李丹丹 王 辛 馬 茜 蔣 立 王愛紅
(南京醫(yī)科大學康達學院,江蘇 連云港 222002)
特制牛肉湯對腦缺血大鼠外周血白細胞介素-1β和干擾素-γ的影響
李丹丹1王 辛1馬 茜1蔣 立1王愛紅1
(南京醫(yī)科大學康達學院,江蘇 連云港 222002)
目的研究特制牛肉湯對腦缺血大鼠外周血白細胞介素(IL)-1β及干擾素(IFN)-γ的影響。方法將96只雄性SD大鼠按隨機數(shù)字表分為假手術組、模型組、特制牛肉湯組和肌肽組,每組24只。模型組、特制牛肉湯組和肌肽組采用線栓法制備永久性大腦中動脈閉塞模型(pMCAO),于術后清醒2 h內首次灌胃給藥,特制牛肉湯組予600 mg·kg-1·d-1特制牛肉湯,肌肽組予600 mg·kg-1·d-1肌肽水溶液。假手術組與模型組予等量無菌生理鹽水,每日2次,各組大鼠分別于造模后1 d,3 d和7 d處死,各組各時點8只大鼠。采用Longa評分法進行神經功能缺損評分,2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)染色法測定腦梗死體積分數(shù)、酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)測外周血中IL-1β、IFN-γ表達。結果腦缺血后,各時點模型組大鼠神經功能評分顯著上升;與模型組相比,予特制牛肉湯7 d后,腦缺血大鼠神經功能評分顯著下降(Plt;0.05)。腦缺血后,模型組、特制牛肉湯組和肌肽組均可見大腦中動脈供血區(qū)梗死灶。與模型組相比,予特制牛肉湯和肌肽1 d和3 d后,腦梗死體積分數(shù)有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05);予特制牛肉湯7 d后,腦梗死體積分數(shù)顯著降低(Plt;0.01)。腦缺血后,各時點模型組大鼠外周血IL-1β水平顯著上升(Plt;0.05),與模型組相比,予特制牛肉湯7 d后,IL-1β水平明顯下降(Plt;0.05);予肌肽7 d后,IL-1β有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05)。腦缺血后3 d和7 d,模型組大鼠外周血IFN-γ水平顯著上升(Plt;0.05),與模型組相比,予特制牛肉湯和肌肽7 d后,IFN-γ水平明顯下降(Plt;0.01)。結論特制牛肉湯通過下調促炎細胞因子IL-1β、IFN-γ表達,從而減輕腦缺血大鼠炎癥反應,改善神經功能缺損癥狀,對腦起保護作用。
特制牛肉湯;腦缺血;白細胞介素-1β;干擾素-γ
炎性損傷在腦缺血后繼發(fā)性損傷中發(fā)揮重要作用,白細胞介素(IL)-1β與干擾素(IFN)-γ作為主要促炎介質,放大復雜信號級聯(lián)效應,誘導其他傷害性分子〔誘導型一氧化氮合酶(iNOS)、IL-6等〕釋放,加重腦缺血損傷〔1,2〕。本課題組前期依據(jù)“藥食同源”理念制備的特制牛肉湯經游離氨基酸檢測,肌肽含量豐富。既往研究表明,肌肽可以通過抑制腦缺血后炎癥反應,調節(jié)機體免疫功能,對腦起保護作用〔3〕。故本實驗設置肌肽水溶液為陽性對照藥,觀察特制牛肉湯和肌肽對腦缺血后大鼠促炎性細胞因子IL-1β、IFN-γ表達和腦梗死體積的影響。
1.1實驗動物 健康雄性SD大鼠96只,SPF級,體質量(300±20)g,購自昭衍(蘇州)新藥研究中心有限公司,合格證號:201500397,許可證號:SCXK(蘇)2013-0003。飼養(yǎng)溫度(22±3)℃,光照∶黑暗=12 h∶12 h,實驗前適應性飼養(yǎng)7 d,自由進食、飲水,造模前12 h禁食,不禁水。
1.2主要試劑與儀器 肌肽(Sigma公司,美國);大鼠IL-1β血清檢測ELISA試劑盒(建成生物公司,南京);大鼠IFN-γ血清檢測ELISA試劑盒(Raybiotech公司,美國);線栓(沙東生物技術有限公司,北京);腦切片模具(瑞沃德,深圳);RE-52A旋轉蒸發(fā)儀(亞榮儀器有限公司,上海);VICTORTMX3多標記檢測系統(tǒng)(PerkinElmer公司,美國)。
1.3實驗方法
1.3.1熬制特制牛肉湯 參照前期方法熬制特制牛肉湯〔4〕。購精選牛腿肉,去油脂和筋膜后使用電子天平準確稱重1 kg,切成2 cm3方塊狀碎肉,使用電動絞肉機絞成肉糜狀,放入鍋中慢燉12 h。靜置片刻去浮油,過濾取上清,用旋轉蒸發(fā)儀濃縮牛肉湯原液約至60 ml,經氨基酸分析儀營養(yǎng)成分檢測,特制牛肉湯中肌肽含量約為36.34 mg/ml。
1.3.2動物分組及給藥 按隨機數(shù)字表將大鼠分為假手術組,模型組,特制牛肉湯組和肌肽組,每組再分為1 d,3 d和7 d三個亞組,每個亞組各8只。特制牛肉湯劑量的確定以湯中肌肽含量為標準,故特制牛肉湯組給予600 mg·kg-1·d-1特制牛肉湯灌胃,肌肽組給予600 mg·kg-1·d-1肌肽水溶液灌胃,假手術組和模型組給予等量無菌生理鹽水灌胃,每組的三個亞組干預時間為1 d、3 d和7 d,每天早晚2次。
1.3.3腦缺血模型制備 參照Longa等〔5〕報道的方法,采用線栓法復制大鼠右側永久性大腦中動脈閉塞(pMCAO)模型:10%水合氯醛(3.5 ml/kg)麻醉大鼠,頸部備皮、消毒,取頸正中切口,暴露右側頸總動脈(CCA)、頸外動脈(ECA)、頸內動脈(ICA),結扎CCA和ECA的近端,用動脈夾夾閉ICA后在CCA游離段上剪一小口,并在小口下系一松結,將制備好的尼龍線栓經CCA分支處順I(yè)CA走向緩慢推進入顱,線栓標記處(18 mm)進入CCA與ICA分叉處,系緊小口下松結。模型成功標志:大鼠蘇醒后提尾懸拉出現(xiàn)左上肢蜷縮屈曲,爬行時向左側轉圈或跌倒,若符合上述癥狀但有蛛網膜下腔出血及術后死亡者,予以剔除并用同一批次大鼠隨機補足。假手術組不插入線栓,僅切開皮膚分離右側CCA、ECA和ICA后縫合。
1.3.4神經行為學評分 參照Bederson五級四分法在相應時間點分別進行評分。0分:無神經功能缺損癥狀;1分:輕微神經功能缺損,提尾倒懸時不能完全伸展左側前爪;2分:中度神經功能缺損,爬行時向左側轉圈;3分:重度神經功能缺損:身體向左側傾倒;4分:不能自發(fā)爬行,意識水平下降。
1.3.5腦切片TTC染色 術后相應時間點,用10%水合氯醛(3.5 ml/kg)腹腔注射麻醉大鼠,斷頭取腦,置于-20℃冰箱速凍20 min,去嗅球和低位腦干,自額極后間隔2 mm連續(xù)取冠狀切片5片,并將切片放至2% 2,3,5-氯化三苯基四氮唑(TTC)溶液中,置于37℃恒溫培養(yǎng)箱,避光孵育30 min,為保證染色均勻,每隔15 min翻轉一次。待孵育結束后,將腦切片放入4%多聚甲醛溶液固定24 h,拍照,紅色區(qū)域為正常腦組織,蒼白區(qū)域為梗死區(qū)。使用Image Pro-Plus6.0(IPP)圖像處理軟件,計算梗死灶體積和腦片對側正常半球的體積,腦梗死體積分數(shù)(%)=患側梗死體積/對側半球體積×100%。
1.3.6血清IL-1β和IFN-γ檢測 術后1 d、3 d和7 d,各組大鼠用10%水合氯醛(3.5 ml/kg)腹腔注射麻醉后,經心臟采血,留取血液標本,用酶聯(lián)免疫吸附法(ELISA)檢測血清IL-1β、IFN-γ含量,具體步驟按試劑盒說明書操作。
1.4統(tǒng)計學分析 采用SPSS16.0軟件行單因素方差分析、LSD法、DunnettT3法、Kruskal-WallisH檢驗及Wilcoxon秩和檢驗。
2.1特制牛肉湯對腦缺血大鼠神經功能缺損評分的影響 各時點假手術組均未出現(xiàn)神經功能缺損癥狀,神經功能評分均為0分。與假手術組比較,腦缺血后1 d、3 d和7 d,模型組均表現(xiàn)出明顯的肢體癱瘓。與模型組相比,予肌肽或特制牛肉湯1 d和3 d未改善神經功能缺損癥狀(Pgt;0.05),予肌肽7 d后,神經功能評分有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05);予特制牛肉湯7 d后,神經功能評分顯著下降(Plt;0.05),見表1。
2.2特制牛肉湯對腦缺血大鼠腦梗死體積分數(shù)的影響 假手術組未見白色梗死灶,模型組、特制牛肉湯組和肌肽組右側大腦中動脈供血區(qū)域均可見明顯梗死灶,見圖1。表2可見,與模型組相比,予特制牛肉湯和肌肽1 d及3 d后,腦梗死體積分數(shù)有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05);予特制牛肉湯7 d后,腦梗死體積分數(shù)顯著下降(Plt;0.01),予肌肽7d后,腦梗死體積分數(shù)呈下降趨勢,但無明顯統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05)。
表1 各組各時點神經功能缺損評分比較〔M(Q25,Q75),n=8〕
與模型組比較:1)Plt;0.05
圖1 各組術后7 d腦組織大體觀察(TTC染色)
組別缺血后1d缺血后3d缺血后7d假手術組000模型組35.70±20.6649.43±16.7248.20±20.59特制牛肉湯組29.79±22.1532.01±12.5619.85±10.301)肌肽組27.30±20.5140.64±6.3730.58±17.61F值P值0.2500.7821.3430.2914.3910.032
與模型組比較:1)Plt;0.01
2.3特制牛肉湯對腦缺血大鼠外周血IL-1β水平的影響 假手術組外周血有低水平IL-1β蛋白表達。與假手術組比較,模型組腦缺血后1 d,外周血IL-1β水平顯著增加,3 d達到高峰,7 d 略微下降,均有統(tǒng)計學差異(Plt;0.05)。與模型組相比,予肌肽后,各時點外周血IL-1β表達均有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05);予特制牛肉湯1 d和3 d后,外周血IL-1β表達雖有下降趨勢,但無統(tǒng)計學差異(Pgt;0.05),予特制牛肉湯7 d后,外周血IL-1β表達下降顯著(Plt;0.05),見表3。
表3 各組各時點腦缺血大鼠外周血IL-1β水平比較
與假手術組比較:1)Plt;0.05;與模型組比較:2)Plt;0.05
2.4特制牛肉湯對腦缺血大鼠外周血IFN-γ水平的影響 假手術組外周血有低水平IFN-γ蛋白表達。與假手術組相比,模型組各時點外周血IFN-γ水平迅速上升,但僅腦缺血3 d和7 d后有統(tǒng)計學差異(Plt;0.05)。與模型組相比,予肌肽組和特制牛肉湯后,各時點外周血IFN-γ水平有下降趨勢,但僅在腦缺血7 d后有統(tǒng)計學差異(Plt;0.01),見表4。
表4 各組各時點腦缺血大鼠外周血IFN-γ水平比較
與假手術組比較:1)Plt;0.05;與模型組比較:2)Plt;0.01
2.5腦梗死體積與IL-1β和IFN-γ的相關性 腦梗死體積與IL-1β和IFN-γ均呈正相關(r=0.946、r=0.867,均Plt;0.01),見圖2。
圖2 腦梗死體積與IL-1β和IFN-γ的相關性
在急性缺血性腦卒中的發(fā)生發(fā)展中,均伴有小膠質細胞活化導致的神經元壞死,既往研究證實〔6,7〕,這與炎癥機制密不可分。該機制以炎癥細胞因子、黏附分子和轉錄因子等為要素發(fā)揮腦組織破壞效應,其中促炎細胞因子IL-1β、IFN-γ發(fā)揮不可忽視的作用。IL-1β啟動IL-1受體介導的信號轉導系統(tǒng),激活NF-κB等信號通路,調控IL-6、IL-8等促炎癥因子基因的轉錄,加速神經元死亡〔8〕;IFN-γ誘導小膠質細胞合成IL-1β等促炎癥細胞因子,促進抗原提呈細胞(巨噬細胞、樹突細胞)表達MHC-Ⅱ分子,激發(fā)缺血后免疫炎癥級聯(lián)反應,進一步加重腦缺血程度。二者形成惡性循環(huán),導致炎癥反應持續(xù)存在,腦組織損傷無法恢復〔9〕。因此,調節(jié)其異常表達、阻斷缺血后炎癥級聯(lián)反應對減輕腦損傷至關重要。本研究顯示,腦缺血早期,IL-1β、IFN-γ分泌水平顯著升高,表明永久性腦缺血損傷后,激活相關信號轉導通路,誘導促炎細胞因子IL-1β、IFN-γ釋放,炎性反應失控,這與以往研究結果一致〔10,11〕。另外,本研究進一步發(fā)現(xiàn)腦梗死體積與IL-1β和IFN-γ存在顯著正相關,提示可以通過聯(lián)合檢測IL-1β和IFN-γ濃度早日識別、評估腦梗死病變發(fā)展的風險,指導臨床相關治療。特制牛肉湯原料為牛肉,牛肉素有“肉中驕子”的美稱,《丹溪心法》曰:牛肉“全重厚和順之性,潤枯澤槁”,是以正氣存內、邪不可干?,F(xiàn)代營養(yǎng)學亦證實,牛肉富含多種有益成分,如B族維生素、礦物質(鐵、鋅)及必需氨基酸等〔12〕。本課題組運用氨基酸分析儀檢測其成分,發(fā)現(xiàn)特制牛肉湯中肌肽含量豐富,這與Guiott等〔13〕研究一致。肌肽是一種結構最為簡單的生物活性肽,不僅具有抗氧化、增強免疫力和神經傳導等生理功能,且可通過抑制炎性反應,延緩神經元凋亡〔14,15〕。本研究顯示,特制牛肉湯組腦保護作用可能是通過調節(jié)促炎細胞因子分泌,進而制約炎癥反應,達到機體內環(huán)境的動態(tài)平衡,發(fā)揮腦保護作用。但特制牛肉湯在抑制炎性因子釋放,改善神經功能障礙,減輕腦組織損傷等方面優(yōu)于肌肽。因此推測除肌肽外,特制牛肉湯中其他成分發(fā)揮協(xié)同抗炎作用,至于哪些成分及具體機制有待進一步探討。目前,肌肽大都采用β-丙氨酸或β-丙氨酸前體和L-組氨酸等原料人工合成,成本高、效率低,且影響脂類的氧化反應及其產物檢測〔16〕。特制牛肉湯制備簡單,口感、療效均優(yōu)于單一制劑肌肽,可作為輔助食療方應用于臨床腦缺血患者飲食治療。
1Zhao J,Zhang X,Dong L,etal.The many roles of statins in ischemic stroke〔J〕.Curr Neuropharmacol,2014;12(6):564-74.
2張廣惠,何明利.血壓變異性與腦卒中風險的關系〔J〕.中國神經醫(yī)學雜志,2014;13(7):749-52.
3Bae ON,Serfozo K,Baek SH,etal.Safety and efficacy evaluation of carnosine an endogenous neuroprotective agent for ischemic stroke〔J〕.Stroke,2013;44(1):205-12.
4馬 茜,朱 潔,王 辛,等.牛肉水煮液對腦缺血大鼠外周血白細胞介素-6和腫瘤壞死因子α的影響〔J〕.中國神經免疫學和神經病學雜志,2015;22(1):62-6.
5Longa EZ,Weinstein PR,Carlson S,etal.Reversible middle cerebral artery occlusion without craniectomy in rats〔J〕.Stroke,1989;20(1):84-91.
6Iadecola C,Anrather J.The immunology of stroke:from mechanisms to translation〔J〕.Nat Med,2011;17(7):796-808.
7倪光夏,石學敏,王占奎,等.醒腦開竅針刺法對缺血再灌注大鼠大腦皮層IL-1RI和TNFR-1的mRNA表達的影響〔J〕.南京中醫(yī)藥大學學報,2012;28(6):538-40.
8Gabay C,Lamacchia C,Palmer G,etal.IL-1 pathways in inflammation and human diseases〔J〕.Nat Rev Rheumatol,2010;6(4):232-41.
9Schroder K,Hertzog PJ,Ravasi T,etal.Interferon-gamma:an overview of signals,mechanism and functions〔J〕.J Leukoc Biol,2004;75(2):163-89.
10Denes A,Wilkinson F,Bigger B,etal.Central and haematopoietic interleukin-1 both contribute to ischaemic brain injury in mice〔J〕.Dis Model Mech,2013;6(4):1043-8.
11Yilmaz G,Arumugam TV,Stokes KY,etal.Role of T lymphocytes and interferon-gamma in ischemic stroke〔J〕.Circulation,2006;113(17):2105-12.
12Nicklas TA,O'Neil CE,Zanovec M,etal.Contribution of beef consumption to nutrient intake,diet quality,and food patterns in the diets of the US population〔J〕.Meat Sci,2012;90(1):152-8.
13Guiott OA,Calderan A,Ruzza P,etal.Carnosine and carnosine related antioxidants:review〔J〕.Curr Med Chem,2005;12(20):2293-315.
14Wang JP,Yang ZT,Liu C,etal.L-carnosine inhibits neuronal cell apoptosis through signal transducer and activator of transcription 3 signaling pathway after acute focal cerebral ischemia〔J〕.Brain Res,2013;1507(1):125-33.
15朱 潔,馬 茜,王 辛,等.肌肽對局灶性腦缺血大鼠bcl-2、bax表達的影響〔J〕.天津醫(yī)藥,2015;43(3):259-62.
16Lee TS,Yook JS,Yook CH,etal.Method for simple preparing L-carnosine and there of with high yield and high purity without purification step〔P〕.KR2007050319,2007.
〔2016-08-25修回〕
(編輯 曹夢園)
R743.3
A
1005-9202(2017)22-5525-04;
10.3969/j.issn.1005-9202.2017.22.017
江蘇省優(yōu)勢學科項目資助項目(No.YSHL0201-26);江蘇省青藍工程項目資助
1 南京中醫(yī)藥大學
王愛紅(1971-),女,副教授,主要從事心腦血管疾病研究。
李丹丹(1992-),女,碩士,主要從事心腦血管疾病研究。