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    一株優(yōu)選釀酒酵母增殖培養(yǎng)條件優(yōu)化及發(fā)酵動(dòng)力學(xué)模型的構(gòu)建

    2018-02-01 00:51:13蔣艾廷李新玲姜淑娟妥彥峰馬鳳蓮韓京津牟光慶
    關(guān)鍵詞:生長優(yōu)化實(shí)驗(yàn)

    蔣艾廷, 李新玲,*, 姜淑娟, 妥彥峰, 錢 方, 馬鳳蓮, 韓京津, 牟光慶,*

    (1.新疆天潤生物科技股份有限公司, 新疆 烏魯木齊 830088; 2.大連工業(yè)大學(xué) 食品學(xué)院, 遼寧 大連 116034)

    *李新玲,女,高級工程師,主要從事乳品方面的研究,通信作者;

    *牟光慶,男,教授,博士,主要從事乳品方面的研究,通信作者。

    益生菌是指在合適的劑量下能夠?qū)θ嘶騽?dòng)物產(chǎn)生正面效益的活性微生物[1],主要包括一些乳桿菌屬、雙歧桿菌屬和酵母[2-3]。酵母菌是與人們?nèi)粘I蠲芮邢嚓P(guān)的微生物之一,對人體的益生作用主要表現(xiàn)在免疫調(diào)節(jié)、吸收膽固醇、排毒和抑制病原菌繁殖等方面[4-6],釀酒酵母因其獨(dú)特的微生物學(xué)特性和優(yōu)越的發(fā)酵性能,被廣泛地應(yīng)用于食品、飼料、醫(yī)藥、生物工程等領(lǐng)域[7-10]。

    在發(fā)酵食品,如發(fā)酵乳制品、酒類以及面包的工業(yè)化生產(chǎn)過程中,釀酒酵母通常以直投式發(fā)酵劑的形式被添加進(jìn)基料中,以達(dá)到縮短發(fā)酵時(shí)間、減少生產(chǎn)成本、穩(wěn)定產(chǎn)品質(zhì)量的目的[11]。而發(fā)酵劑中微生物細(xì)胞的數(shù)量與活力是影響產(chǎn)品品質(zhì)的關(guān)鍵因素[12],因此增殖培養(yǎng)成為制備高活性發(fā)酵劑的通用手段之一。目前國內(nèi)外研究人員[13-16]主要采用單因素結(jié)合響應(yīng)面的方法優(yōu)化微生物的增殖培養(yǎng)基,來獲得高濃度的細(xì)胞數(shù)量或代謝產(chǎn)物。發(fā)酵動(dòng)力學(xué)主要是研究環(huán)境因素與微生物代謝活動(dòng)之間的相互作用及隨時(shí)間變化的規(guī)律,客觀反映發(fā)酵過程的動(dòng)態(tài)特征。羅建平等[17]研究了黑曲霉在優(yōu)化條件下發(fā)酵麥麩生產(chǎn)β-葡萄糖苷酶的動(dòng)力學(xué)模型,為β-葡萄糖苷酶的工業(yè)生產(chǎn)提供了參考。姜勇等[18]在優(yōu)化鼠李糖乳桿菌的發(fā)酵條件和培養(yǎng)基組成的基礎(chǔ)上建立了發(fā)酵動(dòng)力學(xué)模型,發(fā)現(xiàn)高濃度的初始葡萄糖底物與代謝產(chǎn)物乳酸的積累會(huì)抑制發(fā)酵過程中細(xì)胞的生長。而有關(guān)釀酒酵母在增殖培養(yǎng)基中的生長規(guī)律、發(fā)酵動(dòng)力學(xué)及模型鮮有報(bào)道,因此研究擬以一株優(yōu)良的乳源性釀酒酵母為實(shí)驗(yàn)菌株,通過正交與響應(yīng)面的方法優(yōu)化其增殖培養(yǎng)基配方與發(fā)酵條件,并在此基礎(chǔ)上研究和建立該菌的生長規(guī)律和葡萄糖消耗的動(dòng)力學(xué)方程及模型,為實(shí)現(xiàn)釀酒酵母的高密度發(fā)酵及在奶啤生產(chǎn)中的應(yīng)用提供理論參考。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    釀酒酵母(Saccharomycescerevisiae)TR2由新疆天潤生物科技股份有限公司研發(fā)部選育,中科院微生物研究所鑒定;葡萄糖、蛋白胨、酵母膏、KH2PO4、檸檬酸均為國產(chǎn)分析純。

    YPD液體培養(yǎng)基:葡萄糖20 g/L、蛋白胨20g/L、酵母膏10 g/L,115 ℃滅菌20 min。此培養(yǎng)基主要用于活化菌種。

    YPD固體培養(yǎng)基:在YPD液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)之上加入質(zhì)量濃度0.02 g/mL的瓊脂,煮沸熔化滅菌而成。用于釀酒酵母的計(jì)數(shù)。

    增殖培養(yǎng)基:按照單因素實(shí)驗(yàn)或響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì),在YPD液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上加入所需增殖因子配成。

    1.2 儀器與設(shè)備

    SW-CJ-2FD型超凈工作臺(tái),蘇州安泰空氣技術(shù)有限公司;S210-K 型pH計(jì),梅特勒-托利多國際有限公司;Ci-L型顯微鏡,尼康儀器(上海)有限公司;Multiskan GO型酶標(biāo)儀,賽默飛世爾科技(中國)有限公司;ZHWY-200D型恒溫培養(yǎng)振蕩器,上海智城分析儀器制造有限公司;LRH-250F型生化培養(yǎng)箱,上海一恒科學(xué)儀器有限公司;SX-500型自動(dòng)高壓滅菌器,日本TOMY公司;5804R型高速離心機(jī),德國Eppendorf公司。

    1.3 實(shí)驗(yàn)方法

    1.3.1種子液的制備

    用接種環(huán)挑取一環(huán)保藏于4 ℃冰箱的釀酒酵母,在YPD平板中劃線,放置于28 ℃培養(yǎng)箱中倒置培養(yǎng)48 h;選取菌落形態(tài)飽滿的釀酒酵母接種于YPD液體培養(yǎng)基中,在溫度為28 ℃、轉(zhuǎn)速為150r/min的搖床中培養(yǎng)16~18 h以獲得種子液。

    1.3.2單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)

    在YPD液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上配制成含不同質(zhì)量濃度的碳源、氮源與無機(jī)鹽的增殖培養(yǎng)基,其葡萄糖、菊糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖的添加量均分別為10、30、50、70、90 g/L;蛋白胨、硫酸銨、硝酸鉀、尿素的添加量均分別為5、10、20、30、40、50 g/L;硫酸鎂、氯化鉀、磷酸二氫鉀、氯化鈣的添加量均分別為0.5、1.0、3.0、5.0、7.0 g/mL,按體積分?jǐn)?shù)2%的接種量接入釀酒酵母種子液,靜止培養(yǎng)16 h后測定OD值。

    1.3.3增殖培養(yǎng)基的優(yōu)化設(shè)計(jì)

    根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取對釀酒酵母增殖影響顯著的碳源、氮源與無機(jī)鹽作為實(shí)驗(yàn)因素,采用Box-Behnken Design設(shè)計(jì)三因素三水平的實(shí)驗(yàn),通過Design-Expert 8.05對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行響應(yīng)面分析,優(yōu)化培養(yǎng)基配方。

    1.3.4發(fā)酵條件的優(yōu)化設(shè)計(jì)

    在250 mL三角瓶中裝入60 mL增殖培養(yǎng)基,分別按1%、3%、5%、7%、9%的接種量接入培養(yǎng)基中,在溫度為28 ℃,轉(zhuǎn)速為150 r/min的搖床中培養(yǎng)16 h測定活菌數(shù);在250 mL三角瓶中分別裝入40、60、80、100、120 mL的增殖培養(yǎng)基,在相同條件下培養(yǎng)16 h測定活菌數(shù);在250 mL三角瓶中裝入60 mL增殖培養(yǎng)基,分別將初始pH值調(diào)節(jié)為4.0、4.5、5.0、5.5、6.0,在相同條件下培養(yǎng)16 h測定活菌數(shù)。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)結(jié)果,選取裝液量、接種量以及培養(yǎng)基的初始pH值為主要因素,設(shè)計(jì)三因素三水平的正交試驗(yàn)。

    1.3.5釀酒酵母生物量、OD值與葡萄糖濃度的測定

    收集50 mL培養(yǎng)16 h后的菌懸液于離心管中,7 000 r/min離心10 min,在相同條件下用無菌水洗滌2次,采用干重法測定生物量[19];使用光密度法測定菌懸液的OD600值,測定體積為100 μL;通過3,5-二硝基水楊酸(DNS)法測定離心后培養(yǎng)基中葡萄糖含量[20]。

    1.3.6數(shù)據(jù)處理

    采用Minitab 16軟件中的Fisher單因子多重比較對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行方差分析,置信水平為95%,圖中不同字母表示同一因素不同水平之間差異顯著(p<0.05);通過Matlab 2010b對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合;使用Origin 2016軟件作圖。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 釀酒酵母增殖培養(yǎng)基的優(yōu)化結(jié)果

    2.1.1碳源對釀酒酵母生長的影響

    碳源是指一切能滿足微生物生長繁殖所需碳元素的營養(yǎng)源,由于不同微生物所產(chǎn)生的酶系各不相同,因此對不同碳源的利用程度也存在差異[21]。釀酒酵母生長對葡萄糖、菊糖、蔗糖、麥芽糖、乳糖的利用程度各不相同,隨著培養(yǎng)基中碳源質(zhì)量濃度的增加,釀酒酵母的OD值均呈現(xiàn)先增大后減小的趨勢(見圖1)。這可能是由于碳源濃度過高導(dǎo)致培養(yǎng)基的滲透壓過高,不利于酵母生長[22]。當(dāng)以乳糖作為培養(yǎng)基的碳源時(shí),與其他各組相比釀酒酵母的OD值最低,可能是釀酒酵母缺少與分解乳糖有關(guān)的酶類[23]。葡萄糖、蔗糖添加量為50 g/L,菊糖、麥芽糖添加量為30 g/L時(shí),培養(yǎng)16 h后釀酒酵母的OD值最大,分別為0.742、0.633、0.456、0.506,其中50g/L的葡萄糖對釀酒酵母的增殖作用最為顯著(p<0.05)。當(dāng)葡萄糖添加量低于50 g/L或高于70 g/L、菊糖添加量低于30 g/L或高于50 g/L、蔗糖添加量低于50 g/L、麥芽糖添加量低于或高于30 g/L時(shí),釀酒酵母的OD值均顯著地下降(p<0.05)。因此選擇50 g/L的葡萄糖進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    圖1 碳源種類及濃度對釀酒酵母生長的影響Fig.1 Effect of carbon sources and concentrations on growth of Saccharomyces cerevisiae

    2.1.2氮源對釀酒酵母生長的影響

    氮源的主要作用是為微生物細(xì)胞生長和代謝提供氮元素及能量,不同的氮源對微生物有不同的生理學(xué)效應(yīng)[24]。釀酒酵母對蛋白胨、硝酸鉀、硫酸銨、尿素的利用程度具有顯著差異,見圖2。當(dāng)以20 g/L蛋白胨、30 g/L硝酸鉀、5 g/L硫酸銨、5 g/L尿素作為培養(yǎng)基的氮源時(shí),培養(yǎng)16 h后釀酒酵母的OD值最大,分別為0.762、0.583、0.620、0.474,其中20g/L的蛋白胨對釀酒酵母的增殖作用最為顯著(p<0.05)。當(dāng)培養(yǎng)基中蛋白胨濃度低于20 g/L、硝酸鉀濃度低于或高于30 g/L、硫酸銨濃度高于5 g/L、尿素濃度高于5 g/L時(shí),釀酒酵母的OD值均顯著地下降(p<0.05)。因此選擇20 g/L的蛋白胨進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    圖2 氮源種類及濃度對釀酒酵母生長的影響Fig.2 Effect of nitrogen sources and concentration on growth of Saccharomyces cerevisiae

    2.1.3無機(jī)鹽對釀酒酵母生長的影響

    圖3 無機(jī)鹽種類及濃度對釀酒酵母生長的影響Fig.3 Effect of inorganic salt types and concentration on growth of Saccharomyces cerevisiae

    無機(jī)鹽在微生物生長繁殖與合成目的產(chǎn)物的過程中起著十分重要的作用,如構(gòu)成細(xì)胞物質(zhì)、調(diào)解代謝產(chǎn)物及滲透壓等[25]。當(dāng)培養(yǎng)基中添加7.0 g/L硫酸鎂、1.0 g/L氯化鉀、3.0 g/L磷酸二氫鉀、7.0 g/L氯化鈣時(shí),16 h后釀酒酵母的OD值最大,分別為0.702、0.700、0.781、0.725,其中3 g/L的磷酸二氫鉀對釀酒酵母的增殖作用最好(見圖3)。當(dāng)培養(yǎng)基中無機(jī)鹽濃度在0.5~7.0 g/L時(shí),硫酸鎂、氯化鉀與氯化鈣對釀酒酵母的增殖作用不顯著(p≥0.05),當(dāng)磷酸二氫鉀的濃度在1.0~7.0 g/L時(shí),培養(yǎng)16 h后釀酒酵母的OD值無顯著差異(p≥0.05),而當(dāng)磷酸二氫鉀的濃度在低于1 g/L時(shí),培養(yǎng)16 h后釀酒酵母的OD值顯著地下降(p<0.05)。因此選擇3 g/L的磷酸二氫鉀進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn)。

    2.1.4響應(yīng)面試驗(yàn)優(yōu)化增殖培養(yǎng)基結(jié)果

    將50 g/L的葡萄糖、20 g/L的蛋白胨、3.0 g/L的磷酸二氫鉀作為響應(yīng)面設(shè)計(jì)的中心點(diǎn)零(0)水平,其中葡萄糖、蛋白胨、磷酸二氫鉀的高(+)水平分別為70、30、5 g/L;低(-)水平分別為30、10、1 g/L。根據(jù)BBD原理設(shè)計(jì)以葡萄糖、蛋白胨、磷酸二氫鉀為因素,OD值為響應(yīng)值的分析實(shí)驗(yàn),確定釀酒酵母的優(yōu)化培養(yǎng)基配方,響應(yīng)面試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果見表1,方差分析見表2。

    對實(shí)驗(yàn)結(jié)果進(jìn)行回歸擬合分析,得到二次多元回歸模型:

    Y=0.84+0.053A+0.044B-2.125×10-3C-
    0.046AB-0.13A2-0.12B2-0.067C2。

    (1)

    表1 BBD設(shè)計(jì)及結(jié)果

    表2 回歸模型方差分析

    采用Design-Expert 8.05軟件對回歸模型進(jìn)行響應(yīng)面分析,可得到交互項(xiàng)顯著(p<0.05)的葡萄糖與蛋白胨對釀酒酵母OD值影響的響應(yīng)面二維等高線和三維立體圖(見圖4),圖中橢圓排列越密集說明因素變化對結(jié)果影響越大。用此回歸模型預(yù)測葡萄糖、蛋白胨、磷酸二氫鉀的添加量分別為53.4、21.5 g/L和2.98 g/L時(shí),釀酒酵母的吸光度最大為0.852。采用上述培養(yǎng)進(jìn)行驗(yàn)證,釀酒酵母的OD值為0.848與預(yù)測值相近,可見該模型能較好地預(yù)測實(shí)際培養(yǎng)基中釀酒酵母的生長情況。

    圖4 葡萄糖與蛋白胨相互作用對釀酒酵母OD值的影響Fig.4 Effect of glucose and peptone on optical density of Saccharomyces cerevisiae

    2.2 釀酒酵母培養(yǎng)條件的優(yōu)化結(jié)果

    培養(yǎng)基的初始pH、溶氧與接種量對微生物生長都有重要的影響,如培養(yǎng)基的pH會(huì)影響菌體的生長、目的蛋白的表達(dá)和活性;溶氧會(huì)影響與微生物呼吸鏈有關(guān)的能量代謝;接種量會(huì)影響菌體的生長代謝[26-28]。因此選擇這3個(gè)因素進(jìn)行優(yōu)化,結(jié)果見表3。根據(jù)單因素實(shí)驗(yàn)設(shè)計(jì)正交試驗(yàn),測定不同處理組的活菌數(shù),結(jié)果如表4。各因素對于釀酒酵母活菌數(shù)的影響程度由大到小分別是 C、 B、A,較優(yōu)組合為 A2B3C2。由于此項(xiàng)組合在實(shí)驗(yàn)方案中不存在,因此將較優(yōu)組合與方案中活菌數(shù)最高的第9號正交試驗(yàn)進(jìn)行對比,驗(yàn)證結(jié)果。結(jié)果表明,當(dāng)裝液量為60 mL、接種量為5%、培養(yǎng)基初始pH為5.0時(shí),釀酒酵母生長較好,其活菌數(shù)為6.64×108CFU/mL。

    表3 較優(yōu)單因素實(shí)驗(yàn)條件

    2.3 菌體生長動(dòng)力學(xué)模型的建立

    在分批發(fā)酵過程中菌體干質(zhì)量的增加能夠?qū)ψ陨砩L產(chǎn)生抑制作用,擁有S型曲線的Logistic模型能很好地反映出這一普遍規(guī)律。該模型可描述群體前期的生長與營養(yǎng)供給之間的非線性關(guān)系,在細(xì)菌發(fā)酵過程中得到廣泛應(yīng)用[29]。

    (1)

    表4 正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)及結(jié)果

    式(2)中:X為酵母生物量,g/L;t為發(fā)酵時(shí)間,h;μm為菌體最大比生長速率,h-1;Xm為最大生物量,g/L。當(dāng)t=0、X=X0時(shí),對Logistic方程進(jìn)行積分變?yōu)椋?/p>

    (3)

    用Matlab軟件按式(3)對實(shí)驗(yàn)值進(jìn)行非線性擬合,計(jì)算得到動(dòng)力學(xué)參數(shù)X0、Xm、μm分別為0.237、8.674、0.515,將其代入式(3)可得到菌體生長動(dòng)力學(xué)方程:

    (4)

    由Logistic方程對實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)擬合,結(jié)果見圖5。由圖5可知,該方程能夠很好地描述釀酒酵母分批發(fā)酵過程中菌體的生長情況,計(jì)算值與實(shí)驗(yàn)數(shù)據(jù)吻合較好,相關(guān)系數(shù)R2=0.997 3。

    圖5 菌體生長動(dòng)力學(xué)模型擬合曲線Fig.5 Microbial growth kinetic model fitting curve

    2.4 葡萄糖消耗動(dòng)力學(xué)模型的建立

    根據(jù)物料平衡,發(fā)酵過程中底物的消耗通常被用作新生菌體的合成、細(xì)胞基本生命活動(dòng)的維持以及產(chǎn)物的合成[30]。因此,底物消耗速率可用與Luedeking-Piret相似的方程式來描述。

    (5)

    式(5)中:μ為菌體比生長速率,h-1;YG為菌體生長得率系數(shù),g/g;YP為產(chǎn)物對基質(zhì)的得率系數(shù),g/L;m為菌體對基質(zhì)的維持系數(shù),g/(L·h)。

    在菌體生長期階段,底物的消耗主要用于菌體生長和細(xì)胞維持上,因此方程(5)可轉(zhuǎn)化為:

    (6)

    當(dāng)t=t0時(shí),X=X0,S=S0,將式(4)代入式(6)中積分,對分批發(fā)酵的數(shù)據(jù)進(jìn)行擬合計(jì)算得到動(dòng)力學(xué)參數(shù)YG=0.162 g/g,m=0.026 g/(L·h),S0=49.57 g/L,將各參數(shù)值代入底物消耗動(dòng)力學(xué)方程中整理得:

    (7)

    模型計(jì)算值與實(shí)驗(yàn)值的比較見圖6,結(jié)果表明該模型能很好地描述釀酒酵母在發(fā)酵過程葡萄糖濃度的變化,擬合的相關(guān)系數(shù)R2=0.978 4。

    圖6 葡萄糖消耗動(dòng)力學(xué)擬合曲線Fig.6 Glucose consumption kinetics fit curve

    3 結(jié) 論

    實(shí)驗(yàn)以釀酒酵母TR2為實(shí)驗(yàn)菌株在YPD液體培養(yǎng)基的基礎(chǔ)上進(jìn)行增殖培養(yǎng),通過單因素實(shí)驗(yàn)與響應(yīng)面試驗(yàn)分析確定了釀酒酵母TR2增殖的優(yōu)化培養(yǎng)基配方為葡萄糖53.4 g/L、蛋白胨21.5 g/L、酵母膏10 g/L、磷酸二氫鉀2.98 g/L;通過正交試驗(yàn)設(shè)計(jì)確定了釀酒酵母TR2的優(yōu)化培養(yǎng)條件為初始pH值5.0、接種量5%、裝液量60 mL、搖床轉(zhuǎn)速150 r/min。在優(yōu)化條件下28 ℃培養(yǎng)16 h,釀酒酵母TR2細(xì)胞數(shù)量可達(dá)到6.64×108CFU/mL。同時(shí)以葡萄糖為限制性底物通過建立數(shù)學(xué)模型分析釀酒酵母生長與底物的消耗過程,結(jié)果表明實(shí)驗(yàn)值與模型擬合較好,R2分別為0.997 3與0.978 4,描述了釀酒酵母在生長代謝過程中生物量與葡萄糖消耗之間的聯(lián)系,為釀酒酵母TR2的發(fā)酵過程控制及在奶啤生產(chǎn)應(yīng)用環(huán)節(jié)設(shè)計(jì)提供理論參考。

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