才開·莎熱麗 徐思成 李超
[摘要] 目的 探討大鼠肺缺血再灌注損傷(IRI)模型中Toll樣受體4(TLR4)信號(hào)通路介導(dǎo)缺氧誘導(dǎo)因子-1α(HIF-1α)的變化及其意義。 方法 選取48只健康雄性SD大鼠,采用隨機(jī)數(shù)字表法分為假手術(shù)組、IRI模型組、TLR4激活組(脂多糖干預(yù))、TLR4抑制組(TAK-242干預(yù)),每組各12只大鼠。造模前3周時(shí),IRI模型組和假手術(shù)組靜脈注射生理鹽水,TLR4激活組靜脈注射脂多糖,TLR4抑制組靜脈注射TAK-242,每周1次,連續(xù)3周。IRI模型組、TLR4激活組和TLR4抑制組均于末次注射30 min后建立肺缺血再灌注損傷模型。假手術(shù)組除不阻斷肺門外,其他操作方法同前。再灌注損傷后3 h采用逆轉(zhuǎn)錄聚合酶聯(lián)反應(yīng)(RT-PCR)檢測(cè)各組大鼠肺組織中Toll樣受體4(TLR4)、缺氧誘導(dǎo)因子-1α(HIF-1α)、腫瘤壞死因子-α(TNF-α)和白細(xì)胞介素-6(IL-6)mRNA表達(dá),采用免疫印跡法(Western-blot)檢測(cè)各組大鼠肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α和IL-6蛋白表達(dá)水平。 結(jié)果 肺濕重/干重值IRI模型組高于假手術(shù)組(P < 0.05),TLR4激活組高于IRI模型組(P < 0.05),TLR4抑制組低于IRI模型組(P < 0.05);肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA和蛋白表達(dá)水平IRI模型組高于假手術(shù)組(P < 0.05),TLR4激活組高于IRI模型組(P < 0.05),TLR4抑制組低于IRI模型組(P < 0.05)。 結(jié)論 大鼠肺IRI后,肺組織中TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)HIF-1α的水平顯著升高,會(huì)增加對(duì)肺組織的炎癥損傷程度。
[關(guān)鍵詞] 肺缺血再灌注損傷;Toll樣受體4;缺氧誘導(dǎo)因子-1α
[中圖分類號(hào)] R563 [文獻(xiàn)標(biāo)識(shí)碼] A [文章編號(hào)] 1673-7210(2017)05(c)-0018-05
[Abstract] Objective To investigate the changes and significance of hypoxia inducible factor-1α (HIF-1α) mediated by Toll like receptor 4 (TLR4) signal pathway in the model of lung ischemia reperfusion injury (IRI) rats. Methods A total of 48 healthy male SD rats were selected and randomly divided into sham operation group, IRI model group, TLR4 activation group (LPS intervention) and TLR4 inhibition group (TAK-242 intervention) with 12 rats in each group. 3 weeks before model, IRI model group and sham operation group were injected with saline, TLR4 activation group was injected with lipopolysaccharide, TLR4 inhibition group was injected with TAK-242, once a week for three weeks. IRI model group, TLR4 activation group and TLR4 inhibition group were established a model of lung ischemia-reperfusion injury after last injection 30 minutes, sham operation group was treated same as the other groups except for not block the lung door. 3 hours after reperfusion injury, TLR4, HIF-1α, tumor necrosis factor-α (TNF-α) and interleukin-6 (IL-6) mRNA expression of lung tissue were tested by reverse transcriptase polymerase chain reaction (RT-PCR). TLR4, HIF-1α, TNF-α and IL-6 protein expression of lung tissue were tested by Western-blot. Results The lung wet weight/dry weight ratio of the IRI model group was higher than that of the sham operation group (P < 0.05), the TLR4 activation group was higher than that of the model group (P < 0.05), and the TLR4 inhibition group was lower than that of the model group (P < 0.05). The mRNA and protein expression levels of TLR4, HIF-1α, TNF-α, IL-6 in the lung tissues of IRI model group were higher than those of the sham operation group (P < 0.05), the TLR4 activation were higher than those of the model group (P < 0.05), and the TLR4 inhibition group were lower than those of the model group (P < 0.05). Conclusion The TLR4 signal pathway in the lung tissue mediates the HIF-1α expression increased significantly after lung ischemia-reperfusion injury in rats, and increases the degree of inflammatory damage to the lung tissue.
[Key words] Ischemia reperfusion injury of lung; Toll like receptor 4; Hypoxia inducible factor-1α
肺缺血再灌注損傷(ischemia reperfusion injury,IRI)是臨床心肺術(shù)后較為常見的并發(fā)癥之一,其可誘發(fā)一系列復(fù)雜的級(jí)聯(lián)反應(yīng)并導(dǎo)致肺損傷,嚴(yán)重影響患者的預(yù)后效果[1-3]。研究表明,IRI的發(fā)生和發(fā)展是一個(gè)復(fù)雜的病理過程,涉及炎性反應(yīng)、氧化應(yīng)激反應(yīng)、自由基產(chǎn)生、促炎介質(zhì)釋放等過程[4]。而局部炎性反應(yīng)又可誘發(fā)全身性炎性反應(yīng)甚至是器官衰竭的發(fā)生,最終可導(dǎo)致死亡[5-8]。Toll樣受體4(TLR4)信號(hào)通路被認(rèn)為是炎性反應(yīng)的重要信號(hào)因子,而缺氧誘導(dǎo)因子-1α(HIF-1α)是缺氧的信號(hào)因子之一,且二者之間具有相互調(diào)控機(jī)制,可進(jìn)一步導(dǎo)致促炎性反應(yīng)的發(fā)生,進(jìn)而參與IRI的發(fā)生和發(fā)展[9]。為此,本研究探討分析了大鼠肺IRI模型中TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)HIF-1α的變化及意義,為臨床上尋求新的治療靶點(diǎn)提供參考依據(jù)。
1 材料與方法
1.1 實(shí)驗(yàn)動(dòng)物
選取48只健康雄性SD大鼠,均為SPF級(jí),4~6周齡,體重250~300 g,平均(278.9±10.3)g,購買于新疆醫(yī)科大學(xué)動(dòng)物實(shí)驗(yàn)中心(動(dòng)物合格證號(hào):XJYKDX-20160317002),喂養(yǎng)于光照12 h、相對(duì)濕度45%~60%、溫度23~25℃的實(shí)驗(yàn)室中。
1.2 藥品、儀器
TAK-242、戊巴比妥鈉、脂多糖、辣根過氧化物酶(HRP)均購自美國Sigma公司;RNA提取試劑盒、逆轉(zhuǎn)錄試劑盒、RT-PCR試劑盒均購自美國Epitomics公司;單克隆兔抗TLR4、單克隆兔抗HIF-1α、單克隆兔抗TNF-α、單克隆兔抗IL-6均購自美國Epitomics公司;TLR4、HIF-1α、TNF-α和IL-6引物均購自上海生工生物工程有限公司。
動(dòng)物呼吸機(jī)購自北京眾實(shí)迪創(chuàng)科技公司,電泳槽購自美國Bio-Rad公司,RT-PCR儀購自美國應(yīng)用生物系統(tǒng)公司,顯微鏡購自日本奧林巴斯公司。
1.3 分組與造模
將48只大鼠隨機(jī)分成四組,即假手術(shù)組、IRI模型組、TLR4激活組和TLR4抑制組,每組各12只。其中,IRI模型組和假手術(shù)組于造模前3周靜脈注射2 mL生理鹽水,TLR4激活組于造模前3周靜脈注射脂多糖(1.50 mg溶于2 mL生理鹽水),TLR4抑制組于造模前3周靜脈注射TLR4特異性抑制劑TAK-242(10 mg/kg溶于2 mL DMSO)進(jìn)行干預(yù),每周1次,連續(xù)3周。IRI模型組、TLR4激活組和TLR4抑制組均于末次注射30 min后建立肺缺血再灌注損傷模型,方法如下:大鼠經(jīng)腹腔注射戊巴比妥鈉(60 mg/kg)麻醉,同時(shí)皮下注射肝素1000 U/kg,經(jīng)口氣管插管后接動(dòng)物呼吸機(jī),通氣頻率為70次/min,潮氣量為10 mL/kg。在大鼠左側(cè)第五肋間做長(zhǎng)約3 cm的切口,切開胸廓后暴露左肺門,待大鼠吸氣時(shí)完全阻斷左肺門,45 min后恢復(fù)血流灌注,3 h時(shí)完整切取左肺。假手術(shù)組除不阻斷肺門外,其他操作方法同前。
1.4 觀察指標(biāo)及檢測(cè)方法
1.4.1 肺組織濕重/干重值檢測(cè) 取部分左肺組織稱量濕重,隨后將其置于65℃烤箱中72 h,稱量干重后計(jì)算左肺濕重與干重比值。
1.4.2 RT-PCR檢測(cè) 取部分肺組織采用RNA提取試劑盒提取總RNA,利用逆轉(zhuǎn)錄試劑盒逆轉(zhuǎn)錄為DNA,在聚合酶的作用下進(jìn)行擴(kuò)增。引物如下:TLR4上游:GTTCATCTGCTTTCTGCTG,下游:TGATTCTGCCTGA-TGTTGC;HIF-1α上游:GTTTACTAAAGGACAAGTCACC,下游:TTCTGTTTGTTGAAGCAG;IL-6上游:ACTGCCTTCCCTACTTCACA,下游:TCGCTGTTCATACAATCAGA;TNF-α上游:AATCAGCCTCCCTCAT-CAGTT;下游:CCACTTGGTGGTTTGCTACGA;β-actin上游:GCCATGTACGTAGCCATCCA,下游:GAACCGCT-CATTGCCGATAG。擴(kuò)增條件如下:95℃ 10 min,然后以95℃ 15 s、60℃ 60 s為1個(gè)循環(huán),共進(jìn)行40個(gè)循環(huán)。具體檢測(cè)步驟嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行。電泳后得到目的條帶的光密度值與β-actin光密度值進(jìn)行比較,最終得出TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平。
1.4.3 Western-blot檢測(cè) 取大鼠肺組織制備蛋白樣,并取約75 μg以10%十二烷基硫酸鈉(SDS)聚丙烯酰胺凝膠進(jìn)行電泳,分離后轉(zhuǎn)移至孔徑為0.45 μm的聚偏二氟乙烯(PVDF)膜,置于5%脫脂奶粉中封閉2 h;加入一抗(TLR4、TNF-α、IL-6和HIF-1α)后4℃孵育過夜,以0.5%TBS-T溶液洗膜3次后再加入HRP標(biāo)記的二抗進(jìn)行反應(yīng),以0.5%TBS-T溶液洗膜3次用化學(xué)發(fā)光法進(jìn)行顯色,并采用軟件進(jìn)行灰度值分析,計(jì)算各目標(biāo)蛋白與β-actin的灰度比值。
1.4.4 HE染色 取各組大鼠部分新鮮肺組織,以4%中性甲醛溶液固定后做連續(xù)切片,常規(guī)HE染色后進(jìn)行病理檢測(cè),具體檢測(cè)步驟嚴(yán)格按照試劑盒說明書進(jìn)行。
1.5 統(tǒng)計(jì)學(xué)方法
采用SAS 10.0統(tǒng)計(jì)學(xué)軟件進(jìn)行數(shù)據(jù)分析,計(jì)量資料數(shù)據(jù)用均數(shù)±標(biāo)準(zhǔn)差(x±s)表示,多組間比較采用單因素方差分析,組間兩兩比較采用LSD-t檢驗(yàn),以P < 0.05為差異有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義。
2 結(jié)果
2.1 病理學(xué)觀察
圖1為各組大鼠肺組織HE染色后100倍光鏡下觀察,假手術(shù)組肺組織未見明顯異常,肺泡組織結(jié)構(gòu)清楚,僅見極少量紅細(xì)胞及炎癥細(xì)胞浸潤(rùn)于肺泡腔;B為IRI模型組可見肺泡結(jié)構(gòu)紊亂,肺泡間隙增寬,肺毛細(xì)血管充血明顯,肺泡腔內(nèi)大量的紅細(xì)胞,炎性細(xì)胞浸潤(rùn);TRL4激活組可見大鼠肺組織病變程度較IRI模型組更加嚴(yán)重;TRL4抑制組可見大鼠肺組織中的病變程度較IRI模型組輕微。
2.2 各組大鼠肺濕重/干重值比較
IRI模型組肺濕重/干重值高于假手術(shù)組,TLR4激活組肺濕重/干重值高于IRI模型組,TLR4抑制組肺濕重/干重值低于IRI模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P < 0.05)。見表1。
2.3 各組大鼠肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平比較
IRI模型組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平均高于假手術(shù)組,TLR4激活組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平高于IRI模型組,TLR4抑制組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6 mRNA表達(dá)水平低于IRI模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P < 0.05)。見表2。
2.4 各組大鼠肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)水平比較
IRI模型組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)水平高于假手術(shù)組,TLR4激活組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)水平高于IRI模型組,TLR4抑制組肺組織中TLR4、HIF-1α、TNF-α、IL-6蛋白表達(dá)水平低于IRI模型組,差異均有統(tǒng)計(jì)學(xué)意義(均P < 0.05)。見表3、圖2。
3 討論
肺IRI是一種較為復(fù)雜的病理、生理過程,多在肺移植、體外循環(huán)、肺袖式切除、肺動(dòng)脈成形、肺動(dòng)脈血栓內(nèi)膜剝脫、心肺復(fù)蘇及創(chuàng)傷等情況下發(fā)生,患者表現(xiàn)多為肺水腫、肺血管阻力增加、微循環(huán)通透性增加、肺動(dòng)脈高壓等,嚴(yán)重時(shí)甚至導(dǎo)致死亡[10-12]。研究表明,肺缺血再灌注損傷的發(fā)生和發(fā)展與炎癥介質(zhì)釋放、氧化應(yīng)激反應(yīng)、細(xì)胞內(nèi)轉(zhuǎn)超載、細(xì)胞死亡誘導(dǎo)、中性粒細(xì)胞活化以及保護(hù)性介質(zhì)的減少等因素有關(guān)[13-14],其中,炎性反應(yīng)和缺氧在這一過程中發(fā)揮了重要的作用。有研究表明,炎癥和缺氧可以協(xié)同作用,炎癥環(huán)境會(huì)導(dǎo)致氧含量持續(xù)下降,而細(xì)胞耗氧量的增加又會(huì)導(dǎo)致炎性反應(yīng)和組織損傷的加劇,進(jìn)而促進(jìn)缺血再灌注損傷的發(fā)展[15-16],但是具體機(jī)制目前尚不完全清楚,可能與TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)HIF-1α的變化有關(guān)。因此,本研究將大鼠分別靜脈注射脂多糖、TAK-242和生理鹽水干預(yù)后再建立肺缺血再灌注損傷,并對(duì)各組再灌注損傷后3 h的相關(guān)實(shí)驗(yàn)室指標(biāo)進(jìn)行了分析比較。
本研究發(fā)現(xiàn),建立灌注模型后,IRI模型組大鼠病理檢測(cè)發(fā)現(xiàn)肺泡結(jié)構(gòu)紊亂,炎性反應(yīng)較為明顯,TRL4激活組大鼠的肺組織病變程度較IRI模型組更加嚴(yán)重,而TRL4抑制組大鼠肺組織中的病變程度較IRI模型組輕微;IRI模型組大鼠肺濕重/干重值高于假手術(shù)組,TLR4激活組肺濕重/干重值高于IRI模型組,而TLR4抑制組肺濕重/干重值低于IRI模型組,上述結(jié)果提示肺缺血再灌注模型建立成功。TRL4激活組添加脂多糖后大鼠肺部可見明顯炎性反應(yīng),且肺濕重/干重值明顯偏高,而TLR4抑制組添加TRL4抑制劑后炎性反應(yīng)明顯降低,進(jìn)一步說明TRL4在肺缺血再灌注損傷的發(fā)生和發(fā)展過程中發(fā)揮了重要作用,但其具體機(jī)制仍需做進(jìn)一步深入研究。
本研究利用RT-PCR技術(shù)和Western-blot技術(shù)分別對(duì)各組大鼠肺組織中TLR4、HIF-1α mRNA和蛋白水平進(jìn)行檢測(cè)發(fā)現(xiàn),IRI模型組大鼠肺組織mRNA和蛋白水平均明顯高于假手術(shù)組,而TLR4激活組較IRI模型組更高,TLR4抑制組mRNA和蛋白水平均明顯低于IRI模型組,提示脂多糖能明顯激活TLR4通道,促進(jìn)TLR4的分泌和相關(guān)蛋白的表達(dá),而利用TLR4特異性抑制劑將TLR4通道抑制后可明顯降低TLR4、HIF-1α mRNA及蛋白表達(dá)水平。
HIF-1α是一種重要的缺氧相關(guān)調(diào)節(jié)因子,其可與下游的缺氧反應(yīng)元件結(jié)合后調(diào)控下游基因的激活,而HIF-1α與TLR4之間也存在著密切聯(lián)系[17]。本研究發(fā)現(xiàn),特異性TLR4配脂多糖干預(yù)后可明顯促進(jìn)HIF-1α的累積及活化,并能抑制HIF-1α蛋白的降解,說明IRI中缺氧及TLR4激活可協(xié)同作用,增加HIF-1α的累積及活化,二者在大鼠肺缺血再灌注損傷的發(fā)生和發(fā)展過程中可能發(fā)揮著重要作用,但具體機(jī)制仍需做更深入研究。
本研究利用RT-PCR技術(shù)和Western-blot技術(shù)分別對(duì)各組大鼠肺組織中TNF-α、IL-6 mRNA和蛋白水平進(jìn)行檢測(cè)發(fā)現(xiàn),IRI模型組mRNA和蛋白水平均高于假手術(shù)組,而TLR4激活組更高,但TLR4抑制組mRNA和蛋白水平均明顯低于IRI模型組。TNF-α和IL-6作為促炎癥因子均可以誘導(dǎo)中性粒細(xì)胞趨化和其他炎癥因子的產(chǎn)生,導(dǎo)致缺血再灌注損傷的發(fā)生[18-19]。本研究發(fā)現(xiàn),TLR4可上調(diào)TNF-α和IL-6等炎癥因子水平,促進(jìn)炎性反應(yīng)的發(fā)展,進(jìn)而導(dǎo)致缺血再灌注損傷的加重。同時(shí)也表明,HIF-1α在TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)的肺IRI中發(fā)揮著重要作用,其可上調(diào)繼發(fā)性損傷性因子等因素,促進(jìn)細(xì)胞凋亡及炎性反應(yīng);而抑制TLR4激活通道后可明顯抑制HIF-1α的活性,進(jìn)而降低各項(xiàng)炎癥因子水平,但能否將抑制HIF-1α的活性作為一種新的治療靶點(diǎn)仍需做進(jìn)一步的深入研究。
本研究采用不同方式干預(yù)處理后制作大鼠肺IRI模型并檢測(cè)各項(xiàng)指標(biāo)發(fā)現(xiàn),脂多糖激活TLR4后可促進(jìn)缺氧因子HIF-1α的分泌和表達(dá),并能上調(diào)炎癥因子水平,促進(jìn)炎性反應(yīng)的發(fā)生和發(fā)展,進(jìn)而導(dǎo)致肺IRI加重,這與相關(guān)文獻(xiàn)的結(jié)果基本一致[20]。但本研究限于研究樣本量不足,對(duì)于TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)HIF-1α水平變化的具體機(jī)制仍需進(jìn)一步深入研究。
綜上所述,大鼠肺IRI后肺組織中TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)HIF-1α水平顯著升高,從而增加對(duì)肺組織的炎癥損傷程度。
[參考文獻(xiàn)]
[1] 麻日虎,李瑩,王玉旋,等.“漸處理”對(duì)肺缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].中國醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2012,9(35):38-40.
[2] Chen TH,Liao FT,Yang YC,et al. Inhibition of inducible nitric oxide synthase ameliorates myocardial ischemia/reperfusion injury - induced acute renal injury [J]. Transplantation Proceedings,2014,46(4):1123-1126.
[3] Xie CL,Li JH,Wang WW,et al. Neuroprotective effect of ginsenoside-Rg1 on cerebral ischemia/reperfusion injury in rats by downregulating protease-activated receptor-1 expression [J]. Life Sciences,2015,121(8):145-151.
[4] 倪金鳳,高長(zhǎng)俊,郝冬榮,等.血清炎癥因子在評(píng)估兒童社區(qū)獲得性肺炎病情嚴(yán)重程度中的臨床價(jià)值[J].中國醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2016,13(4):69-72
[5] 鄭志雄,彭雪梅,席露,等.乳化氟碳聯(lián)合川芎嗪對(duì)大鼠肺缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].南方醫(yī)科大學(xué)學(xué)報(bào),2016,36(2):250-254.
[6] 劉雪峰.山楂葉總黃酮對(duì)肺缺血再灌注損傷的保護(hù)作用及其機(jī)制研究[J].現(xiàn)代中西醫(yī)結(jié)合雜志,2016,25(3):257-260.
[7] 曹騰波.迷走神經(jīng)電刺激對(duì)肺缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].上海醫(yī)學(xué),2016,39(4):229-232.
[8] 張自珍,羅欣,于小華.黃芪注射液抑制壓瘡缺血再灌注損傷大鼠的炎癥反應(yīng)并增強(qiáng)其抗氧化損傷能力[J].細(xì)胞與分子免疫學(xué)雜志,2015,31(4):507-510.
[9] 梁桂娟,王迎濤,唐成和,等.Toll樣受體4在新生大鼠缺氧缺血性腦損傷中的表達(dá)變化[J].中國新生兒科雜志,2016,31(3):222-225.
[10] Yue S,Rao J,Zhu J,et al. Myeloid PTEN Deficiency Protects Livers from Ischemia Reperfusion Injury by Facilitating M2 Macrophage Differentiation [J]. J Immunol,2014, 192(11):5343-5353.
[11] Ibánez B,Heusch G,Ovize M,et al. Evolving Therapies for Myocardial Ischemia/Reperfusion Injury [J]. J Am CollCardiol,2015,65(14):1454-1471.
[12] 劉春全,楊雷,張臨友.肺移植缺血再灌注損傷免疫途徑及其保護(hù)措施的研究現(xiàn)狀[J].國際免疫學(xué)雜志,2015, 38(3):115-117.
[13] 張敬強(qiáng),司裕龍,郭亞雄.FTY720對(duì)大鼠肺缺血再灌注損傷的保護(hù)作用[J].中國藥物與臨床,2014,14(8):1032-1034.
[14] 劉建平,何建峰.黃芪甲苷對(duì)大鼠肺缺血再灌注損傷后細(xì)胞凋亡的影響[J].江蘇中醫(yī)藥,2016,48(6):75-78.
[15] 謝元輝,黃益素,喻依川,等.炎癥缺血缺氧損傷對(duì)體外培養(yǎng)的大腦皮層星形膠質(zhì)細(xì)胞中內(nèi)皮性脂酶表達(dá)的影響[J].神經(jīng)解剖學(xué)雜志,2014,30(3):363-366.
[16] 孫經(jīng)武,王艷艷,房燦.藏紅花酸預(yù)處理對(duì)大鼠心肌缺血再灌注損傷中炎癥反應(yīng)和細(xì)胞凋亡的影響及其機(jī)制[J].中國循環(huán)雜志,2015,30(2):172-175.
[17] 楊夢(mèng)思,周娜,王志鋼,等.轉(zhuǎn)錄因子HIF-1α及其信號(hào)通路在疾病發(fā)生中的作用研究進(jìn)展[J].生物技術(shù)通報(bào),2016,32(8):123-125.
[18] 解德瓊,張臣麗,吳婭琳,等.蛇床子素預(yù)處理對(duì)腎臟缺血再灌注損傷炎癥因子表達(dá)的影響[J].中國中西醫(yī)結(jié)合腎病雜志,2015,16(2):102-105.
[19] 吳珍妮,胡滿燕,龍子江,等.欣怡膠囊對(duì)心肌缺血再灌注損傷大鼠血清炎癥因子及心臟組織形態(tài)的影響[J].中成藥,2015,37(11):2342-2346.
[20] 周志毅,朱幸沨,陳靜瑜,等.缺氧誘導(dǎo)因子-1α在TLR4信號(hào)通路介導(dǎo)的大鼠肺缺血再灌注損傷中的影響[J].中華器官移植雜志,2014,35(9):561-566.
(收稿日期:2016-11-17 本文編輯:程 銘)