)渾濁,但是當(dāng)渾濁度較低時(shí),肉眼很難察覺(jué)。用實(shí)時(shí)濁度儀可以更加直觀、準(zhǔn)確地判定結(jié)果,但是需要使用特定的儀器設(shè)備。相比較而言,染料比色分析既提高了肉眼的識(shí)別率,又可直接用于疫病的現(xiàn)場(chǎng)診斷,是最為簡(jiǎn)單方便的判定方式。普遍用于LAMP的常用染料主要有SYBR Green Ⅰ、溴化乙錠(EB)、Picogreen、鈣黃綠素和HNB等,其中以SYBR Green Ⅰ和HNB的檢測(cè)靈敏性最高,是鈣黃綠素的10倍[16]。
本研究所用的13株副雞禽桿菌都擴(kuò)增出LAMP的特異性梯形條帶,而非副雞禽桿菌的14種禽病病原,包括細(xì)菌和病毒,都未能擴(kuò)增出LAMP陽(yáng)性結(jié)果,說(shuō)明該方法具有很好的特異性;將副雞禽桿菌的基因組做10倍梯度稀釋后用LAMP和PCR進(jìn)行檢測(cè)來(lái)比較兩者敏感性,結(jié)果表明,LAMP檢出的最低限量是常規(guī)PCR的1/300。
M.DNA 標(biāo)準(zhǔn)DL 5 000;1~3.0083、0222、Modesto副雞禽桿菌標(biāo)準(zhǔn)株;4~17.禽多殺性巴氏桿菌、雞腸球菌、副溶血性弧菌、單核增生李斯特菌、大腸埃希菌、金黃色葡萄球菌、空腸彎曲桿菌、肺炎克雷伯菌、枯草芽胞桿菌、雞白痢沙門菌、禽流感病毒、雞毒支原體、傳染性支氣管炎病毒、傳染性喉氣管炎病毒;18.陰性對(duì)照
M.DNA Marker DL 5 000;1-3.0083,0222 and Modesto as three standard strains ofAvibacteriumparagallinarum; 4-17.Pasteurellamultocida,ChickenEnterococcus,Vibrioparahemolyticus,Listeriamonocytogenes,Escherichiacoli,Staphylococcusaureus,Campylobacterjejuni,Klebsiellapneumoniae,Bacillussubtilis,Salmonellapullorum,Avian influenza virus,Mycoplasmagallisepticum,Infectious bronchitis virus,Infectious laryngotracheitis virus;18.Negative control
圖5 3株副雞禽桿菌標(biāo)準(zhǔn)株和14株其他病原標(biāo)準(zhǔn)株的LAMP產(chǎn)物電泳結(jié)果
Fig.5 The electrophoretic result of three standard strains of LAMP products ofAvibacteriumparagallinarumand 14 other different pathogen standard strains
本研究建立的LAMP優(yōu)勢(shì)在于:高效快捷,可于60 min內(nèi)完成擴(kuò)增反應(yīng);靈敏度高,DNA樣品的檢測(cè)閾值為0.17 pg;適用范圍廣,不需要PCR儀等昂貴設(shè)備,僅用水浴鍋或者保溫杯即可實(shí)現(xiàn)該檢測(cè)過(guò)程;此方法在顯著提高靈敏度的同時(shí)大大降低了成本。下一步將把染料比色分析優(yōu)化到該方法中,以便于肉眼的識(shí)別,具有廣闊的應(yīng)用前景。
[1] 張培君,陳小玲,苗得園,等.雞傳染性鼻炎流行病學(xué)調(diào)查(Ⅱ)[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,2001,35(1):21-23.
[2] Notomi T,Okayama H,Masubuchi H,et al.Loop-mediated isothermal amplification of DNA[J].Nucleic Acid Res,2000,28(12):63.
[3] 馬 丹,張沫琦,魏海燕,等.環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增法檢測(cè)轉(zhuǎn)基因玉米MON88017品系[J].檢驗(yàn)檢疫學(xué)刊,2017(2):1-5.
[4] Watthanapanituck K,Kiatpathomchai W,Chu E,et al.Identification of human DNA in forensic evidence by loop-mediated isothermal amplification combined with a colorimetric gold nanoparticle hybridization probe[J].Int J Legal Med,2014,128:923-931.
[5] 彭 軍,廖孝文,楊海中,等.柑橘黃龍病環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法建立及應(yīng)用[J].熱帶作物學(xué)報(bào),2013,34(10):1998-2003.
[6] Kokkinos P A,Zios P G,Bellou M,et al.Loop-mediated isothermal amplification(LAMP)for the detection ofSalmonellain food[J].Food Anal Method,2014,7:512-526.
[7] 劉 威,李 環(huán),鄒大陽(yáng).用環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)快速檢測(cè)糞便樣本中的沙門菌[J].生物技術(shù)通訊,2014,24(2):237-241.
[8] 張艷艷,葉 倩,王正榮,等.基于cox2基因的細(xì)粒棘球絳蟲環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增檢測(cè)方法的初步建立[J].中國(guó)寄生蟲學(xué)與寄生蟲病雜志,2017(2):169-172.
[9] 戴婷婷,陸辰晨,沈 浩,等.基于環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)檢測(cè)橡樹疫霉菌[J].南京農(nóng)業(yè)大學(xué)學(xué)報(bào),2013,36(3):23-28.
[10] Karthik K,Rathore R,Thomas P,et al.Rapid and visual loop mediated isothermal amplification(LAMP)test for the detection ofBrucellaspp.and its applicability in epidemiology of bovine brucellosis[J].Vet Arhiv,2016,86(1):35-47.
[11] 陳伯祥,楊 明,常亮.環(huán)介導(dǎo)等溫?cái)U(kuò)增技術(shù)在動(dòng)物傳染病診斷中的應(yīng)用進(jìn)展[J].動(dòng)物醫(yī)學(xué)進(jìn)展,2012,33(4):90-96.
[12] 黃 雯,徐 進(jìn),張 昊,等.植物青枯菌LAMP檢測(cè)方法的建立[J].中國(guó)農(nóng)業(yè)科學(xué),2016,49(11):2093-2102.
[13] Kono T,Savan R,Sakai M,et al.Detection of white spot syndrome virus in shrimp by loop-mediated isothermal amplification [J].J Virol Method,2004,115:59-65.
[14] Seki M,Yamashita Y,Torigoe H,et al.Loop-mediated isothermal amplification method targeting thelyt A gene for detection ofStreptococcuspneumonia[J].J Clin Microbiol,2005,43(4):1581-1586.
[15] Uemura N,Makimura K,Onozaki M,et al.Development of a loop-mediated isothermal amplification method for diagnosingPneumocystispneumonia[J].J Med Microbiol,2008,57(1):50-57.
[16] Goto M,Honda E,Ogura A,et al.Colorimetric detection of loop-mediated isothermal amplification reaction by using hydroxyl naphthol blue [J].Biotechniques,2009,46(3):167-172.