李楊 喬愛秀 徐云云 王曉暉 王麗 劉慧榮
基礎(chǔ)研究
自噬下降對β1受體自身抗體誘導(dǎo)的H9c2心肌細胞凋亡的作用
李楊 喬愛秀 徐云云 王曉暉 王麗 劉慧榮
目的 探討自噬下降對β1腎上腺素受體自身抗體(β1-AA)誘導(dǎo)的H9c2心肌細胞凋亡的作用。方法 使用1 μM的β1-AA對H9c2心肌細胞進行處理,Real time-PCR檢測自噬相關(guān)基因LC3 mRNA表達的改變,Western blot檢測LC3、Beclin 1以及P62蛋白表達水平的變化;使用流式細胞術(shù)、Caspase-3活性檢測及Hoechst 33258染色反映細胞凋亡情況;使用經(jīng)典的自噬抑制劑3-甲基腺嘌呤(3-MA)預(yù)處理30 min,以及mTOR通路抑制劑雷帕霉素(RAPA)預(yù)處理1 h后,再給予細胞β1-AA處理,檢測此時細胞凋亡的變化情況。結(jié)果 與對照組相比,1 μM的β1-AA干預(yù)H9c2心肌細胞6 h可以明顯降低細胞存活率[(83.46±12.87)%比(96.45±6.99)%]。與對照組(1.01±0.14)相比,β1-AA 干預(yù)細胞 6 h、12 h、24 h,LC3 mRNA水平依次降低[6 h(0.85±0.11),12 h(0.71±0.10),24 h(0.62±0.07)],LC3Ⅱ和 Beclin 1 蛋白水平依次降低,P62蛋白水平逐漸增加,表明β1-AA可以引起心肌細胞自噬水平逐漸下降。同時發(fā)現(xiàn),與對照組(1.13±0.24)相比,β1-AA干預(yù)細胞6 h、12 h,細胞凋亡水平明顯升高,分別達到3.21±0.89和2.14±0.24。使用經(jīng)典自噬抑制劑3-MA預(yù)處理心肌細胞30 min抑制自噬后,H9c2心肌細胞凋亡水平較β1-AA單獨處理組顯著增加[(41.45±6.37)%比(29.55±4.32)%];而使用經(jīng)典mTOR通路抑制劑RAPA預(yù)處理心肌細胞1 h上調(diào)自噬后,心肌細胞凋亡水平較β1-AA單獨處理組明顯下降[(17.36±2.98)%比(29.55±4.32)%],說明自噬水平改變可以影響心肌細胞凋亡水平。結(jié)論 自噬下調(diào)能夠增加β1-AA誘導(dǎo)的H9c2心肌細胞凋亡。
自噬; β1腎上腺素受體自身抗體; H9c2; 凋亡
心功能不全是大多心血管疾病最主要的死亡原因之一[1],其發(fā)病機制尚未完全闡明。大量動物實驗和人體研究均發(fā)現(xiàn),在心功能不全的過程中存在心肌細胞凋亡,而且心肌細胞凋亡在心功能不全的發(fā)生發(fā)展過程中起著至關(guān)重要的作用;相反,如果抑制細胞凋亡則可有效地防止或減弱心功能不全[2]。因此,有效調(diào)控心肌細胞凋亡對于心功能不全的防治有著十分重要的意義。
近年來發(fā)現(xiàn),在40%~60%心功能不全患者血清中可檢測到β1腎上腺素受體自身抗體(β1-adrenoceptor autoantibody,β1-AA)[3]。且有研究表明,β1-AA可以通過激活β1腎上腺素受體誘導(dǎo)心肌細胞凋亡[4],進而參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展。然而,β1-AA如何引起心肌細胞凋亡目前仍不十分清楚。
自噬通過降解老化或受損的細胞器及錯誤折疊或功能異常的蛋白質(zhì),促進細胞的自我更新及物質(zhì)循環(huán),并為細胞提供能量,維持細胞穩(wěn)態(tài)。我們前期研究發(fā)現(xiàn),β1-AA可以引起心肌細胞自噬水平下降[5]。同時有研究表明,自噬參與了細胞凋亡的調(diào)控[6]。在某些特定環(huán)境下,自噬是一種應(yīng)激反應(yīng),通過抑制凋亡避免細胞死亡[7]。由此可知,自噬在細胞凋亡的發(fā)生過程中可能發(fā)揮著重要的調(diào)控作用。然而自噬是否會對β1-AA誘導(dǎo)的H9c2心肌細胞凋亡產(chǎn)生影響目前尚不清楚。本研究將進一步觀察自噬變化對β1-AA誘導(dǎo)的心肌細胞凋亡的影響,為心功能不全患者的防治提供新的理論支持。
1.1 主要試劑與儀器 P62(Cell Signaling Technology),Beclin 1 (Cell Signaling Technology),LC3B(Sigma),辣根過氧化物酶標(biāo)記山羊抗兔二抗(中杉金橋),0.45 μm PVDF 膜(Whatman),RNAiso plus(Takara),Prime Script RT Master Mix(TaKaRa),SYBR Premix Ex TaqTMⅡ(TaKaRa),3-Methyladenine(Sigma),Rapamyein(Gene Operation),Hoechst 33258(Beyotime Biotechnology),Caspase-3活性分光光度法檢測試劑盒(Nanjing Biobox Biotech.Co.,Ltd),Mini port垂直電泳儀(BIO-RAD),熱循環(huán)儀(MJ Research),實時熒光定量 PCR 儀(Stratagene),酶標(biāo)儀(Molecular Devices)。
1.2 實驗分組 實驗分為4組:對照組(Control組);β1-AA 組(β1-AA 1 μM 處理細胞 6、12、24 h);3-MA+β1-AA組(3-MA 10 mM預(yù)處理細胞30 min后加入 β1-AA 1 μM 處理細胞 6 h);RAPA+β1-AA組(RAPA 100 nM預(yù)處理細胞1 h后加入β1-AA 1 μM處理細胞6 h)。
1.3 細胞活性檢測 本實驗采用CCK-8法檢測各組細胞存活率。具體方法是:以大約2×106個細胞/ml的密度將細胞接種在96孔培養(yǎng)板,待細胞貼壁后使用1 μM的β1-AA處理細胞,6 h后更換新鮮培養(yǎng)液 100 μl,加入 5 μl CCK-8,混勻繼續(xù)培養(yǎng)90 min。觀察到溶液顏色變?yōu)樽攸S色時,用酶標(biāo)儀在405 nm處檢測各組吸光度值。根據(jù)各組的吸光度值計算各實驗組相對于對照組的細胞存活率。細胞存活率=(實驗組OD值-陰性對照組OD值)/(對照組OD值-陰性對照組OD值)。
1.4 Real time-PCR 本實驗用Real-time PCR方法檢測LC3的mRNA表達水平。具體方法是:6孔板中每孔H9c2心肌細胞用500 μl Trisol試劑裂解,并提取總RNA。0.5 μg總RNA反轉(zhuǎn)為cDNA,選用SYBR Green試劑盒擴增cDNA產(chǎn)物,確認Real-time PCR的擴增曲線和溶解曲線。引物序列如下:LC3(Gen-Bank ID NM_022867.2),上游引物為 5′-AGCTCTGAAGGCAACAGCAACA-3′,下游引 物 為 5′-GCTCCATGCAGGTAGCAGGAA-3′。GAPDH(Gen-Bank ID NM_017008.3),上游引物為5′-GGCACAGTCAAGGCTGAGAATG-3′,下游引物為5′-ATGGTGGTGAAGACGCCAGTA-3′。 選 用GAPDH作為內(nèi)參。結(jié)果采用相對定量進行計算(2-ΔΔCt法)。
1.5 Western blot 本實驗用Western blot方法檢測P62、LC3和Beclin 1的蛋白表達水平。具體方法是:加入1 μM β1-AA后在不同時間點收集細胞,加入Western及IP細胞裂解液裂解,冰上靜置1 h,細胞刮收集細胞,將細胞懸液收集到1.5 ml的EP管中,12 000 r/min離心15 min,提取上清,用BCA試劑盒進行蛋白定量。選擇上樣量為30 μg上樣并進行SDS-PAGE電泳以及用PVDF膜轉(zhuǎn)膜。再與P62、Beclin 1、LC3B及 β-actin的單克隆抗體進行反應(yīng),4℃過夜;選用相應(yīng)的二抗進行反應(yīng)。SuperECL Plus(北京普利萊,P1030)超敏發(fā)光液發(fā)光;將膜置于全自動曝光儀(Bio-Rad,Universal HoodⅢ)內(nèi),利用Image Lab軟件曝光拍攝條帶。Image J軟件分析條帶的灰度值,將β-actin作為參照,計算不同蛋白的相對表達量。
1.6 Hochest 33258染色 本實驗采用Hoechst 33258染色法來檢測細胞凋亡情況。正常細胞經(jīng)Hoechst 33258染色后細胞核呈彌散均勻熒光;細胞出現(xiàn)凋亡時,細胞核可見濃染致密的顆粒塊狀熒光。具體方法如下:將H9c2心肌細胞接種至六孔板中,細胞貼壁達50%~60%后進行分組加藥處理;用PBS清洗2次,每孔加入1 ml Hoechst 33258染色液,置于37℃、5%CO2恒溫箱中孵育30 min;取出后棄掉染料,用PBS洗滌2次后每孔加入1 ml PBS,熒光倒置顯微鏡(Olympus,IX51)觀察并拍照。1.7 Caspase-3活性檢測 本實驗使用Caspase-3活性分光光度法(南京碧波,BA30100)檢測Caspase-3的活性來反映凋亡情況。具體方法是:收集細胞時,每孔加入100 μl Lysis Buffer,吹打均勻,冰上裂解,用BCA試劑盒進行蛋白定量。給藥組吸取 100 μg 蛋白/50 μl體積(對照組吸取 50 μl裂解液)后,依次加入50 μl 2×反應(yīng)液(使用前加入0.5 μl DTT/50 μl)、5 μl Ac-DEVD-pNA,37 ℃孵育過夜。在酶標(biāo)儀405 nm處測定各組吸光度值。Caspase-3活性計算:校正熒光度值=OD誘導(dǎo)組/OD陰性對照;以對照組的活性為1,計算其余各組Caspase-3相對活性。
1.8 統(tǒng)計學(xué)方法 采用SPSS 16.0軟件對數(shù)據(jù)進行統(tǒng)計分析。結(jié)果以±s表示,兩組間比較采用兩獨立樣本t檢驗,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用最小顯著差異法(LSD)法。檢驗水準(zhǔn)α=0.05。
2.1 β1-AA對H9c2心肌細胞存活率的影響 β1-AA能夠顯著降低H9c2心肌細胞存活率。采用CCK-8法檢測細胞存活率,結(jié)果顯示,與對照組H9c2 心肌細胞存活率(96.45±6.99)%相比,1 μM[8]β1-AA作用H9c2心肌細胞6 h細胞存活率出現(xiàn)明顯下降,為(83.46±12.87)%。見圖 1。
2.2 β1-AA對H9c2心肌細胞自噬水平的影響
LC3Ⅱ是自噬形成的標(biāo)準(zhǔn)蛋白,Beclin 1是參與自噬調(diào)控的重要基因,而P62是自噬重要的底物蛋白。本研究采用Real time-PCR法及western blot法檢測β1-AA干預(yù)H9c2心肌細胞6 h、12 h、24 h時LC3 mRNA水平及LC3、Beclin 1和P62蛋白表達情況。結(jié)果顯示,與對照組(1.01±0.14)相比,心肌細胞LC3 mRNA水平在β1-AA干預(yù)H9c2心肌細胞 6 h 開始下降,6 h(0.85±0.11),12 h(0.71±0.10),24 h(0.62±0.07)。β1-AA 干預(yù) H9c2 心肌細胞 6 h、12 h、24 h以后,LC3Ⅱ與 Beclin 1 蛋白水平依次降低,P62蛋白水平逐漸增加。以上結(jié)果提示,β1-AA可以引起心肌細胞自噬水平明顯下降。見圖2(A、B)。
2.3 β1-AA對H9c2心肌細胞凋亡增加的作用β1-AA在不同時間點刺激H9c2心肌細胞,通過Annexin V-FITC/PI雙染流式細胞術(shù)、Caspase-3活性檢測及Hochest 33258染色來反映心肌細胞凋亡情況。流式細胞分析結(jié)果顯示,與對照組相比,β1-AA刺激6 h時,處于右上象限與右下象限細胞百分比增加,提示細胞凋亡顯著增加(3.21±0.89比1.13±0.24),12 h(2.14±0.24)仍然高于對照組,24 h(1.29±0.19)基本恢復(fù)正常。Caspase-3活性檢測及Hochest 33258染色均發(fā)現(xiàn),β1-AA可以引起H9c2心肌細胞凋亡增加,并且這種增加在β1-AA作用6 h時最為顯著。見圖 3(A、B、C)。
2.4 上調(diào)或抑制心肌細胞自噬水平對β1-AA誘導(dǎo)的心肌細胞凋亡的影響 本研究采用經(jīng)典自噬抑制劑3-MA抑制自噬以及mTOR通路抑制劑RAPA上調(diào)自噬水平,Annexin V-FITC/PI雙染流式細胞術(shù)對H9c2心肌細胞凋亡進行檢測,結(jié)果顯示,β1-AA干預(yù)心肌細胞6 h后,與對照組相比,處于右上象限與右下象限細胞百分比增加[(29.55±4.32)%比(10.02±3.29)%],表明 β1-AA 作用 6 h能夠增加H9c2心肌細胞凋亡;使用經(jīng)典自噬抑制劑3-MA抑制自噬水平以后發(fā)現(xiàn),處于右上象限和右下象限的細胞百分比進一步增加[(41.45±6.37)%比(29.55±4.32)%],提示凋亡水平進一步增加;而使用mTOR通路抑制劑RAPA上調(diào)自噬后則發(fā)現(xiàn),心肌細胞凋亡水平降低[(17.36±2.98)%比(29.55±4.32)%]。以上結(jié)果均說明,自噬變化參與了β1-AA誘導(dǎo)的心肌細胞凋亡。見圖4。
本研究發(fā)現(xiàn),β1-AA可以降低H9c2心肌細胞存活率,增加凋亡水平。利用Real time-PCR和Western blot方法檢測自噬相關(guān)基因和蛋白,結(jié)果表明,β1-AA誘導(dǎo)H9c2心肌細胞自噬水平明顯下降。進一步分析β1-AA引起的H9c2心肌細胞自噬變化與細胞凋亡的關(guān)系,結(jié)果提示,β1-AA可能通過降低H9c2心肌細胞自噬水平誘導(dǎo)細胞出現(xiàn)凋亡。
β1-AA是針對β1腎上腺素受體細胞外第二環(huán)的自身抗體,存在于原發(fā)性擴張型心肌病、Chagas心臟病、原發(fā)性心電紊亂等多種心血管疾病患者血液中,發(fā)揮類β1-AR受體激動劑樣的作用進而導(dǎo)致心功能不全。有研究發(fā)現(xiàn),β1-AA可對分離的心肌細胞產(chǎn)生正性肌力效應(yīng),導(dǎo)致細胞內(nèi)cAMP升高,從而使心肌細胞死亡[9]。也有研究報道,β1-AA具有類激動劑樣的正性變時效應(yīng),使乳鼠心肌細胞跳動頻率增加,并且持續(xù)6 h不衰減[10]。這都提示β1-AA的存在可能是心功能不全發(fā)生發(fā)展的危險因素之一。我們之前的研究[11]也發(fā)現(xiàn),β1-AA的長期存在導(dǎo)致大鼠心肌重構(gòu)和心臟功能受損。本次試驗發(fā)現(xiàn),1 μM β1-AA作用H9c2心肌細胞6 h可明顯降低細胞存活率,表明β1-AA的存在與心功能不全的發(fā)生發(fā)展密不可分。
心肌細胞凋亡是心肌細胞死亡的一種重要方式。有研究表明,β1-AA引起的心肌細胞凋亡是導(dǎo)致心功能不全的主要因素之一[12]。β1-AA通過與β1-AR結(jié)合,可以發(fā)揮類激動劑樣作用激活β1-AR,而β1-AR持續(xù)過度激活可以引發(fā)心肌細胞凋亡[13]。有學(xué)者發(fā)現(xiàn),β1-AA可以激活心肌細胞cAMP依賴的蛋白激酶信號通路,引起Caspase-3的活化,從而導(dǎo)致心肌細胞的凋亡[14]。本實驗研究也發(fā)現(xiàn),1 μM β1-AA作用6 h時可以引起H9c2心肌細胞凋亡顯著增加。但是β1-AA到底如何誘發(fā)凋亡目前并不十分清楚。
自噬是溶酶體吞食和降解細胞漿內(nèi)物質(zhì)的過程,是細胞依賴溶酶體途徑來反復(fù)和再回收利用細胞漿內(nèi)成分的過程[15],這種生物學(xué)過程對于細胞維持內(nèi)環(huán)境穩(wěn)態(tài)及能量平衡是十分重要的。研究發(fā)現(xiàn)β1-AA與β1-AR細胞外第二環(huán)結(jié)合發(fā)揮類激動劑樣作用[16],而β1-AR的激活可以明顯影響自噬水平。我們實驗室前期研究發(fā)現(xiàn),隨著β1-AA刺激時間的延長,心肌細胞自噬水平明顯降低,并且參與心功能不全的發(fā)生發(fā)展[5,17]。本實驗研究結(jié)果也與前期研究結(jié)果一致。β1-AA干預(yù)H9c2心肌細胞6 h、12 h、24 h后,LC3 mRNA水平以及LC3和Beclin 1蛋白水平逐漸降低,P62蛋白水平逐漸增加,提示自噬水平逐漸降低。
自噬和凋亡很有可能是被許多因子同時激活的兩個基本生物學(xué)過程[18]。目前關(guān)于自噬與凋亡的關(guān)系仍存在爭議,但普遍認為二者受共同調(diào)節(jié)因子的影響,存在交互作用。有研究表明,自噬和凋亡均可引起細胞死亡,且自噬處于凋亡上游信號通路,可通過降解受損的蛋白、減弱DNA損傷等途徑抑制凋亡的發(fā)生[19]。最新研究發(fā)現(xiàn),在HeLa細胞中Caspase-3引起的Beclin 1裂解會降低自噬,進而引起細胞凋亡[20]。因此,自噬作為維持細胞穩(wěn)態(tài)的機制,可以在某種程度上影響凋亡的發(fā)生。由以上實驗結(jié)果可知,在β1-AA存在的條件下,H9c2心肌細胞凋亡發(fā)生增加,而自噬水平下降。那么自噬下降是否與β1-AA誘導(dǎo)的心肌細胞凋亡有關(guān)呢?為了進一步證明這一問題,本研究選用RAPA上調(diào)自噬,結(jié)果發(fā)現(xiàn)β1-AA引起的H9c2心肌細胞凋亡水平明顯降低;而當(dāng)使用3-MA抑制自噬后,β1-AA引起的H9c2心肌細胞凋亡水平進一步升高,提示自噬的下調(diào)參與了β1-AA誘導(dǎo)的H9c2心肌細胞的凋亡。由此設(shè)想,如果我們可以早期合理調(diào)控自噬進而適度調(diào)控凋亡,則極有可能減少心肌細胞的凋亡,改善心功能,從而為治療β1-AA陽性心功能不全提供新的方法。
圖1 對照組和β1-AA組細胞存活率檢測結(jié)果分析
圖2 β1-AA誘導(dǎo)H9c2心肌細胞自噬水平下降
A 通過Annexin V-FITC/PI雙染流式細胞術(shù)結(jié)果顯示β1-AA作用6 h時明顯促進H9c2心肌細胞凋亡
圖3 β1-AA引起H9c2心肌細胞凋亡增加
圖4 自噬水平的改變能夠影響H9c2心肌細胞凋亡的發(fā)生
[1]Sun GW,Qiu ZD,Wang WN,et al.Flavonoids Extraction from Propolis Attenuates Pathological Cardiac Hypertrophy through PI3K/AKT Signaling Pathway.Evid Based Complement Alternat Med,2016,2016:6281376.
[2]Andreka P,Nadhazi Z,Muzes G,et al.Possible therapeutic targets in cardiac myocyte apoptosis.Curr Pharm Des,2004,10:2445-2461.
[3]Holthoff HP,Zeibig S,Jahns-Boivin V,et al.Detection of anti-β1-AR autoantibodies in heart failure by a cell-based competition ELISA.Circ Res,2012,111:675-684.
[4]Staudt Y,Mobini R,F(xiàn)u M,et al.Beta1-adrenoceptor antibodies induce apoptosis in adult isolated cardiomyocytes.Eur J Pharmacol,2003,466:1-6.
[5]Wang L,Hao H,Wang J,et al.Decreased autophagy:a major factor for cardiomyocyte death induced by β1-adrenoceptor autoantibodies.Cell Death Dis,2015,6:e1862.
[6]Fukuda T,Oda K,Wada-Hiraike O,et al.Autophagy inhibition augments resveratrol-induced apoptosis in Ishikawa endometrial cancer cells.Oncol Lett,2016,12:2560-2566.
[7]Maiuri MC,Zalckvar E,Kimchi A,et al.Self-eating and selfkilling:crosstalk between autophagy and apoptosis.Nat Rev Mol Cell Biol,2007,8:741-752.
[8]Wang L,Hao H,Wang J,et al.Decreased autophagy:a major factor for cardiomyocyte death induced by β1-adrenoceptor autoantibodies.Cell Death Dis,2015,6:e1862.
[9]Reina S,Ganzinelli S,Sterin-Borda L,et al.Pro-apoptotic effect of anti-β1-adrenergic receptor antibodies in periodontitis patients.Int Immunopharmacol,2012,14:710-721.
[10]Magnusson Y,Wallukat G,Waagstein F,et al.Autoimmunity in idiopathic dilated cardiomyopathy.Characterization of antibodies against the beta 1-adrenoceptor with positive chronotropic effect.Circulation,1994,89:2760-2767.
[11]Zuo L,Bao H,Tian J,et al.Long-term active immunization with a synthetic peptide corresponding to the second extracellu lar loop of β1-adrenoceptor induces both morphological and functional cardiomyopathic changes in rats.IntJCardiol 2011,149:89-94.
[12]Jane-wit D,Altuntas CZ,Johnson JM,et al.Beta 1-adrenergic receptor autoantibodies mediate dilated cardiomyopathy by agonistically inducing cardiomyocyte apoptosis.Circulation 2007,116:399-410.
[13]Somvanshi RK,Zou S,Qiu X,et al.Somatostatin receptor-2 negatively regulates β-adrenergic receptor mediated Ca(2+)dependent signaling pathways in H9c2 cells.Biochim Biophys Acta,2014,1843:735-745.
[14]Reina S,Ganzinelli S,Sterin-Borda L,et al.Pro-apoptotic effect of anti-β1-adrenergic receptor antibodies in periodontitis patients.Int Immunopharmacol,2012,14:710-21.
[15]Bai W,Chen Y,Sun P,et al.Downregulation of B-cell lym phoma/leukemia-2 by overexpressed microRNA 34a enhanced titanium dioxidenanoparticle-induced autophagy in BEAS-2B cells.Int J Nanomedicine,2016,11:1959-1971.
[16]Tutor AS,Penela P,Mayor F Jr.Anti-beta1-adrenergic receptor autoantibodies are potent stimulators of the ERK1/2 pathway in cardiac cells.Cardiovasc Res,2007,76:51-60.
[17]Wang L,Lu K,Hao H,et al.Decreased autophagy in rat heart induced by anti-β1-adrenergic receptor autoantibodies con tributes to the decline in mitochondrial membrane potential.PLoS One,2013,8:e81296.
[18]Ma K,Zhang C,Huang MY,et al.Crosstalk between Beclin-1-dependent autophagy and caspase dependent apoptosis induced by tanshinoneⅡA in human osteosarcoma MG-63 cells.Oncol Rep,2016,36:1807-1818.
[19]Fukuda T,Oda K,Wada-Hiraike O,et al.Autophagy inhibition augments resveratrol-induced apoptosis in Ishikawa endometrial cancer cells.Oncol Lett,2016,12:2560-2566.
[20]Zhu Y,Zhao L,Liu L,et al.Beclin 1 cleavage by caspase-3 inactivates autophagy and promotes apoptosis.ProtCell 2010,1:468-477.
Decreased autophagy participate in the apoptosis induced by β1adrenergic receptor autoantibodies in H9c2 cells
LI Yang*,QIAO Ai-xiu,XU Yun-yun,et al.*Department of Physiology,Shanxi Medical University,Taiyuan 030001,China
WANG Li,E-mail:mirror0117@126.com;LIU Hui-rong,E-mail:liuhr2000@126.com
ObjectiveTo investigate the role of autophagy in the regulation of apoptosis induced by β1adrenergic receptor autoantibodies(β1-AA)in H9c2 cells.MethodsH9c2 myocardial cells treated with 1 μM β1-AA were processed to detect the changes of autophagy related gene LC3 mRNA expression by Real time-PCR;using western blot to test the varieties of Beclin 1,P62 and LC3 protein expression level;flow cytometry,Caspase-3 activity detection and Hoechst 33258 staining were used to assess cell apoptosis;using classical autophagy inhibitor 3-Methyladenine(3-MA)pretreated cells for 30 min or pretreated with mTOR signaling pathway inhibitor rapamyein(RAPA)for 1 h,then used β1-AA,detecting the changes of apoptosis.ResultsCompared with the control group(96.45±6.99)%,after 1 μM β1-AA acting on H9c2 myocardial cells 6 h,the survival rate of cells significantly reduced to(83.46±12.87)%;as compared to control(1.01±0.14),β1-AA intervened cells for 6 h,12 h and 24 h,LC3 mRNA level was fallen to 0.85±0.11,0.71±0.10,and 0.62±0.07,respectively;also,LC3Ⅱ and Beclin 1 protein level was descended,nevertheless P62 protein level increased gradually,showed that the level of autophagy decreased gradually;at the same time,compared to controls(1.13±0.24),β1-AA acting to cardiomyocytes for 6 h and 12 h,the level of cardiomyocytes apoptosis severally increased to 3.21±0.89 and 2.14±0.24;after preusing classical autophagy inhibitor 3-MA for 30 min to inhibit autophagy,apoptosis of H9c2 myocardial cells increased significantly than only β1-AA treatment group[(41.45±6.37)%vs (29.55±4.32)%],in contrast,after using mTOR signaling pathway inhibitor RAPA for 1 h to upregulate autophagy,apoptosis of H9c2 cardiomyocytes decreased[(17.36±2.98)%vs(29.55±4.32)%],indicated that changes in autophagy can affect H9c2 cells apoptosis.ConclusionReduced autophagy could increase apoptosis induced by β1-AA in H9c2 cells.
Autophagy; β1-adrenergic receptor autoantibodies; H9c2 cell; Apoptosis
國家自然科學(xué)基金(項目編號:31401006);山西省應(yīng)用基礎(chǔ)研究項目(項目編號:201601D021146);
030001 山西省太原市,山西醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)系,細胞生理學(xué)山西省重點實驗室(李楊、劉慧榮),病理教研室(喬愛秀、徐云云、王曉暉、王麗);首都醫(yī)科大學(xué)基礎(chǔ)醫(yī)學(xué)院生理學(xué)與病理生理學(xué)教研室(劉慧榮)
王麗,E-mail:mirror0117@126.com;劉慧榮,E-mail:liuhr2000@126.com
,ebook=93
10.3969/j.issn.1672-5301.2017.03.023
R542.2
A
1672-5301(2017)03-0279-05
2016-11-06)
山西醫(yī)科大學(xué)博士啟動基金(項目編號:B03201202)