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    熒光定量法測定DNA熔解溫度

    2017-08-22 04:10:15陳翔張佳琦汪澤許旭朱濱
    中國醫(yī)藥生物技術(shù) 2017年4期
    關(guān)鍵詞:雙鏈法測定染料

    陳翔,張佳琦,汪澤,許旭,朱濱

    熒光定量法測定DNA熔解溫度

    陳翔,張佳琦,汪澤,許旭,朱濱

    DNA 熔解溫度(Tm)指 DNA 雙鏈變性過程中一半雙鏈解離為單鏈的溫度[1],是 DNA 片段的一個(gè)重要特性。準(zhǔn)確測定 DNA 片段 Tm值,是分子生物學(xué)實(shí)驗(yàn)方法(如PCR 檢測技術(shù)、核酸雜交檢測技術(shù)等)建立的基礎(chǔ),在疾病的分子診斷領(lǐng)域具有重要現(xiàn)實(shí)意義[2-4]。影響 DNA 片段Tm值的因素有很多,如 DNA 片段的長度、DNA 片段的GC% 含量[5]、鹽離子濃度、pH 等[6]。傳統(tǒng)測定 DNA 片段 Tm值的方法多用紫外分光光度法[7-9],該方法有一定的局限性,溶液需要量大,操作起來不方便。利用熒光試劑(如 SYBR Green I)與雙鏈 DNA 結(jié)合后熒光大大增強(qiáng)的特點(diǎn),采用熒光定量法可以較好解決這些問題。用熒光定量法測定 DNA 樣品在含有 SYBR Green I 溶液中的熔解曲線,根據(jù)其導(dǎo)數(shù)曲線熔解峰對應(yīng)的溫度可以確定 DNA 樣品的 Tm值。熒光定量 PCR 儀溶液需求量小,不需太多操作,能很好地控制反應(yīng)的溫度,進(jìn)行實(shí)時(shí)自動(dòng)化檢測[10-11]。本文用熒光定量法測定不同大小、不同 GC% 含量 DNA片段的 Tm值并研究了其影響因素,顯示該法可用于實(shí)際樣品測定。

    1 材料與方法

    1.1 儀器與試劑

    FQD-48A 型熒光定量 PCR儀、TC-XP-D 型 XP 基因擴(kuò)增儀、HB-100 型恒溫金屬浴為杭州博日科技有限公司產(chǎn)品;Cary 100 型紫外可見分光光度計(jì)為美國安捷倫科技有限公司產(chǎn)品;OD-1000+ 超微量分光光度計(jì)為南京五義科技有限公司產(chǎn)品。

    SYBR Green I(10 000 ×)購自廈門致善生物科技股份有限公司;lambda DNA、DMSO、Tris 鹽酸鹽、Tris 堿均為生工生物工程(上海)股份有限公司產(chǎn)品;K2HPO4·3H2O、KH2PO4均為國產(chǎn)分析純試劑。

    1.2 方法

    1.2.1 不同大小、不同 GC% 含量 DNA 片段的制備 大片段 DNA 的 GC% 含量大多沒有顯著差異,選擇商業(yè)化lambda DNA 產(chǎn)品。150~300 bp 的不同 GC% 含量 DNA片段的制備是選擇人基因組中不同 GC% 含量的基因(TPMT、CY、APOE),采用體外擴(kuò)增并純化。25 bp 的不同 GC% 含量 DNA 片段(Oligo A、Oligo B、Oligo C)委托生工生物工程(上海)股份有限公司合成并純化。不同GC% 含量的 DNA 序列見表 1。

    1.2.2 溶液的配制

    ⑴熒光染色劑稀釋液:規(guī)格為 10 000 × 的 SYBR Green I 溶液用 DMSO 稀釋 10 000 倍,備用。

    表1 不同 GC% 含量的 DNA 序列

    ⑵磷酸鹽緩沖液:稱取 K2HPO4·3H2O 和 KH2PO4,分別配制成 50 mmol/L 的溶液,兩種磷酸鹽溶液調(diào)節(jié) pH 至7.4 左右,備用。

    ⑶Tris 鹽緩沖液:稱取 Tris 鹽酸鹽和 Tris 堿,分別配制成 400 mmol/L 的溶液,兩種 Tris 溶液調(diào)節(jié) pH 至7.4 左右,備用。

    1.2.3 熒光測定 DNA 片段 Tm取熒光染色劑稀釋液1 μl、磷酸鹽溶液 4 μl(終濃度5 mmol/L)、Tris 鹽溶液 6 μl(終濃度 60 mmol/L),加入適量 DNA 溶液(使定量后DNA 終濃度為 10 ng/μl),用超純水定量至 40 μl。配制好的溶液放入熒光定量 PCR 儀中,設(shè)置程序?yàn)椋?0 ℃、30 s,65 個(gè)循環(huán),每個(gè)循環(huán)增加 1 ℃。測定 DNA 片段的熔解曲線,得到熔解導(dǎo)數(shù)曲線,取熔解導(dǎo)數(shù)曲線的峰對應(yīng)的溫度為Tm值。

    1.2.4 紫外測定 DNA 片段 Tm磷酸鹽溶液(終濃度5 mmol/L)、Tris 鹽溶液(終濃度 60 mmol/L),加入適量DNA 溶液(使定量后 DNA 終濃度為 10 ng/μl)。紫外分光光度計(jì)設(shè)置固定吸收波長 260 nm,升溫速率 1 ℃/min,升溫范圍 30~95 ℃。得到 DNA片段隨溫度升高的紫外吸收曲線,取紫外吸收過渡曲線的中點(diǎn)對應(yīng)的溫度為 Tm值。

    2 結(jié)果

    2.1 不同 DNA 片段的 Tm值

    不同大小、不同 GC% 含量 DNA 片段的 Tm值見表 2。本實(shí)驗(yàn)條件下,熒光法可測定不同 GC% 含量各種大小 DNA 片段的 Tm值,僅在寡核苷酸小片段的 GC%含量過高時(shí)(Tm大于 90 ℃,接近水的沸點(diǎn)),熒光定量法與紫外法一樣均難以準(zhǔn)確測定,而紫外法在測定小片段DNA 的 Tm值時(shí)還需要顯著提高 DNA 濃度。熒光法與紫外法測定值基本一致,CY 片段熒光熔解曲線如圖 1 所示,熒光熔解導(dǎo)數(shù)曲線圖如圖 2 所示。

    表2 不同 DNA 片段的熔解溫度(Tm)值

    圖1 CY 片段熒光熔解曲線

    2.2 熒光定量法測定 Tm值時(shí)熒光染料與 DNA 的濃度配比

    實(shí)驗(yàn)表明,對于不同大小、不同 GC% 含量的 DNA 片段,用熒光定量法測定 Tm值時(shí),SYBR Green I 適宜的終濃度為 0.025 ×。在上述熒光染料濃度條件下,DNA 片段的適宜終濃度取決于 DNA 片段的大小,片段越小,終濃度越大。在本文建立的實(shí)驗(yàn)條件下,大片段 DNA(kb 級)適宜終濃度不低于 5 ng/μl,中等大小 DNA(數(shù)百 bp)適宜終濃度不低于 10 ng/μl,小片段(數(shù)十 bp)適宜終濃度不低于 20 ng/μl。同等大小的 DNA 片段,GC% 含量越高,適宜濃度也越高。例如,TPMT 片段濃度低至 1 ng/μl 時(shí),可見明顯熒光導(dǎo)數(shù)曲線峰,而 APOE 片段濃度為 5 ng/μl時(shí),熒光導(dǎo)數(shù)曲線峰才可見。

    用熒光定量法測定 DNA 片段的 Tm值時(shí),DNA 濃度、SYBR Green I 染料量均不宜過高,否則熒光導(dǎo)數(shù)曲線圖會(huì)出現(xiàn)異常峰(饅頭峰或雙峰),給 Tm值的確定帶來困難。這可能是 DNA 解鏈會(huì)引起熒光信號(hào)變化產(chǎn)生,而解鏈后的 DNA 自身折疊形成局部雙鏈(高濃度時(shí)更明顯)解鏈也會(huì)引起熒光信號(hào)的變化,各因素疊加后使峰形復(fù)雜。

    2.3 緩沖體系對測定的影響

    圖2 CY 片段熒光熔解導(dǎo)數(shù)曲線

    圖3 TPMT 片段熒光熔解導(dǎo)數(shù)曲線(1:Tris 鹽濃度5 mmol/L;2:Tris 鹽濃度 30 mmol/L;3:Tris 鹽濃度60 mmol/L)

    鹽濃度的變化會(huì)對 DNA 片段 Tm值產(chǎn)生顯著影響。通常采用磷酸鹽緩沖體系,以保持測定過程中鹽濃度、pH的穩(wěn)定。熒光導(dǎo)數(shù)圖的峰形會(huì)受緩沖體系的影響,在緩沖體系中增加 Tris 鹽濃度會(huì)明顯改善低 GC% 含量 DNA 片段熒光導(dǎo)數(shù)曲線峰形(圖 3),對 Tm值略有提高,影響不大。DNA 片段 GC% 含量越高,上述改善越不明顯,但會(huì)明顯提高 Tm值。

    3 討論

    熒光定量 PCR 儀由于樣品量?。ㄎ⑸墸?、溫控準(zhǔn)確、功能強(qiáng)大、自動(dòng)化程度高迅速在臨床及科研領(lǐng)域得到普及。除了聚合酶鏈反應(yīng)等常規(guī)用途,用于 DNA 片段 Tm值研究與傳統(tǒng)的紫外分光光度法相比,優(yōu)勢明顯。

    紫外分光光度法測定 DNA 熔解曲線原理是單鏈DNA 的吸光度大于雙鏈,根據(jù)吸光度的變化來確定 DNA熔解曲線,實(shí)際操作中,影響因素較多。DNA 溶液若不純,其紫外吸收曲線會(huì)出現(xiàn)不利于判定 Tm值的情況。紫外法測定互補(bǔ)寡核苷酸小片段,寡核苷酸小片段原本即為兩條單鏈,有一定的吸光度,濃度過低,熔解曲線會(huì)呈現(xiàn)一條逐漸升高的直線,無法判定 Tm值。

    熒光定量法測定 DNA 的 Tm值是基于特殊的熒光染料分子(EB、SYBR Green I、吖啶橙等),這些染料分子可以插入雙鏈 DNA 分子中,插入前后熒光染料分子的熒光強(qiáng)度有數(shù)十倍的差異。同樣插入雙鏈 DNA 中的熒光染料分子的熒光強(qiáng)度隨 DNA 分子的解鏈也會(huì)產(chǎn)生顯著變化。DNA 溶液純度和片段大小對該法影響較小。熒光染料的用量以產(chǎn)生適宜的熒光強(qiáng)度變化為宜。目前已有專門用于此的商業(yè)試劑盒可供選擇。

    采用熒光定量法測定 DNA 片段 Tm值,熒光染料與DNA 的濃度配比非常重要。由于熒光染料分子插入 DNA片段后復(fù)合物本身的熒光強(qiáng)度會(huì)隨著溫度升高而下降,配比不合適會(huì)掩蓋 DNA 解鏈引起的熒光強(qiáng)度下降。也因?yàn)樵撛?,用熒光?dǎo)數(shù)圖將更直觀、更準(zhǔn)確。

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    201418 上海應(yīng)用技術(shù)大學(xué)化學(xué)與環(huán)境工程學(xué)院(陳翔、許旭);200233 上海百傲科技股份有限公司(張佳琦、汪澤、朱濱)

    朱濱,Email:zhubin@baio.com

    2017-05-01

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