李霄陽, 陳小玲, 何后軍, 李永清
(1.江西農(nóng)業(yè)大學(xué)動(dòng)物科學(xué)技術(shù)學(xué)院 ,江西 南昌 330045 ; 2.北京市農(nóng)林科學(xué)院畜牧獸醫(yī)研究所 畜禽疫病防控技術(shù)北京市重點(diǎn)實(shí)驗(yàn)室 , 北京 海淀 100097)
牛出血性敗血癥,簡(jiǎn)稱牛出敗(HSC),是由多殺性巴氏桿菌(Pm)引起的一種急性、高發(fā)病率、高致死性的敗血性疾病。臨床癥狀分為敗血型、水腫型和肺炎型。本病一般呈散發(fā)或地方流行性,病死率可達(dá)80%以上,OIE將其定為二類傳染病。2006年以來該病對(duì)我國(guó)養(yǎng)牛業(yè)的危害極其嚴(yán)重,至2015年,該病在我國(guó)至少10個(gè)省區(qū)發(fā)生與流行。
根據(jù)通用的Carter分型系統(tǒng),Pm可分為A、B、D、E和F 5個(gè)莢膜血清群和16個(gè)脂多糖血清型(1-16)[1-2]。引起國(guó)內(nèi)牛出敗的Pm過去為B群或B:2,5型[3],2008年馬文戈等在國(guó)內(nèi)首次報(bào)道分離出牛源莢膜A群Pm,此后莢膜A群分離株逐漸增多[4-8]。Townsend等[9]建立了Pm多重PCR莢膜血清群分群方法,該方法在國(guó)內(nèi)外已取代了常規(guī)血清學(xué)分群方法[4-8,10]。2016年末本實(shí)驗(yàn)室收到北京和山東兩個(gè)奶牛場(chǎng)送檢的各1頭病死牛組織,懷疑死于牛出敗。本文將實(shí)驗(yàn)室細(xì)菌分離鑒定結(jié)果報(bào)告如下。
1.1 病料及所用菌株 病料采自北京和山東某奶牛場(chǎng)的疑似HSC病死牛肺、心、肝組織。3株多殺性巴氏桿菌參考株,購自中國(guó)獸醫(yī)藥品監(jiān)察所,菌株編號(hào):(1)1672-C46-14,血清型A:1;(2)448-C45-11,血清型B2,5;(3)1668-C45-9,血清型B2,5;以下簡(jiǎn)稱為A1672、B448和 B1668。表皮葡萄球菌為本實(shí)驗(yàn)室保存。
1.2 培養(yǎng)基和試劑 5%血清TSA、5%血清TSB、麥康凱瓊脂培養(yǎng)基為本實(shí)驗(yàn)室制備;革蘭染液、瑞氏染液,購自珠海貝索生物技術(shù)有限公司;2× PCR PremixTaqTM,購自寶生物工程(大連)有限公司;其他試劑為國(guó)產(chǎn)分析純。PCR引物合成由中美泰和生物技術(shù)(北京)有限公司完成。
1.3 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物 體重18 g~22 g SPF級(jí)BALB/c小鼠,購自北京大學(xué)醫(yī)學(xué)部。
1.4 病原分離培養(yǎng) 將兩頭病牛組織研磨后用無菌PBS配成1∶10懸液,腹腔注射小鼠各2只,0.2 mL/只。小鼠死亡后,無菌采集其肺、心、肝臟接種血清TSA和麥康凱瓊脂平板,并抹片染色鏡檢。細(xì)菌37 ℃培養(yǎng)20 h后觀察菌落生長(zhǎng)狀況及形態(tài)。挑選在血清TSA生長(zhǎng)而麥康凱瓊脂平板上不生長(zhǎng)的單個(gè)可疑菌落,轉(zhuǎn)接血清TSA或TSB,37 ℃培養(yǎng)過夜后,甘油保種并涂片染色鏡檢。
1.5 分離株致病性試驗(yàn) 將分離到的病原菌接種于血清TSB培養(yǎng)基3 mL,37 ℃振蕩培養(yǎng)18 h,其OD600值在1.0左右(約109CFU/mL),兩株細(xì)菌Pm1、Pm2各腹腔接種2只小鼠,另設(shè)2只PBS對(duì)照。逐日觀察發(fā)病死亡情況。
1.6 PCR鑒定細(xì)菌的種、莢膜群和脂多糖血清型 合成Townsend等設(shè)計(jì)的Pm種特異性引物、莢膜A群和B群特異性引物[9]做單PCR和雙重PCR對(duì)分離株進(jìn)行種和血清群鑒定。合成Harper設(shè)計(jì)的脂多糖基因1-3型引物[2]做三重PCR株鑒定LPS基因型。PCR引物序列與相關(guān)信息見表1。三組PCR均用25μL反應(yīng)體系,含TaKaRa 2x PCR premix 12.5 μL,10 pmol/μL引物各1μL,煮沸法粗制DNA模板各2 μL。PCR設(shè)已知莢膜A群和B群對(duì)照和陰性對(duì)照。PCR程序參考TaKaRa 2x PCR premix試劑說明書7 μL PCR產(chǎn)物經(jīng)1.5% 瓊脂糖凝膠120V電泳25 min后在UV下觀察并拍照。
1.7 透明脂酸抑制試驗(yàn)鑒定莢膜A群Pm 莢膜A群Pm遇到葡萄球菌會(huì)使靠近葡萄球菌的Pm菌落變小,即A群Pm莢膜所含的透明脂酸有被葡萄球菌產(chǎn)生的透明脂酸酶降解的特性[11]。 將被檢菌株在TSA平板上間隔2-3 mm平行劃線,然后用表皮葡萄球菌與之交叉劃線,過夜培養(yǎng)后觀察。
2.1 涂片鏡檢 感染牛病料后死亡小鼠的肺、肝及心臟組織涂片,均可檢出革蘭陰性短小桿菌,瑞氏染色兩級(jí)著色明顯。分離菌菌落涂片鏡檢呈現(xiàn)革蘭陰性兩端鈍圓的短小球桿菌并有莢膜,瑞氏染色呈兩極著色(見中插彩版圖1)。
2.2 分離菌培養(yǎng)特征和生化鑒定 小鼠肺、肝和心臟組織在血清TSA及麥康凱平板培養(yǎng)18 h~24 h后,血清TSA上生長(zhǎng)出黏液狀、半透明、光滑圓潤(rùn)的菌落,斜光源40倍解剖鏡觀察菌落呈半透明并有藍(lán)綠光,麥康凱瓊脂平板上不生長(zhǎng)。生化試驗(yàn)鑒定為多殺性巴氏桿菌。
2.3 分離株回歸小鼠的致病力 Pm1和Pm2分離株培養(yǎng)菌液腹腔接種小鼠后,2組小鼠于6~24 h內(nèi)死亡,PBS對(duì)照組無不良反應(yīng)。
2.4 PCR鑒定Pm種、莢膜分群和脂多糖基因型 結(jié)果見圖2。三組PCR中陰性對(duì)照都無擴(kuò)增。分離株P(guān)m1、Pm2和3個(gè)參考株都擴(kuò)增出約0.5 kb(460 bp)的Pm種特異性條帶;莢膜分群PCR中A1672參考株與A、B群引物都不反應(yīng),Pm1和Pm2 擴(kuò)增出約1 kb(1 044 bp)的莢膜A群條帶,B448和B1668擴(kuò)增出約0.8 kb(760 bp)的莢膜B群條帶。脂多糖基因型鑒定PCR顯示A1672不產(chǎn)生任何條帶,Pm1和Pm2擴(kuò)增出約0.5 kb(474 bp)的脂多糖3型條帶,B448和B1668擴(kuò)增出約0.8 kb(810 bp)的脂多糖2型條帶。
圖2 Pm種、莢膜分群和脂多糖基因型PCP鑒定
A:Pm種特異性PCR; B:莢膜分群PCR; C:脂多糖分型PCR。M:DNA Marker; 1:陰性對(duì)照; 2:A1672; 3:Pm1; 4:Pm2; 5:B448; 6:B1668
2.5 莢膜A群透明脂酸抑制試驗(yàn) 分離株P(guān)m1和Pm2在血清TSA培養(yǎng)基上靠近表皮葡萄球菌的地方菌落變小(見中插彩版圖3),A1672也顯示了陽性反應(yīng),但不如Pm1和Pm2明顯;B448則未被抑制,與預(yù)期相符。
這是本課題組初次從牛病料分離出Pm,過程并不順利。拿到病料后先接種培養(yǎng)基、做組織涂片染色鏡檢,沒有發(fā)現(xiàn)典型兩極染色的小桿菌。次日平板上長(zhǎng)出很多菌落,挑取各種代表菌落做Pm種特異性PCR和溶血性曼氏桿菌PCR,無陽性;做16S rRNA 測(cè)序,測(cè)出有與波氏桿菌屬、創(chuàng)傷球菌屬等同源性99%~100%的序列,查文獻(xiàn)似與本病無關(guān)。
然后取出冷凍的原始病料研磨提取DNA,再做Pm種特異性PCR,溶血性曼氏桿菌PCR和牛支原體、絲狀支原體PCR,仍無陽性條帶。再次找出保存的原始病料,接種小鼠。小鼠48 h內(nèi)死亡,從小鼠組織分離到比較純的菌落。經(jīng)過染色鏡檢,Pm種PCR,16S rRNA測(cè)序,鑒定出Pm。用分離菌回歸小鼠顯示出強(qiáng)致病力。這次的經(jīng)歷驗(yàn)證了教科書和OIE文獻(xiàn)所述,即慢性病例或腐敗材料不易發(fā)現(xiàn)典型菌體和分離出巴氏桿菌,而小鼠對(duì)外來的污染微生物能起到屏蔽作用,Pm使小鼠很快死亡,有利于獲得病菌的純培養(yǎng)。
在用PCR對(duì)分離株和參考株做莢膜分群時(shí)發(fā)現(xiàn)A群參考株不反應(yīng),換用改進(jìn)的引物[7]和另1對(duì)擴(kuò)增564 bp的A群特異性引物[1]也不反應(yīng)。又對(duì)該菌株進(jìn)行了D、E、F群的單PCR檢驗(yàn),同時(shí)以Pm種特異性PCR為對(duì)照。結(jié)果該菌株只擴(kuò)增出460 bp 的Pm種特異性片段。Arumugam等研究發(fā)現(xiàn),22/114株P(guān)m (19%)不能用Townsend的mPCR鑒定出血清群, 在此之前還有至少4篇文獻(xiàn)給出了同樣評(píng)價(jià),即該mPCR產(chǎn)生的不可分群的菌株比例為2%~9%[10-11]。
為探究A1672 參考株P(guān)CR分群不成功的原因,又做了鑒定莢膜A群的透明脂酸抑制試驗(yàn)[11],分離菌Pm1和Pm2試驗(yàn)結(jié)果為陽性,而A1672檢驗(yàn)2次顯示弱陽性,另2次與陰性對(duì)照B448難以區(qū)別。我們還制備了3個(gè)參考株的兔高免血清,用瓊擴(kuò)試驗(yàn)進(jìn)行檢驗(yàn)[1],結(jié)果A1672抗原與對(duì)應(yīng)血清不反應(yīng),其對(duì)應(yīng)血清與2個(gè)分離株抗原也不反應(yīng);2個(gè)B群抗原與對(duì)應(yīng)B群血清反應(yīng)良好,與2個(gè)分離株抗原不反應(yīng)。是否A群參考株在人工傳代過程中丟失了莢膜[10],或者其莢膜基因出現(xiàn)了缺失或變異,影響了它的免疫原性和分子技術(shù)對(duì)它的血清群鑒定?我們又做了Pm脂多糖分型PCR[2],檢驗(yàn)用LPS基因可否將其分型。PCR結(jié)果(中插彩版圖3)顯示,2個(gè)B群參考株與L2引物呈陽性反應(yīng),與已知其為2,5血清型一致;分離株P(guān)m1和Pm2與L3引物呈陽性反應(yīng),可認(rèn)定為脂多糖基因3型,它代表血清型3,4型。已知A1672是血清1型,而其LPS-PCR結(jié)果與3對(duì)引物都未擴(kuò)增。脂多糖是Pm的優(yōu)勢(shì)免疫原,對(duì)滅活菌苗的同源保護(hù)至關(guān)重要[2],這也是國(guó)內(nèi)首次用Pm脂多糖PCR鑒定了與國(guó)內(nèi)和亞洲牛出敗流行脂多糖血清型相關(guān)的幾個(gè)基因型。
總之,本試驗(yàn)研究為2008年以來國(guó)內(nèi)日漸增多的牛源Pm分離株添加了一點(diǎn)新數(shù)據(jù)。將不新鮮的死牛病料先接種小鼠可極大地提高分離Pm的成功率并節(jié)省時(shí)間。Pm莢膜分群PCR和脂多糖PCR能快速鑒定出分離株的莢膜血清群和脂多糖基因型。A1672參考株不能分群分型的問題有待進(jìn)一步研究。
[1] OIE Haemorrhagic septicaemia, Chapter 2.4.11[M]. Terrestrial Manual.pp.732-745.Office International Des Epizooties (OIE), Paris France,2012.
[2] Harper M, Marietta J, Turni Cetal. Development of a rapid multiplex PCR assay to genotype Pasteurella multocida strains by use of the lipopolysaccharide outer core biosynthesis locus [J]. J Clin Microbiol,2015,53(2):477-485.
[3] 吳范庚. 我國(guó)多殺性巴氏桿菌血清學(xué)鑒定及交互免疫試驗(yàn)[J].中國(guó)獸醫(yī)雜志,1997,23(8):14-15.
[4] 馬文戈,于力.牛源莢膜血清 A型多殺性巴氏桿菌的分離鑒定[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2008,30(10):747-750、754.
[5] 馬曉菁 致犢牛肺炎多殺性巴氏桿菌的分離鑒定及部分生物學(xué)特性研究[D], 新疆:石河子大學(xué), 2010.
[6] 馬文戈,姜志剛,于力.牛莢膜血清A型巴氏桿菌病的分子流行病學(xué)調(diào)查[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2010,32(5):360-364.
[7] 楊寶鳳,李能章,鄒靈, 等.6株牛源A型多殺性巴氏桿菌的分離與鑒定[J].中國(guó)預(yù)防獸醫(yī)學(xué)報(bào),2014,36(6):487-489.
[8] 賴金倫,寇明明,劉玉輝,等.犢牛支原體肺炎繼發(fā)牛A型多殺性巴氏桿菌感染的診治[J].中國(guó)畜牧獸醫(yī),2015,42(11):3 065-3 072.
[9] Townsend K M, Boyce J D, Chung J Y,etal. Genetic organization of Pasteurella multocida cap Loci and development of a multiplex capsular PCR typing system[J]. J Clin Microbiol,2001,39:924-929.
[10] Dziva F, Muhairwa A P, Bisgaard M,etal.Diagnostic and typing options for investigating diseases associated with Pasteurella multocida[J].Vet Microbiol,2008,128:1-22.
[11] Arumugam N D,Ajam N,Blackall P J,etal. Capsular serotyping of Pasteurella multocida from various animal hosts-a comparison of phenotypic and genotypic methods[J]. Trop Biomed,2011, 28(1):55-63.