• 
    

    
    

      99热精品在线国产_美女午夜性视频免费_国产精品国产高清国产av_av欧美777_自拍偷自拍亚洲精品老妇_亚洲熟女精品中文字幕_www日本黄色视频网_国产精品野战在线观看 ?

      P301L突變tau蛋白轉基因動物模型及其應用

      2018-01-22 11:16:37馬登磊張如意
      中國比較醫(yī)學雜志 2018年1期
      關鍵詞:微管動物模型月齡

      馬登磊,張如意,李 林

      (首都醫(yī)科大學宣武醫(yī)院藥物研究室,北京市老年病醫(yī)療研究中心,神經(jīng)變性病教育部重點實驗室,北京市神經(jīng)藥物工程研究中心,北京 100053)

      微管相關蛋白tau(microtubule-associated protein tau,MAPT)是一種微管結合蛋白,在細胞中發(fā)揮生理功能。Tau蛋白的病變可以引起以高度磷酸化tau聚集為特點的多種tau蛋白病(tauopathies),包括阿爾茨海默病(Alzheimer’s disease,AD)、連鎖于17號染色體tau突變伴帕金森綜合征的額顳葉癡呆(frontotemporal dementia with parkinsonism linked to tau mutations on chromosome 17,F(xiàn)TDP-17)、皮質(zhì)基底節(jié)變性等。作為AD的兩個主要病理特征之一,tau蛋白的病變與認知功能降低和神經(jīng)元丟失具有很高的相關性[1],一些以tau蛋白為靶點的治療研究在動物模型和臨床試驗中顯示出較好的療效[2-3],因此很多學者認為tau蛋白是治療AD的潛在有效靶點。在tau蛋白相關研究中,tau蛋白轉基因動物模型可以模擬AD及其他tau蛋白病的一些疾病特征,被廣泛應用于相關疾病的病理機制研究及藥物研發(fā)中[4-5]。隨著國內(nèi)科研水平的發(fā)展以及對tau蛋白認識的加深,基于tau蛋白轉基因動物模型的疾病機制或藥理研究已經(jīng)得到國內(nèi)多個實驗室的關注。

      1 微管相關蛋白tau

      1.1 結構和功能

      Tau基因位于17號染色體長臂(17q21),含有16個外顯子。在正常成人大腦中,由于mRNA在外顯子1、2、10的選擇性剪接,tau蛋白存在6種不同的異構體:4R2N、3R2N、4R1N、3R1N、4R0N、3R0N。Tau蛋白由352~441個氨基酸組成。在正常的神經(jīng)元中,tau蛋白主要富集于神經(jīng)元軸突內(nèi),與微管結合,調(diào)節(jié)微管的組裝與解聚,維持微管的穩(wěn)定性。在異常情況下,如tau蛋白的異常磷酸化,或3R tau和4R tau的比例發(fā)生變化,會影響到tau的正常生理功能,并引起相應的神經(jīng)系統(tǒng)病理變化[6]。

      1.2 Tau基因突變

      Tau基因突變最早發(fā)現(xiàn)于FTDP-17患病家系中。FTDP-17,即連鎖于17號染色體伴帕金森綜合征的額顳葉癡呆,是以精神行為異常、言語不利或運動障礙為特點的癡呆綜合癥。迄今為止,已經(jīng)在17號染色體上發(fā)現(xiàn)了34個tau基因的突變,包括N279K、G272V、P301L、P301S、Q336R、V337M、R406W等[7]。不同F(xiàn)TDP-17患者的臨床特點和發(fā)病程度因為突變基因不同而各異。根據(jù)主要臨床表現(xiàn),一類以N279K等位點的基因突變引起的帕金森綜合征為主要表現(xiàn),一類以P301L等位點的基因突變引起的癡呆為主要臨床表現(xiàn)[8]。

      P301L突變類型的FTDP-17患者以癡呆為主要的臨床表現(xiàn),發(fā)病年齡平均為33歲,大部分患者伴有行為和人格改變(如攻擊性和自制能力下降)和語言功能的退化[9]。P301L突變位于外顯子10,全長tau編碼301位氨基酸的三個堿基中第二個C錯義突變?yōu)門,導致該部位的脯氨酸(Pro)突變?yōu)榱涟彼?Leu)。在有P301L-tau基因突變的病人中,tau的病變體主要由4R tau組成,并在神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞中聚集成糾纏的細絲或雙股螺旋細絲(paired helical filaments,PHFs)[10]。相對于野生型tau蛋白,P301L突變的tau蛋白更易促進tau蛋白聚合成細絲和PHFs,在體外P301L突變tau蛋白更容易被肝素或花生四烯酸誘導而聚集成細絲[11]。

      2 P301L突變tau蛋白轉基因動物模型——rTg4510小鼠

      目前國內(nèi)外學者已經(jīng)建立了多個表達P301L突變的tau蛋白轉基因動物模型,不同啟動子引起不同程度的tau蛋白表達和病變。其中rTg4510小鼠可以在前腦區(qū)域過表達P301L突變tau蛋白,具有明顯的tau蛋白病理表現(xiàn)。

      2.1 rTg4510小鼠的構建

      Santacruz等[12]構建了以鈣調(diào)蛋白激酶II(calmodulin kinase II,CaMKII)為啟動子表達P301L突變的人0N4R tau蛋白的轉基因小鼠,即rTg4510轉基因小鼠。CaMKII主要表達在前腦興奮性神經(jīng)元中,因此CaMKII作為大腦皮層和海馬神經(jīng)元特異性啟動子而廣泛應用于神經(jīng)系統(tǒng)相關模型中。該轉基因小鼠應用了Tet-off可調(diào)控基因表達系統(tǒng),利用大腸桿菌轉座子Tnl0四環(huán)素抗性操縱子在真核細胞中定量并特異地控制外源基因表達。該系統(tǒng)包括兩部分,其中一部分由Tet應答元件(Tet response element,TRE)和目的基因P301L突變的4R0N-tau的cDNA組成,另外一部分由CaMKII啟動子和Tet轉錄活化因子組成。在rTg4510轉基因小鼠CaMKII表達的前腦區(qū)域,Tet轉錄活化因子結合到TRE進而誘導P301L突變tau蛋白的過表達。而當轉基因小鼠暴露于Tet或其衍生物時,TRE不被激活,基因過表達處于關閉狀態(tài)。rTg4510轉基因小鼠可以由Tg(Camk2a-tTA)和Tg(tetO-MAPT*P301L)兩個轉基因小鼠交配得到,兩個轉基因系統(tǒng)均陽性的子代即過表達P301L-tau蛋白的rTg4510轉基因小鼠[13]。

      2.2 rTg4510小鼠的病理表現(xiàn)

      rTg4510小鼠可以在前腦區(qū)域表達13倍于內(nèi)源性tau的人P301L突變tau蛋白。免疫染色的結果顯示,rTg4510轉基因小鼠從1月齡起海馬區(qū)就出現(xiàn)tau蛋白的磷酸化和寡聚體[14-15],2.5月齡開始出現(xiàn)tau蛋白的沉積,3月齡就出現(xiàn)神經(jīng)原纖維纏結(neurofibrillary tangles,NFTs)[16]。除了磷酸化之外,4月齡以后的tau蛋白聚集體中還存在明顯的乙?;?、泛素化和硝基化等蛋白修飾[16]。而且從2.5月齡開始,rTg4510小鼠的海馬和前腦區(qū)域就出現(xiàn)DNA的斷裂和細胞凋亡因子caspase-3的激活,進而引起caspase對tau蛋白的截斷作用,并加劇tau蛋白的病變[17-18]。除了過表達外源性tau蛋白的相關病變外,從4月齡開始小鼠內(nèi)源性tau蛋白在神經(jīng)元和少突膠質(zhì)細胞內(nèi)出現(xiàn)異常的聚集[19]。

      伴隨著磷酸化tau蛋白和神經(jīng)原纖維纏結的增多,rTg4510轉基因模型小鼠從5.5月齡開始出現(xiàn)海馬CA1區(qū)神經(jīng)元的變性死亡,而9月齡以上的小鼠會出現(xiàn)大量神經(jīng)元的變性死亡[20]。此外,rTg4510小鼠還會出現(xiàn)小膠質(zhì)細胞的激活和神經(jīng)炎癥[21-22],谷氨酸代謝異常和興奮性毒性[23],線粒體缺陷和內(nèi)質(zhì)網(wǎng)應激[24-25];3月齡開始出現(xiàn)軸突運輸缺陷,突觸丟失和突觸功能紊亂[26-27],海馬CA1區(qū)錐體神經(jīng)元興奮性降低以及皮層神經(jīng)元網(wǎng)絡活性降低等神經(jīng)電生理的變化等[28-29]。電鏡結果顯示,從4月齡起海馬CA1區(qū)神經(jīng)元和膠質(zhì)細胞內(nèi)就出現(xiàn)了明顯的超微結構病理表現(xiàn)[30]。在體影像學檢測顯示,rTg4510小鼠杏仁核和海馬區(qū)的神經(jīng)活動明顯減少[31],從5.5月齡開始出現(xiàn)皮層和海馬萎縮[32],以及tau蛋白病變引起的年齡相關的白質(zhì)受損[33]等病理表現(xiàn)。

      2.3 rTg4510小鼠的行為學變化

      由于明顯的tau蛋白病變及其他病理表現(xiàn),rTg4510小鼠也在多個行為學測試中表現(xiàn)出認知能力障礙[12, 34-35]和精神狀態(tài)異常[36]。2.5月齡之后,rTg4510小鼠在Morris水迷宮試驗中表現(xiàn)出明顯的年齡相關的空間認知障礙,而在給予強力霉素(doxycycline)抑制tau蛋白的過表達后則不出現(xiàn)認知障礙。6月齡rTg4510小鼠未出現(xiàn)運動功能障礙[12]。除水迷宮外,rTg4510小鼠在條件恐懼性試驗[36]和Barnes迷宮試驗[35]中均顯示認知能力的障礙。此外,在曠場試驗和高架十字迷宮試驗中rTg4510小鼠也表現(xiàn)出了精神異常,這些異??赡芘ctau病變引起杏仁核受損有關[36]。另外,5.5月齡雌性rTg4510小鼠的認知障礙程度比同月齡的雄性轉基因小鼠嚴重,其原因可能與雌性小鼠中tau蛋白磷酸化等病理表現(xiàn)更為嚴重有關[37]。

      3 rTg4510小鼠模型的應用

      由于rTg4510小鼠表現(xiàn)出明顯的tau蛋白相關的病變,因此已用于tau蛋白病的發(fā)病機制和治療靶點的研究。有研究發(fā)現(xiàn),rTg4510小鼠腦內(nèi)tau蛋白寡聚體的含量和可溶性磷酸化tau蛋白的表達增高與該小鼠認知能力的降低呈明顯的相關性[16, 38],而含有神經(jīng)纖維纏結的神經(jīng)元仍能夠發(fā)揮生理功能[39]。此外,有報告應用該模型小鼠研究Aβ寡聚體與tau蛋白病變的關系[40]、caspase剪切的tau蛋白與神經(jīng)原纖維纏結形成的關系[41]等,為發(fā)現(xiàn)新的發(fā)病機制和干預靶點提供實驗依據(jù)。

      另外,rTg4510轉基因小鼠也用于AD及其他tau蛋白病治療藥物的研究,包括:

      (1)Tau蛋白的免疫療法:有研究給予rTg4510小鼠tau蛋白引發(fā)主動免疫,可以降低腦內(nèi)tau蛋白的含量和神經(jīng)炎癥[42]。側腦室注射tau蛋白構象相關抗體MC1后,rTg4510小鼠的tau蛋白病理表現(xiàn)以及認知障礙得到改善[43]。有研究者發(fā)現(xiàn),抗磷酸化tau蛋白抗體可以降低rTg4510小鼠腦內(nèi)和腦脊液中磷酸化tau蛋白的含量[44]。

      (2)降低tau蛋白磷酸化:給予GSK2606414(蛋白激酶R樣內(nèi)質(zhì)網(wǎng)激酶抑制劑)能夠降低rTg4510小鼠腦內(nèi)tau蛋白的磷酸化水平,保護神經(jīng)元[45]。藥物治療rTg4510小鼠可通過提高tau蛋白的糖基化水平而降低病變tau蛋白的異常聚集和腦脊液中tau蛋白的水平,保護神經(jīng)元[46-47]。

      (3)促進tau蛋白清除,抑制tau蛋白聚集:轉錄因子EB(TFEB)能夠特異性地識別磷酸化和錯誤折疊的tau蛋白,從而通過激活自噬-溶酶體途徑促進tau蛋白的清除進而抑制tau的聚集[48]。組蛋白脫乙酰基酶6(HDAC6)抑制劑治療可以改善rTg4510小鼠的學習記憶功能,降低tau蛋白的含量,其機制可能與增強微管的穩(wěn)定性、促進熱休克蛋白HSP90降解tau蛋白有關[49]。

      (4)抑制神經(jīng)炎癥:趨化因子fractalkine過表達可以抑制rTg4510小鼠腦內(nèi)tau蛋白病變,降低小膠質(zhì)細胞激活[50]。纖維素肽段連接的Fe2O3納米粒治療老年rTg4510小鼠可以抑制小膠質(zhì)細胞的激活,降低含有tau蛋白病變的神經(jīng)元數(shù)量,顯示了年齡依賴性的藥理作用[51]。

      (5)其他:利魯唑通過改善rTg4510小鼠腦內(nèi)谷氨酸的變化可以減輕tau蛋白的病理表現(xiàn),提高小鼠的認知功能[52]?;腔郊姿嵫苌顰K1通過抑制sirtuin 2可以減輕rTg4510小鼠神經(jīng)退行性病變,顯示神經(jīng)保護作用[53]。微管穩(wěn)定劑BMS-241027能夠改善rTg4510小鼠的微管異常、病理改變和認知功能障礙[54]。煙酰胺單核苷酸腺苷轉移酶2(NMNAT2)過表達能夠拮抗rTg4510小鼠腦中環(huán)磷腺苷效應元件結合蛋白(CREB蛋白)活性和nmnat2轉錄在tau病變中的下調(diào),顯示神經(jīng)保護作用[55]。

      4 其他P301L突變tau蛋白轉基因動物模型

      除了rTg4510轉基因小鼠外,還有多個轉基因小鼠過表達P301L突變tau蛋白。應用比較廣泛的有JNPL3轉基因小鼠,以鼠PrP為啟動子,在皮層、腦干和脊髓等部位過表達人源0N4R P301L-tau蛋白,表達量為內(nèi)源性tau蛋白的兩倍。JNPL3轉基因小鼠隨著年齡的增加,出現(xiàn)高度磷酸化tau蛋白的聚集,4.5月齡出現(xiàn)神經(jīng)原纖維纏結和內(nèi)涵體,進一步引起軸突的退行性病變和空泡樣髓鞘病變等,進而導致小鼠的認知功能障礙[56]。此外,老年JNPL3轉基因小鼠的脊髓中還出現(xiàn)進行性的髓鞘脫失等白質(zhì)病變,從而引起該模型小鼠的運動功能障礙[57]。

      還有以鼠Thy1.2為啟動子表達人P301L突變2N4R tau的轉基因小鼠pR5,在神經(jīng)系統(tǒng)過表達P301L-tau蛋白[58]。pR5轉基因小鼠顯示年齡相關的tau蛋白磷酸化和聚集,膠質(zhì)細胞激活和線粒體功能紊亂,在6月齡時出現(xiàn)神經(jīng)原纖維纏結,并顯示空間認知障礙[59]。轉基因小鼠Tau-4R-P301L以鼠Thy-1為啟動子,在皮層、海馬和脊髓表達4倍于內(nèi)源性tau的人源P301L-tau蛋白,引起tau相關的病變,并在老年轉基因小鼠中表現(xiàn)出認知功能障礙[60]。王艷艷等利用雄原核纖維注射法制備了以Thy-1為啟動子的P301L-tau轉基因鼠,該小鼠模型腦內(nèi)tau蛋白表達量增加,并出現(xiàn)空間認知障礙[61]。除此之外,P301L還與其他基因共同構建多轉基因動物模型,如3×Tg轉基因擬AD小鼠[62]等。

      目前已經(jīng)建立的P301L轉基因小鼠,根據(jù)啟動子不同,P301L突變tau的異構體不同而在發(fā)病進程及程度上有一定的差異。而rTg4510轉基因小鼠的主要優(yōu)勢在于,P301L-tau蛋白的過表達量較高,因此發(fā)病進程較快,并且tau相關病變程度明顯。另外大部分P301L轉基因小鼠會出現(xiàn)運動相關障礙,而rTg4510小鼠的運動能力未出現(xiàn)明顯的降低。

      5 結語

      目前已經(jīng)構建了多個P301L突變tau蛋白轉基因小鼠模型,并廣泛應用于AD及其他tau蛋白病的病理機制和藥物研究中。rTg4510轉基因小鼠作為在前腦和海馬中過表達P301L突變tau蛋白的轉基因小鼠,可以引起包括tau蛋白磷酸化等在內(nèi)的病理表現(xiàn)和認知功能障礙等行為異常。但是目前在應用過程中仍舊存在某些問題,例如rTg4510小鼠表達外源性tau蛋白的含量為內(nèi)源性tau的13倍,因此主要的病理表現(xiàn)來自于過量tau表達引起的相關病變。對于研究阿爾茨海默病等tau蛋白病來說,該模型并不能完全模擬人體內(nèi)復雜的疾病過程。此外,某一種疾病模型只是過表達tau蛋白的某一個異構體,而在人體tau蛋白是有多個異構體存在。盡管如此,P301L轉基因小鼠仍然在tau蛋白病的機制研究和藥物研究中發(fā)揮了重要的作用,對于AD等tau蛋白病的新藥研發(fā)具有重要意義。

      [1] Murray ME, Lowe VJ, Graff-Radford NR, et al. Clinicopathologic and11C-Pittsburgh compound B implications of Thal amyloid phase across the Alzheimer’s disease spectrum [J]. Brain, 2015, 138(Pt 5): 1370-1381.

      [2] Kontsekova E, Zilka N, Kovacech B, et al. First-in-man tau vaccine targeting structural determinants essential for pathological tau-tau interaction reduces tau oligomerisation and neurofibrillary degeneration in an Alzheimer’s disease model [J]. Alzheimers Res Ther, 2014, 6(4): 44.

      [3] Dai CL, Tung YC, Liu F, et al. Tau passive immunization inhibits not only tau but also Aβ pathology [J]. Alzheimers Res Ther, 2017, 9(1): 1.

      [4] Dujardin S, Colin M, Buée L. Invited review: Animal models of tauopathies and their implications for research/translation into the clinic [J]. Neuropathol Appl Neurobiol, 2015, 41(1): 59-80.

      [5] 王虹, 王蓬文. 阿爾茨海默病轉基因小鼠的特點和應用 [J]. 中國實驗動物學報, 2009, 17(6): 465-469.

      [6] Iqbal K, Alonso Adel C, Chen S, et al. Tau pathology in Alzheimer disease and other tauopathies [J]. Biochim Biophys Acta, 2005, 1739(2-3): 198-210.

      [7] Stenson PD, Mort M, Ball EV, et al. The Human Gene Mutation Database: building a comprehensive mutation repository for clinical and molecular genetics, diagnostic testing and personalized genomic medicine [J]. Hum Genet, 2014, 133(1): 1-9.

      [8] 米東華, 張本恕, 馬愛軍. 連鎖于17號染色體伴帕金森病的額顳葉癡呆 [J]. 國際遺傳學雜志, 2007, 30(1): 72-75.

      [9] van Swieten JC, Rosso SM, van Herpen E, et al. Phenotypic variation in frontotemporal dementia and parkinsonism linked to chromosome 17 [J]. Dement Geriatr Cogn Disord, 2004, 17(4): 261-264.

      [10] Mirra SS, Murrell JR, Gearing M, et al. Tau pathology in a family with dementia and a P301L mutation in tau [J]. J Neuropathol Exp Neurol, 1999, 58(4): 335-345.

      [11] Alonso Adel C, Mederlyova A, Novak M, et al. Promotion of hyperphosphorylation by frontotemporal dementia tau mutations [J]. J Biol Chem, 2004, 279(33): 34873-34881.

      [12] Santacruz K, Lewis J, Spires T, et al. Tau suppression in a neurodegenerative mouse model improves memory function [J]. Science, 2005, 309(5733): 476-481.

      [13] Bailey RM, Howard J, Knight J, et al. Effects of the C57BL/6 strain background on tauopathy progression in the rTg4510 mouse model [J]. Mol Neurodegener, 2014, 9: 8.

      [14] Ramsden M, Kotilinek L, Forster C, et al. Age-dependent neurofibrillary tangle formation, neuron loss, and memory impairment in a mouse model of human tauopathy (P301L) [J]. J Neurosci, 2005, 25(46): 10637-10647.

      [15] Berger Z, Roder H, Hanna A, et al. Accumulation of pathological tau species and memory loss in a conditional model of tauopathy [J]. J Neurosci, 2007, 27(14): 3650-3662.

      [16] Sahara N, DeTure M, Ren Y, et al. Characteristics of TBS-extractable hyperphosphorylated tau species: Aggregation intermediates in rTg4510 mouse brain [J]. J Alzheimers Dis, 2013, 33(1): 249-263.

      [17] Spires-Jones TL, de Calignon A, Matsui T, et al.Invivoimaging reveals dissociation between caspase activation and acute neuronal death in tangle-bearing neurons [J]. J Neurosci, 2008, 28(4): 862-867.

      [18] Ramalho RM, Viana RJ, Castro RE, et al. Apoptosis in transgenic mice expressing the P301L mutated form of human tau [J]. Mol Med, 2008, 14(5-6): 309-317.

      [19] Ren Y, Lin WL, Sanchez L, et al. Endogenous tau aggregates in oligodendrocytes of rTg4510 mice induced by human P301L tau [J]. J Alzheimers Dis, 2014, 38(3): 589-600.

      [20] Spires TL, Orne JD, SantaCruz K, et al. Region-specific dissociation of neuronal loss and neurofibrillary pathology in a mouse model of tauopathy [J]. Am J Pathol, 2006, 168(5): 1598-1607.

      [21] Lee DC, Rizer J, Selenica ML, et al. LPS-induced inflammation exacerbates phospho-tau pathology in rTg4510 mice [J]. J Neuroinflam, 2010, 7: 56.

      [22] Wes PD, Easton A, Corradi J, et al. Tau overexpression impacts a neuroinflammation gene expression network perturbed in Alzheimer’s disease [J]. PLoS One, 2014, 9(8): e106050.

      [23] Kopeikina KJ, Wegmann S, Pitstick R, et al. Tau causes synapse loss without disrupting calcium homeostasis in the rTg4510 model of tauopathy [J]. PLoS One, 2013, 8(11): e80834.

      [24] Kopeikina KJ, Carlson GA, Pitstick R, et al. Tau accumulation causes mitochondrial distribution deficits in neurons in a mouse model of tauopathy and in human Alzheimer’s disease brain [J]. Am J Pathol, 2011, 179(4): 2071-2082.

      [25] Abisambra JF, Jinwal UK, Blair LJ, et al. Tau accumulation activates the unfolded protein response by impairing endoplasmic reticulum-associated degradation [J]. J Neurosci, 2013, 33(22): 9498-9507.

      [26] Majid T, Ali YO, Venkitaramani DV, et al.Invivoaxonal transport deficits in a mouse model of fronto-temporal dementia [J]. Neuroimage Clin, 2014, 4: 711-717.

      [27] Kopeikina KJ, Polydoro M, Tai HC, et al. Synaptic alterations in the rTg4510 mouse model of tauopathy [J]. J Comp Neurol, 2013, 521(6): 1334-1353.

      [28] Crimins JL, Rocher AB, Luebke JI. Electrophysiological changes precede morphological changes to frontal cortical pyramidal neurons in the rTg4510 mouse model of progressive tauopathy [J]. Acta Neuropathol, 2012, 124(6): 777-795.

      [29] Dalby NO, Volbracht C, Helboe L, et al. Altered function of hippocampal CA1 pyramidal neurons in the rTg4510 mouse model of tauopathy [J]. J Alzheimers Dis, 2014, 40(2): 429-442.

      [30] Ludvigson AE, Luebke JI, Lewis J, et al. Structural abnormalities in the cortex of the rTg4510 mouse model of tauopathy: a light and electron microscopy study [J]. Brain Struct Funct, 2011, 216(1): 31-42.

      [31] Menkes-Caspi N, Yamin HG, Kellner V, et al. Pathological tau disrupts ongoing network activity [J]. Neuron, 2015, 85(5): 959-966.

      [32] Holmes HE, Colgan N, Ismail O, et al. Imaging the accumulation and suppression of tau pathology using multiparametric MRI [J]. Neurobiol Aging, 2016, 39: 184-194.

      [33] Sahara N, Perez PD, Lin WL, et al. Age-related decline in white matter integrity in a mouse model of tauopathy: aninvivodiffusion tensor magnetic resonance imaging study [J]. Neurobiol Aging, 2014, 35(6): 1364-1374.

      [34] Booth CA, Witton J, Nowacki J, et al. Altered intrinsic pyramidal neuron properties and pathway-specific synaptic dysfunction underlie aberrant hippocampal network function in a mouse model of tauopathy [J]. J Neurosci, 2016, 36(2): 350-363.

      [35] Hunsberger HC, Rudy CC, Batten SR, et al. P301L tau expression affects glutamate release and clearance in the hippocampal trisynaptic pathway [J]. J Neurochem, 2015, 132(2): 169-182.

      [36] Cook C, Dunmore JH, Murray ME, et al. Severe amygdala dysfunction in a MAPT transgenic mouse model of frontotemporal dementia [J]. Neurobiol Aging, 2014, 35(7): 1769-1777.

      [37] Yue M, Hanna A, Wilson J, et al. Sex difference in pathology and memory decline in rTg4510 mouse model of tauopathy [J]. Neurobiol Aging, 2011, 32(4): 590-603.

      [38] Berger Z, Roder H, Hanna A, et al. Accumulation of pathological tau species and memory loss in a conditional model of tauopathy [J]. J Neurosci, 2007, 27(14): 3650-3662.

      [39] Kuchibhotla KV, Wegmann S, Kopeikina KJ, et al. Neurofibrillary tangle-bearing neurons are functionally integrated in cortical circuitsinvivo[J]. Proc Natl Acad Sci U S A, 2014, 111(1): 510-514.

      [40] Selenica ML, Brownlow M, Jimenez JP, et al. Amyloid oligomers exacerbate tau pathology in a mouse model of tauopathy [J]. Neurodegener Dis, 2013, 11(4): 165-181.

      [41] Lin WL, Dickson DW, Sahara N. Immunoelectron microscopic and biochemical studies of caspase-cleaved tau in a mouse model of tauopathy [J]. J Neuropathol Exp Neurol, 2011, 70(9): 779-787.

      [42] Selenica ML, Davtyan H, Housley SB, et al. Epitope analysis following active immunization with tau proteins reveals immunogens implicated in tau pathogenesis [J]. J Neuroinflam, 2014, 11: 152.

      [43] Schroeder SK, Joly-Amado A, Gordon MN, et al. Tau-directed immunotherapy: a promising strategy for treating Alzheimer’s disease and other tauopathies [J]. J Neuroimmune Pharmacol, 2016, 11(1): 9-25.

      [44] Sankaranarayanan S, Barten DM, Vana L, et al. Passive immunization with phospho-tau antibodies reduces tau pathology and functional deficits in two distinct mouse tauopathy models [J]. PLoS One, 2015, 10(5): e0125614.

      [45] Radford H, Moreno JA, Verity N, et al. PERK inhibition prevents tau-mediated neurodegeneration in a mouse model of frontotemporal dementia [J]. Acta Neuropathol, 2015, 130(5): 633-642.

      [46] Graham DL, Gray AJ, Joyce JA, et al. Increased O-GlcNAcylation reduces pathological tau without affecting its normal phosphorylation in a mouse model of tauopathy [J]. Neuropharmacology, 2014, 79: 307-313.

      [47] Hastings NB, Wang X, Song L, et al. Inhibition of O-GlcNAcase leads to elevation of O-GlcNAc tau and reduction of tauopathy and cerebrospinal fluid tau in rTg4510 mice [J]. Mol Neurodegener, 2017, 12(1): 39.

      [48] Polito VA, Li H, Martini-Stoica H, et al. Selective clearance of aberrant tau proteins and rescue of neurotoxicity by transcription factor EB [J]. EMBO Mol Med, 2014, 6(9): 1142-1160.

      [49] Selenica ML, Benner L, Housley SB, et al. Histone deacetylase 6 inhibition improves memory and reduces total tau levels in a mouse model of tau deposition [J]. Alzheimers Res Ther, 2014, 6(1): 12.

      [50] Nash KR, Lee DC, Hunt JB Jr, et al. Fractalkine overexpression suppresses tau pathology in a mouse model of tauopathy [J]. Neurobiol Aging, 2013, 34(6): 1540-1548.

      [51] Glat M, Skaat H, Menkes-Caspi N, et al. Age-dependent effects of microglial inhibitioninvivoon Alzheimer’s disease neuropathology using bioactive-conjugated iron oxide nanoparticles [J]. J Nanobiotechnology, 2013, 11: 32.

      [52] Hunsberger HC, Weitzner DS, Rudy CC, et al. Riluzole rescues glutamate alterations, cognitive deficits, and tau pathology associated with P301L tau expression [J]. J Neurochem, 2015, 135(2): 381-394.

      [53] Spires-Jones TL, Fox LM, Rozkalne A, et al. Inhibition of sirtuin 2 with sulfobenzoic acid derivative AK1 is non-toxic and potentially neuroprotective in a mouse model of frontotemporal dementia [J]. Front Pharmacol, 2012, 3: 42.

      [54] Barten DM, Fanara P, Andorfer C, et al. Hyperdynamic microtubules, cognitive deficits, and pathology are improved in tau transgenic mice with low doses of the microtubule-stabilizing agent BMS-241027 [J]. J Neurosci, 2012, 32(21): 7137-7145.

      [55] Ljungberg MC, Ali YO, Zhu J, et al. CREB-activity andnmnat2 transcription are down-regulated prior to neurodegeneration, while NMNAT2 over-expression is neuroprotective, in a mouse model of human tauopathy [J]. Hum Mol Genet, 2012, 21(2): 251-267.

      [56] Zehr C, Lewis J, McGowan E, et al. Apoptosis in oligodendrocytes is associated with axonal degeneration in P301L tau mice [J]. Neurobiol Dis, 2004, 15(3): 553-562.

      [57] Lin WL, Zehr C, Lewis J, et al. Progressive white matter pathology in the spinal cord of transgenic mice expressing mutant (P301L) human tau [J]. J Neurocytol, 2005, 34(6): 397-410.

      [58] G?tz J, Chen F, Barmettler R, et al. Tau filament formation in transgenic mice expressing P301L tau [J]. J Biol Chem, 2001, 276(1): 529-534.

      [59] David DC, Hauptmann S, Scherping I, et al. Proteomic and functional analyses reveal a mitochondrial dysfunction in P301L tau transgenic mice [J]. J Biol Chem, 2005, 280(25): 23802-23814.

      [60] Terwel D, Lasrado R, Snauwaert J, et al. Changed conformation of mutant Tau-P301L underlies the moribund tauopathy, absent in progressive, nonlethal axonopathy of Tau-4R/2N transgenic mice [J]. J Biol Chem, 2005, 280(5): 3963-3973.

      [61] 王艷艷, 陳汝筑, 朱小南, 等. 含P301L突變的Tau轉基因小鼠純合子品系的建立及鑒定 [J]. 中國應用生理學雜志, 2012, 28(3): 221-224.

      [62] 祝艷秋, 張?zhí)m. 基于3×Tg-擬阿爾茨海默病小鼠模型的藥理學研究進展 [J]. 中國比較醫(yī)學雜志, 2015, 25(2): 61-66.

      猜你喜歡
      微管動物模型月齡
      首張人類細胞微管形成高清圖繪出
      肥胖中醫(yī)證候動物模型研究進展
      簡單和可控的NiO/ZnO孔微管的制備及對痕量H2S氣體的增強傳感
      胃癌前病變動物模型復制實驗進展
      潰瘍性結腸炎動物模型研究進展
      湖州33月齡男童不慎9樓墜落上海九院對接“空中120”成功救治
      科學生活(2019年7期)2020-01-01 08:28:02
      提高育肥豬出欄率合理的飼養(yǎng)密度
      不同月齡荷斯坦牛產(chǎn)奶量的研究
      胸腔微管引流并注入尿激酶治療結核性胸膜炎
      糖尿病性視網(wǎng)膜病變動物模型研究進展
      赤城县| 永登县| 休宁县| 洛宁县| 紫金县| 清水县| 惠水县| 澳门| 遵义县| 宁波市| 英山县| 连州市| 民权县| 辰溪县| 屯昌县| 平远县| 南阳市| 梁山县| 凤台县| 樟树市| 朝阳市| 新营市| 宝兴县| 昌邑市| 合肥市| 卓资县| 碌曲县| 平乐县| 泰兴市| 二手房| 阳江市| 富蕴县| 宜州市| 凉城县| 株洲县| 新营市| 克山县| 永川市| 巴彦淖尔市| 阿图什市| 茌平县|