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    四川傳統(tǒng)腌臘肉制品中乳酸菌的分離鑒定及其抗氧化能力研究

    2018-02-01 10:26:39田圓圓劉絨梅史健陽張國建
    中國測試 2018年1期
    關(guān)鍵詞:懸浮液肉制品提取液

    田圓圓,劉絨梅,耿 琦,史健陽,張國建,孫 群

    (四川大學生命科學學院 生物資源與生態(tài)環(huán)境教育部重點實驗室,四川 成都 610064)

    0 引 言

    四川傳統(tǒng)腌臘肉制品因其獨特的風味受到廣大消費者的喜愛。四川傳統(tǒng)腌臘肉制品屬于自然發(fā)酵肉制品,依賴于原料肉和加工環(huán)境中的微生物群[1];因此,其中存在豐富的具有地域特色的微生物菌種資源。

    腌臘肉制品中存在廣泛的氧化反應(yīng),包括脂肪氧化和蛋白氧化。適度的氧化對產(chǎn)品風味和滋味的形成有重要貢獻,但過度的脂肪氧化和蛋白質(zhì)氧化會影響產(chǎn)品的質(zhì)量,給產(chǎn)品帶來持水性降低、質(zhì)構(gòu)變差、顏色變暗、風味變差等問題[2-3]。因此,減緩腌臘肉制品的氧化反應(yīng),對保證產(chǎn)品質(zhì)量和延長貨架期具有重要意義。阻斷肉與肉制品中的自由基反應(yīng)是減緩氧化的最有效途徑之一。現(xiàn)如今,大部分抗氧化劑來自化學合成和天然物質(zhì)的提取,但是化學合成的抗氧化劑可能會生成新的自由基造成產(chǎn)品氧化[4],而天然抗氧化物質(zhì)又有提取純化過程較復雜的缺點。已有研究表明,某些乳酸菌具有抗氧化的能力,乳酸菌具有生長周期短、安全和價格低廉的優(yōu)勢[5]。

    乳酸菌是發(fā)酵肉制品中的主導微生物,對發(fā)酵肉制品的質(zhì)量和安全起著至關(guān)重要的作用[6],乳酸菌在發(fā)酵肉制品中的作用得到了廣泛的研究。用于發(fā)酵肉制品的乳酸菌的主要發(fā)酵特征需要滿足肉類發(fā)酵劑要求,即具有蛋白酶和脂肪酶活性,不產(chǎn)NH3、生物胺、H2S和CO2,能夠耐受6%NaCl和150mg/kg NaNO2,以及能夠在10~30℃生長等[7]。已有的研究表明某些乳酸菌具有抗氧化能力,通常具有抗氧化能力的乳酸菌具有清除羥自由基和二苯苦味肼基(DPPH自由基)能力,以及還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力。如從中國傳統(tǒng)發(fā)酵食品中分離的Lactobacillus plantarum對羥自由基和二苯苦味肼基的清除率分別達到44.31%和53.05%[8],從哈爾濱紅腸中分離的Pediococcus pentosaceus能夠清除羥自由基和DPPH自由基,具有還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力,并且能夠顯著降低發(fā)酵香腸的脂肪氧化和蛋白質(zhì)氧化程度[4]。同樣L.fermentum具有清除羥自由基和DPPH自由基的能力[9]。

    本研究從采集于四川多個地區(qū)的7種農(nóng)家自制傳統(tǒng)腌臘肉制品中篩選乳酸菌,通過16S rDNA測序?qū)Y選菌株進行鑒定,并檢測篩選菌株的主要發(fā)酵特征,對主要發(fā)酵特征滿足肉類發(fā)酵要求的菌株,進一步檢測其清除羥自由基、DPPH自由基的能力,還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力,以評價其抗氧化能力。從而篩選出有望應(yīng)用于發(fā)酵肉制品并減緩產(chǎn)品氧化的潛力菌株。

    1 材料與方法

    1.1 材料與試劑

    一共7個樣品采集于四川省多個地區(qū)農(nóng)戶,包括四川省眉山市、都江堰市、成都市、資陽市和宜賓市。樣品采集后于4℃保存,2d內(nèi)進行篩菌實驗。

    引物27F、1492R合成于Invitrogen(上海)貿(mào)易有限公司;細菌DNA提取試劑盒,北京天根公司;亞硝酸鈉、精氨酸、半胱氨酸、醋酸鉛、溴甲酚紫、石蕊、中性紅、乙酸鈉、蛋白胨、吐溫80、葡萄糖、酵母浸粉、氯化鈉等生化試劑,均購自成都金蜀都化驗設(shè)備有限公司。鄰二氮菲、DPPH、亞油酸、抗壞血酸,購于成都云德科技有限公司。

    MRS培養(yǎng)基按文獻[4]配制:10 g蛋白胨、10 g牛肉膏、5 g酵母浸粉、20 g葡萄糖、5 g乙酸鈉、2 g K2HPO4、2 g 檸 檬 酸 銨 、0.5 g MgSO4·7H2O、0.25 g MnSO4·4H2O、1 mL 吐溫 80、20 g瓊脂,補水至 1 L,121℃滅菌15min。

    篩選菌株主要發(fā)酵特征檢測培養(yǎng)基按照文獻[10-11]配制:

    蛋白酶活性檢測培養(yǎng)基:10g脫脂奶粉,100 mL蒸餾水,4mL濃度為25g/L的石蕊,分裝試管,高度為 4~5cm,113℃滅菌15min。

    脂肪酶活性檢測培養(yǎng)基:MRS固體培養(yǎng)基中加入15%的豬油和中性紅指示劑,121℃滅菌20min。

    精氨酸產(chǎn)NH3培養(yǎng)基:10g蛋白胨、20g精氨酸、5 g酵母浸粉、0.5 g葡萄糖、5 g乙酸鈉、2 g K2HPO4、2 g 檸檬酸鈉、0.5 g MgSO4·7H2O、0.25 g MnSO4·4H2O、1mL吐溫80、20g瓊脂,補水至1L,121℃滅菌15min。

    產(chǎn)生物胺檢測培養(yǎng)基:5 g蛋白胨,3 g酵母膏,1 g葡萄糖,1 mL濃度為1.6%的溴甲酚紫-乙醇溶液,1L蒸餾水,加熱溶解,加入5gL-氨基酸或者10g DL-氨基酸,調(diào)pH至6.8。對照培養(yǎng)基不加氨基酸。分裝小試管,上面滴加一層液體石蠟,115℃滅菌10min。

    產(chǎn)H2S培養(yǎng)基(醋酸鉛紙條法):10 g蛋白胨,10g牛肉膏,5g氯化鈉,0.5g半胱氨酸,1L蒸餾水,調(diào) pH至7.0~7.4,112℃滅菌 20min。

    葡萄糖產(chǎn)CO2培養(yǎng)基:10g蛋白胨,5 g氯化鈉,1L蒸餾水,加熱溶解,待冷卻后將pH調(diào)至7.4。加入1~2 mL濃度為1.6%的溴甲酚紫乙醇溶液,再加入葡萄糖使葡萄糖終濃度為20%,分裝試管,將杜氏小管倒置放入試管中,121℃滅菌30min。

    耐鹽試驗培養(yǎng)基:在MRS液體培養(yǎng)基中加入NaCl,使得NaCl的終濃度為6%。

    耐亞硝酸鹽試驗培養(yǎng)基:在MRS液體培養(yǎng)基中加入NaNO2,使得NaNO2的終濃度為150mg/L。

    1.2 主要儀器與設(shè)備

    S 1000 PCR儀,Wide Mini-Sub Cell GT型水平電泳槽,PowerPac Basic型電泳儀電源,Universal Hood II型凝膠成像系統(tǒng),美國Bio-rad公司;Micro 21 R型高速冷凍離心機,美國Thermo Fisher Scientific公司;AFZ-1002-U型超純水儀,美國Aquapro公司;UV-2450紫外分光光度計,日本Shimadzu公司。

    1.3 乳酸菌的分離與鑒定

    在無菌條件下,稱取5 g樣品,剪碎,放入裝有50 mL無菌生理鹽水的三角瓶中,室溫震蕩30 min。靜置數(shù)分鐘,取1 mL上清液依次進行10倍梯度稀釋涂布,37℃培養(yǎng)48h。根據(jù)培養(yǎng)基上的菌落形態(tài)和初步鏡檢觀察,挑選不同的特征菌落,經(jīng)多次劃線分離純化。純化之后的菌株增殖培養(yǎng)之后,提取菌株DNA,并進行擴增,測序。測序結(jié)果輸入到NCBI數(shù)據(jù)庫中進行序列比對。

    1.4 篩選菌株在不同溫度下生長情況的檢測

    將篩選菌株接種于MRS液體培養(yǎng)基中,分別于5,10,15,20,25,30℃下培養(yǎng) 24h,測定 600nm 處OD值。

    1.5 篩選菌株主要發(fā)酵特征的檢測

    將篩選菌株接種到相應(yīng)的發(fā)酵特征檢測培養(yǎng)基,培養(yǎng)檢測。

    1.6 篩選菌株的培養(yǎng)及無細胞提取液的制備

    篩選菌株采用MRS液體培養(yǎng)基,37℃靜置培養(yǎng)24h,所有的菌株經(jīng)過3次傳代。培養(yǎng)液離心(10000g,10min,4℃),收集菌體。0.02mol/L磷酸鈉緩沖液洗滌菌體3次,菌體重懸于滅菌的0.02 mol/L磷酸鈉緩沖液,菌體濃度調(diào)至107CFU/mL,得到細胞懸浮液。冰浴超聲破碎細胞懸浮液,離心(10000g,10min,4℃),收集上清液,即為無細胞提取液。

    1.7 篩選菌株清除羥自由基和DPPH自由基能力的測定

    篩選菌株對羥自由基的清除能力的測定方法參照文獻[11]。依次取1mL鄰二氮菲(0.75mmol/L),2mL磷酸鹽緩沖溶液(0.2 mol/L,pH 7.4)和 1 mL樣品(細胞懸浮液或者無細胞提取液)混勻。再加入1mL H2O2(0.01%),37℃水浴反應(yīng) 90min。 加入細胞懸浮液的一組,離心,取上清液。分別測定上清液在536nm處的吸收值。

    式中:AS——樣品的吸收值;

    A0——沒加樣品的對照組的吸收值;

    A——沒加樣品和H2O2的空白吸收值。

    篩選菌株對DPPH自由基清除能力的測定方法參照He[12]與Wang[9]的方法稍加改進。取1mL樣品(細胞懸浮液或者無細胞提取液)和2 mL DPPH(0.2mmol/L,溶于95%乙醇),混勻。室溫暗反應(yīng)30min。加入細胞懸浮液的一組,離心,取上清液。分別測定上清液在517nm處的吸收值。

    式中:AS——實驗組的吸收值;

    AB——加入95%乙醇和樣品的空白吸收值;AC——加磷酸鹽緩沖溶液和DPPH溶液的對照組的吸收值。

    1.8 篩選菌株還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力的測定

    篩選菌株還原能力的測定參考文獻[13]的方法,并略有改進。依次取0.5mL樣品(細胞懸浮液或者無細胞提取液),0.5mL磷酸鹽緩沖溶液(0.2 mol/L,pH 6.6)和 0.5 mL 鐵氰化鉀溶液(1%),混勻,50℃水浴反應(yīng)20min。加入0.5mL三氯乙酸溶液(10%),離心(3 000g,5min),取 500μL 上清液和 200 μL 三氯化鐵溶液混勻,靜置10min。測定在700nm處的吸收值。吸收值越大,還原活性就越大。

    菌株抗脂質(zhì)過氧化能力的測定參照Lee等[14]的方法。取0.5 mL磷酸鹽緩沖溶液 (0.02 mol/L,pH 7.4),1 mL 亞油酸乳化液,0.2 mL FeSO4溶液(0.01%),0.02 mL抗壞血酸(0.01%)和 0.4 mL樣品(細胞懸浮液或者無細胞提取液)混勻,37℃反應(yīng)12h。吸取1mL反應(yīng)液,0.1mL三氯乙酸溶液(4%),1 mL硫代巴比妥酸溶液(0.8%)和0.1 mL 2,6-二叔丁基-4-甲基苯酚溶液(0.4%)混勻。100℃下反應(yīng)30min,冷卻。加入1mL正丁醇抽提,離心(1800g,10min)吸取上清液,測532nm處吸收值(AS)。 以磷酸鹽緩沖液代替樣品為對照(AB)。

    2 結(jié)果與分析

    2.1 乳酸菌的分離鑒定

    從四川傳統(tǒng)腌臘肉制品中共分離純化出乳酸菌逾100株,通過比較菌落形態(tài)及鏡檢觀察,共挑選40株乳酸菌進行分子鑒定,鑒定結(jié)果如表1所示。各菌株與NCBI BLAST數(shù)據(jù)庫檢索得到的最相似模式菌株同源性均大于或等于99%。初步鑒定出有7種不同的乳酸菌。所占比例最多的是Weissella hellenica,其次是Leuconostoc mesenteroides。分離到的乳酸菌,在已有的研究報道中,除W.confusa被報道為致病菌外[15],其余均在肉類發(fā)酵劑使用,因此舍去W.confusa,然后挑選出初步判斷為不一樣的8株菌株進行進一步研究。對這8株菌進行編號為L1:W.hellenica strain;L2:L.plantarum; L3:W.hellenica;L4:L.mesenteroides; L5:L.curvatus;L6:L.plantarum;L7:W.cibaria;L8:W.viridescens。

    2.2 篩選菌株的主要發(fā)酵特征

    用作肉類發(fā)酵劑的菌株需要滿足肉類發(fā)酵劑的要求,即具有蛋白酶和脂肪酶活性,不產(chǎn)NH3、不產(chǎn)生物胺、不產(chǎn)H2S、不產(chǎn)CO2、能夠耐受6%NaCl和150mg/kg NaNO2等[9]。篩選菌株的主要發(fā)酵特征見表 2,篩選菌株中 L2、L3、L4、L5、L6、L8 具有分解蛋白的能力。所有篩選菌株均不具有分解脂質(zhì)、產(chǎn)NH3、產(chǎn)生物胺、產(chǎn)H2S和產(chǎn)CO2的能力。所有篩選菌株均能夠耐受6%NaCl和150mg/kg NaNO2,其中L6對NaCl的耐受性最差,耐受性僅為23.22%,L7和L8對NaNO2的耐受性相對較差,NaNO2耐受性分別為72.29%和72.55%。

    表1 從四川傳統(tǒng)腌臘肉制品中分離的乳酸菌的種類及所占比例

    2.3 篩選菌株在不同溫度下生長情況

    制備發(fā)酵肉制品原料時的溫度范圍為4~7℃,發(fā)酵過程的溫度范圍為18~24℃,干燥成熟過程的溫度范圍為12~15℃。用作肉類發(fā)酵劑的菌株要求能夠在5~30℃存活或生長[6]。篩選菌株在不同溫度的生長情況如圖1所示,篩選到的菌株在5℃都幾乎不生長,L1和L7適應(yīng)的溫度范圍較窄,在5~20℃都不生長,而篩選到的其他菌株適應(yīng)的溫度范圍較寬,在15~30℃均能生長,在30℃生長最好,其中L2和L4在低溫下生長能力較強,這與肉類發(fā)酵劑的要求相符。因此舍去L1和L7,對其余篩選菌株進一步研究。

    圖1 篩選菌株在不同溫度下生長情況

    表2 篩選菌株的主要發(fā)酵特征1)-2)

    2.4 篩選菌株清除羥自由基和DPPH自由基能力

    檢測對DPPH自由基和羥自由基的清除能力是評價抗氧化能力的常用有效方法。為了初步判斷具有抗氧化能力的物質(zhì)在胞內(nèi)還是胞外,同時檢測了細胞懸浮液和無細胞提取液的清除能力。由圖2可以看出,所有篩選菌株的無細胞提取液和細胞懸浮液均具有清除DPPH自由基和羥自由基的能力,L6的細胞懸浮液清除能力最強,清除率分別至24.16%和52.48%。所有篩選菌株的細胞懸浮液對DPPH自由基的清除能力均強于其無細胞提取液的清除能力。L2、L3、L8的無細胞提取液和細胞懸浮液對羥自由基的清除率均高于20%。雖然用于實驗的菌體濃度(107cells/mL)比文獻[16]的菌體濃度(1010cells/mL)低,但對自由基的清除率卻高于其實驗結(jié)果。已有研究表明,細胞懸浮液具有的抗氧化能力與菌體表面的蛋白和多糖有關(guān)[6],無細胞提取液具有的抗氧化能力與細胞內(nèi)的抗氧化酶有關(guān),例如谷胱甘肽過氧化物酶,過氧化氫酶,超氧化物歧化酶等[17]。

    圖2 篩選菌株DPPH自由基和羥自由基清除能力

    2.5 篩選菌株還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力

    圖3 篩選菌株還原能力

    圖4 篩選菌株抑制脂質(zhì)過氧化能力

    對還原能力和抗脂質(zhì)過氧化能力的檢測同樣是評價抗氧化能力的常用指標之一。已有研究報道中將在700nm處的吸收值達到0.040視為具有較高的還原能力[4],圖3表明篩選的菌株均具有較高還原能力,尤其是L5和L6。細胞懸浮液具有還原能力與細胞表面的多糖和蛋白有關(guān),而無細胞提取液具有還原能力與細胞內(nèi)的抗氧化物質(zhì)有關(guān),如NADH、NADPH、谷胱甘肽、尿酸等[18]。圖4表明,除L6的無細胞提取液和L8的細胞懸浮液不具有抗脂質(zhì)過氧化能力,其余篩選菌株的無細胞提取液和細胞懸浮液菌體均具有抗脂質(zhì)過氧化能力,抗脂質(zhì)過氧化率均高于20%,L5抗脂質(zhì)過氧化率最高,至63.36%。篩選菌株具有抗脂質(zhì)過氧化能力可能是因為它們能夠清除超氧陰離子[19]。

    3 結(jié)束語

    本研究從四川傳統(tǒng)腌臘肉制品中篩選出8株乳酸菌,綜合來看,篩選菌株中L4,即L.mesenteroides,不僅主要發(fā)酵特征滿足肉類發(fā)酵劑的要求,對NaCl和NaNO2耐受性較強,適應(yīng)的溫度范圍寬,在低溫下生長能力較強,還具有較強的抗氧化能力。結(jié)合L4在篩選菌株中所占比例較大這一實驗結(jié)果,猜測L4對四川傳統(tǒng)腌臘肉制品的品質(zhì)具有重要貢獻。因此從四川農(nóng)家自制傳統(tǒng)腌臘肉制品篩選出的具有抗氧化能力的L.mesenteroides值得進一步研究,有望開發(fā)成具有抗氧化能力的肉類發(fā)酵劑,用于發(fā)酵肉制品生產(chǎn),減緩產(chǎn)品氧化、保證產(chǎn)品質(zhì)量和延長產(chǎn)品貨架期。

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