曾 雪,楊元娟,陳 竹,劉應(yīng)杰,夏培元
(1.重慶醫(yī)藥高等??茖W(xué)校 401331;2.第三軍醫(yī)大學(xué)西南醫(yī)院藥劑科,重慶 400050;3.重慶市藥物制劑工程技術(shù)研究中心 401331;4.重慶市食品藥品檢驗檢測研究院 401121;5.重慶市化學(xué)藥品質(zhì)量控制與評價協(xié)同創(chuàng)新中心 401121)
藥用大黃是我國常用中藥,具有多種藥理作用[1-3]。有效成分的檢測方法主要有紙色譜法、柱色譜法(HPLC)[4]、薄層色譜法[5]和高效液相色譜法[6-8],但液相色譜操作過程復(fù)雜,流動相處理要求高,試劑消耗量大。高效毛細管電泳(high performance capillary electrophoresis,HPCE)是一種具有靈敏度和分辨率高、成本較低的分離分析技術(shù)[9-10]。本研究以大黃為對象,回流提取有效成分,并采用高效毛細管電泳作為分離和檢測手段,通過加入β-環(huán)糊精和調(diào)節(jié)緩沖溶液pH實現(xiàn)更好分離效率,該方法國內(nèi)尚無相關(guān)研究,是液相色譜法的一個有力補充[11-13]。
1.1材料 CL1020高效毛細管電泳儀(紫外檢測器,北京彩陸儀器有限公司,中科院研究生院應(yīng)化所,中國),GWA-UN1型超純水器(北京普析通用儀器有限公司,中國),SK-1渦旋混合器(常州市國旺儀器制造有限公司,中國),AUX220電子天平(島津,日本)。Na2B4O7·10 H2O(分析純,重慶北碚精細化工工廠);無水碳酸鈉(分析純,重慶北碚精細化工工廠);羥丙基-β-環(huán)糊精(HP-β-CD,相對分子量1 459.8,ACROS ORGANICS,New Jersey,USA);大黃素(C15H10O5,批號must-14110704)、大黃酚(C15H10O4,批號must-14072415)和大黃酸(C15H8O6,批號must-14072401,HPLC純度大于或等于98.0%)對照品(美侖生物科技有限公司,中國),藥用大黃飲片(四川省阿壩州松潘縣藥用大黃栽培基地),其他試劑均采用分析純。
1.2方法
1.2.1對照品溶液的制備 精密稱取大黃素對照品、大黃酸對照品和大黃酚對照品適量,加甲醇分別制成每1 mL含大黃酸、大黃素、大黃酚各8.0 mg的對照品貯備液;分別精密量取上述對照品貯備液各2 mL,定容至10 mL,混合搖勻,即得(每1 mL中大黃素、大黃酸、大黃酚各1.6 mg)。
1.2.2供試品溶液的制備 取藥用大黃飲片粉碎,取粉末(過四號篩)約0.15 g,精密稱定,置具塞錐形瓶中,精密加入甲醇25 mL,稱定質(zhì)量,加熱回流1 h,放冷,再稱定質(zhì)量,用甲醇補足減失的質(zhì)量,搖勻,濾過。精密量取續(xù)濾液5 mL,置燒瓶中,揮去溶劑,加8%鹽酸溶液10 mL,超聲處理5 min,再加三氯甲烷10 mL,加熱回流1 h,放冷,置分液漏斗中,用少量三氯甲烷洗滌容器,并入分液漏斗中,分取三氯甲烷層,酸液再用三氯甲烷提取3次,每次10 mL,合并三氯甲烷液,減壓回收溶劑至干,殘渣加甲醇使溶解,轉(zhuǎn)移至10 mL量瓶中,加甲醇至刻度,搖勻,濾過,取續(xù)濾液,即得[14-15]。
1.2.3電泳條件
1.2.3.1毛細管預(yù)處理 采用67.4 cm×75.0 μm石英毛細管柱(有效長度51.0 cm,河北永年瑞豐色譜配件有限公司)為分離柱,毛細管分別用0.1 mol/L NaOH沖洗活化10 min,水洗5 min,再用緩沖溶液沖洗5 min。每次進樣前都分別用0.1 mol/L NaOH沖洗3 min,水洗1 min,再用緩沖溶液沖洗2 min,以保證遷移時間和峰面積的重現(xiàn)性。
1.2.3.2電泳條件設(shè)定 分離電壓范圍:15~30 kV,進樣方式采用壓差進樣,進樣時間5 s,操作溫度25 ℃,緩沖溶液:60 mmol/L Na2B4O7+40 mmol/L Na2CO3+40 mmol/L HP-β-CD(pH 8.9);供試品緩沖溶液與此相同。
2.1電泳條件優(yōu)化
2.1.1檢測波長的選擇 大黃素和大黃酸的吸收波長均在250~270 nm處,其中254 nm為最大吸收波長。大黃酚在254、530 nm處有最大吸收,依據(jù)中國藥典2015版,均采用254 nm為檢測波長,因此本實驗采用254 nm波長為檢測波長。
2.1.2進樣方式的選擇 毛細管電泳的進樣方式對分離效率和重現(xiàn)性有重要影響,壓力進樣和電動進樣為最常見的兩種進樣方式,電動進樣對粘度較大的生化樣品比較適合,但測量重現(xiàn)性較差,且可能因各組分擴散系數(shù)的差別而導(dǎo)致遷移速率的改變,本試驗的標本為大黃提取物,相對生化樣品粘度較低,且注重重現(xiàn)性,因此選擇壓力進樣作為進樣方式。采用進樣壓力0.5 psi,進樣實踐0.5 s。
2.1.3緩沖溶液及濃度的優(yōu)化 由于大黃素、大黃酚和大黃酸的結(jié)構(gòu)近似,電荷差異小,且大黃提取中成分較多,采用區(qū)帶電泳分離模式(CZE)較難實現(xiàn)3種目標組分的完全分離,因此本試驗通過在緩沖體系中加入低濃度HP-β-CD,在傳統(tǒng)的CZE電泳模式下引入膠束電色譜模式,利用3組分在分配系數(shù)上的差異,當(dāng)HP-β-CD濃度達到40 mmol/L時,實現(xiàn)完全分離,見圖1、2。
A:大黃素;B:大黃酚;C:大黃酸
圖1大黃主要活性成分結(jié)構(gòu)式
2.2方法學(xué)驗證
2.2.1精密度試驗 精密量取“1.2.1”項下對照品溶液,按“1.2.3.1”項下電泳條件連續(xù)進樣測定3次,記錄峰面積。大黃素、大黃酚和大黃酸相對標準偏差(RSD)分別是 1.79%、4.46%和2.30%,表明儀器精密度良好,見表1。
2.2.2線性范圍 分別精密吸取“1.2.1”項下大黃素、大黃酚和大黃酸對照品溶液2 mL于10 mL容量瓶中定容,配置成濃度為1.6 mg/mL對照品溶液,再分別吸取對照溶液0.3、0.8、1.3、1.8、2.3、2.8 mL,置于6個10 mL容量瓶中,用70%甲醇定容至刻度,搖勻,得等濃度梯度對照品溶液,并分別以“1.2.3”項下電泳條件進行電泳分析檢測,分別以3組分對照品濃度為橫坐標(X),以對照品峰面積為縱坐標(Y)進行回歸計算,得到大黃素回歸方程為:Y=0.079 4X-0.034 6,r=0.995 7;大黃酚回歸方程為:Y=0.085 3X-0.042 8,r=0.995 9;大黃酸回歸方程為:Y=0.078 4X-0.073 2,r=0.995 4,鑒于壓力進樣存在一定誤差,3組分共同線性范圍在1.1~19.0 mg/mL范圍內(nèi)線性關(guān)系良好。
2.2.3回收率試驗 精密稱取大黃樣品粉末約1.5 g,共3份,分別置于5個錐形瓶中,按“1.2.2”項下“大黃提取物供試品”方法制備供試品溶液,先按“1.2.3”項下電泳條件檢測并記錄每份樣品的電泳譜圖,再在每份供試品中加入等量的大黃素、大黃酚和大黃酸對照品各3 mg,再次測定其含量,分別計算大黃素、大黃酚和大黃酸的平均回收率,結(jié)果顯示該方法單組分回收率較好,多組分RSD偏高,分析可能是由于大黃提取物成分較多,且本方法是同時考察3組分在電泳中含量,目標組分間存在化學(xué)性質(zhì)差異,導(dǎo)致檢測效率不一致所致,見表2。
A:CZE 模式下CE分離檢測;B:HP-β-CD修飾后CZE模式下大黃混合標品CE分離檢測;C:HP-β-CD修飾后CZE模式下大黃提取物CE分離檢測
圖2 HP-β-CD修飾前后大黃毛細管電泳對比圖
表2 回收率試驗結(jié)果(n=3)
2.3樣品含量測定 對3批樣品進行含量測定,分別精密稱取不同批次大黃藥材樣品粉末約1.5 g,按“1.2.2”項下“大黃提取物供試品”方法制備供試品溶液,再按“1.2.3”項下電泳條件進行電泳分離檢測,分別記錄大黃素、大黃酚和大黃酸含量,見表3。
表3 3批次樣品中大黃提取物的含量測定結(jié)果(n=3,%)
大黃素、大黃酚、大黃酸3組分化學(xué)結(jié)構(gòu)相似,帶電差異小,CZE模式分離效果較差,本文加入HP-β-CD是因為環(huán)糊精分子略呈錐形的中空圓筒立體環(huán)狀結(jié)構(gòu),具有一定的疏水性,增加了普通緩沖溶液的多相特性,待測組分在環(huán)糊精修飾的緩沖體系中,由于不同的疏水性而呈現(xiàn)出不同的分配系數(shù),從而使不同組分在毛細管電泳中不僅受到電滲流的影響,同時也受到分配色譜的影響,有利于組分的完全分離。
電泳進樣方式對本方法的重現(xiàn)性和穩(wěn)定性有很大影響,電動進樣操作簡便且進樣量穩(wěn)定,但更適合于粘度較大的生化樣品,而本文是中藥提取物且?guī)щ娦圆幻黠@,用電動進樣不利于樣品的導(dǎo)入,所以采用壓力進樣,保證了進樣的重現(xiàn)性。
方法學(xué)考察中含量測定的RSD偏高,分析原因是因為本方法優(yōu)先考慮大黃提取物多組分的分離度,在保證完全分離基礎(chǔ)上,犧牲了部分檢測準確度,導(dǎo)致結(jié)果RSD偏高,可在后期方法優(yōu)化上進一步改進。
通過β-環(huán)糊精修飾毛細管區(qū)帶電泳測定大黃提取物的方法分析速度快,緩沖溶液簡單,試劑消耗量少,可作為高效液相法的重要補充。
[1]劉晗,高云.大黃素藥理作用的分子機制研究進展[J].中國藥理學(xué)通報,2009,25(12):1552-1555.
[2]SUNEELA D,DIPMALA P.Synthesis and pharmacokinetic profile of rhein- boswellic acid conjugate[J].Bioorg Med Chem Lett,2012,22(24):7582-7587.
[3]紀春梅,甄永占,駱廣玲,等.賴氨大黃酸通過升高miRNA-451抑制肺癌A549細胞遷移[J].第三軍醫(yī)大學(xué)學(xué)報,2014,36(3):248-252.
[4]趙東梅,王威,劉坤,等.柱色譜-高速逆流色譜法分離純化虎杖中大黃素-8-O-β-D-吡喃葡萄糖苷[J].中草藥,2016,47(12):2118-2122.
[5]王曉劍,張悠,王曉紅.大黃散質(zhì)量標準研究[J].山西醫(yī)科大學(xué)學(xué)報,2016,47(11):988-991.
[6]馬惠玲,謝鑫,麥曦,等.高效液相色譜法測定黃連上清丸中蘆薈大黃素和大黃酸的含量[J].南昌大學(xué)學(xué)報(醫(yī)學(xué)版),2016,56(3):16-19.
[7]潘麗麗,李亭亭,楊頌,等.HPLC法同時測定牛黃解毒片中黃芩苷、黃芩素、蘆薈大黃素、大黃素的含量[J].中醫(yī)藥學(xué)報,2015,43(1):50-53.
[8]李莉,宋俊驪,王志梅,等.高效液相色譜法同時測定九制大黃丸中5組分含量[J].中國藥業(yè),2015,24(5):34-36.
[9]劉會前.HPLC法測定保腎靈I號中大黃素和大黃酚的含量[J].重慶醫(yī)學(xué),2005,34(11):1703-1704.
[10]郭芳芳,馮鋒,白云峰,等.高效毛細管電泳用于檢測黃花菜中4種活性物質(zhì)[J].食品科學(xué),2016,37(4):73-76.
[11]陳琴華,李鵬,朱軍.毛細管電泳技術(shù)在黃酮類化合物分析中的應(yīng)用進展[J].醫(yī)藥導(dǎo)報,2012,31(10):1329-1333.
[12]于虹敏,林文津,徐榕青,等.毛細管電泳技術(shù)在藥學(xué)研究的應(yīng)用概述[J].中國民族民間醫(yī)藥,2012,21(1):34.
[13]王德先,趙敬湘,楊更亮,等.毛細管區(qū)帶電泳法測定中藥金銀花中綠原酸的含量[J].中草藥,2000,31(6):432-434.
[14]楊世穎,劉淑聰,杜冠華,等.大黃中藥材及其醇、水提取物中大黃素成分分析標準物質(zhì)研究[J].中國中藥雜志,2016,41(3):456-462.
[15]林海丹,翟海云,周清.毛細管電泳法同時測定牛黃解毒片中大黃酸和大黃素的含量[J].中藥材,2012,35(6):992-993.